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UNIVERSIDADE ESTADUAL PAULISTA - UNESP
INSTITUTO DE BIOCIÊNCIAS DE BOTUCATU
TESE DE DOUTORADO
Astyanax altiparanae (Pisces, Characiformes) como modelo
biológico de espécie de peixe para exploração zootécnica e
biomanipulação
Rodrigo Braz de Castilho Almeida
BOTUCATU, 2007
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UNIVERSIDADE ESTADUAL PAULISTA - UNESP
INSTITUTO DE BIOCIÊNCIAS DE BOTUCATU
Rodrigo Braz de Castilho Almeida
Astyanax altiparanae (Pisces, Characiformes) como modelo
biológico de espécie de peixe para exploração zootécnica e
biomanipulação
Tese apresentada ao Instituto de Biociências de
Botucatu, Universidade Estadual Paulista -
UNESP, como parte dos requisitos para a
obtenção do título de Doutor em Ciências
Biológicas. Área de Concentração: Zoologia.
Orientador: Dr. Fausto Foresti
BOTUCATU, 2007
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iv
“Por mais longe que vá o espírito, nunca irá tão longe quanto o coração.”
Sócrates
v
São diferentes identidades;
Diferentes personalidades;
Mas a razão desta minha existência:
Alessandra
Igor, Raul e Théo
vi
Agradecimentos
___________________________________________________________________
Ao Prof. Dr. Fausto Foresti pela confiança em mim depositada, pela orientação
neste trabalho, pela compreensão, por sua amizade e pelo exemplo de vida que
pretendo sempre seguir.
Ao Prof. Dr. Fábio Porto Foresti, por sua liderança natural que estimula as pessoas
a atingirem seus ideais, por sua exigência em manter seus bons amigos por perto, e
sem modéstia alguma, posso dizer que sou um deles.
Ao técnico de piscicultura e bioquímico, Roberto Braz de Castilho Almeida que
sempre entendeu a importância deste trabalho aplicado à piscicultura e colaborou
muito com seus conhecimentos sobre reprodução induzida de peixes. Além disso,
sempre me motivou para a realização deste doutorado; afinal, irmão é para essas
coisas!
À bióloga Fernanda Braz de Castilho Almeida Santos, pelo auxílio nas coletas dos
embriões durante o período de incubação; afinal, irmã também é para essas coisas!
Aos irmãos Cláudio e Claudinei Batirola, para mim exemplos de força de trabalho,
de conhecimento prático de piscicultura e principalmente exemplos de humildade.
São amigos que considero muito, pela ajuda que me proporcionaram e tento de
todos os modos retribuir com meu modesto conhecimento em piscicultura, quando
eles necessitam.
Ao Prof. Dr. Alexandre Azevedo, pela motivação e auxílio nos estudos da
embriogênese, tão importantes para o desenvolvimento deste trabalho.
Ao Prof. Edson Montilha e Prof. Dr. Artur Antonio Andreata, amigos de jornada nas
faculdades onde trabalho, que sempre me auxiliaram com seus conhecimentos.
vii
Ao Prof. Dr. Edmir Daniel Carvalho pela amizade e por sua lealdade, virtudes raras
e imprescindíveis para as relações humanas.
À GA-Alevinos, por ceder os espaços da estação de piscicultura de Promissão-SP e
pelos exemplos de liderança no mercado de alevinagem comercial e nos trabalhos
de repovoamento de reservatórios, voltados para a conservação da ictiofauna de
espécies nativas.
Ao Instituto de Biociências da Universidade Estadual Paulista, câmpus de Botucatu,
ao Curso de Pós-Graduação em Ciências Biológicas – Área de Zoologia, à Seção
de Pós-Graduação do Instituto e ao Departamento de Morfologia, pela oportunidade
e pelas condições oferecidas.
Aos novos colegas do Laboratório de Genética de Peixes, da Unesp de Bauru, pelo
apoio nas análises citogenéticas.
Aos meus alunos, que de uma forma ou de outra me fazem aprender a cada dia a
respeitar o próximo, seja pelas virtudes ou pelos defeitos (que prefiro chamar aqui
de erros em reparação); fico torcendo para que um dia cada professor possa
efetivamente contribuir com bons exemplos para a formação de cada indivíduo.
A todos os meus amigos e companheiros que não foram citados, pela amizade
inestimável e por tudo que fizeram por mim.
Aos meus pais que sempre me incentivaram em meus objetivos, apesar das
preocupações normais que pais amorosos têm com seus filhos.
A minha esposa Alessandra, mãe exemplar com quem compartilho os momentos da
minha vida que entendeu as exigências e as dificuldades para a realização deste
trabalho.
viii
RESUMO
A aqüicultura mundial se estabelece como atividade sustentada pelo aumento do
consumo de carnes brancas e pela estagnação da captura e depleção dos estoques
de peixes no ambiente. O uso de espécies como tilápias, carpas, trutas, salmões
tornam-se cada vez mais comum nos países tradicionais na aqüicultura. No Brasil
espécies exóticas e alóctones sempre foram utilizadas na piscicultura e em projetos
de repovoamento de reservatórios de hidrelétricas. Esses peixes tornaram-se
invasores da maioria das bacias hidrográficas brasileiras, representando riscos para
diversidade da ictiofauna do Brasil. A conservação de peixes é um tema que envolve
ações que minimizam os impactos causados pelas atividades humanas como o
desmatamento, a poluição, construção de reservatórios e a introdução de espécies
exóticas ou alóctones. Técnicas genéticas a poliploidia, a reversão de sexo podem
ser utilizadas como incremento à produção aquícola e também para promover a
conservação da ictiofauna aplicando estas técnicas na reprodução de peixes
exóticos para promover a esterilidade dos estoques de peixes introduzidos. A
espécie Astyanax altiparanae foi utilizada como modelo biológico de reprodução
induzida e manipulação de gametas para a aplicação e padronização das técnicas
de poliploidia. Foram obtidos bons resultados com as técnicas de reprodução
induzida por hormônios obtidos em extratos hipofisários e também com o uso de
hormônios sintéticos. Para a manipulação dos embriões submetidos aos testes de
poliploidia, foi caracterizado o desenvolvimento embrioários do lambari Astyanax
altiparanae, para a determinação dos choques de temperatura e de pressão
hidrostática. Nos testes de triploidia com uso de choques de temperatura, foram
obtidos indivíduos triplóides em baixa freqüência. Nos tratamentos com choques de
pressão hidrostática não foram obtidos indivíduos triplóides. Os testes em geral,
foram considerados letais para a maioria dos indivíduos dos tratamentos
comparados com os indivíduos do controle, que não foram submetidos aos choques
de temperatura ou pressão hidrostática. Nos testes de tetraploidia não foram obtidos
indivíduos tetraplóides e a letalidade dos indivíduos submetidos aos choques de
temperatura e pressão hidrostática foi muito alta em comparação com o controle do
experimento. Para a espécie Astyanax altiparanae, neste trabalho sugere-se que as
técnicas de manipulação cromossômica de ploidia não foram efetivas devido à baixa
ix
freqüência de obtenção de indivíduos triplóides e tetraplóides e alta letalidade dos
embriões submetidos aos choques de temperatura e pressão hidrostática.
x
ABSTRACT
The world aquaculture represents an activity based on the increase of white meat
intakes, reduction of fishery and depletion of fish stocks in the wild. The utilization of
some species such as tilapias, carps, trouts and salmons have become more and
more common in countries of traditional aquaculture. In Brazil, exotic and alien
species were used in fishcultures as well as in repopulation of dam reservoirs. These
fishes have invaded most of Brazilian hydrographic basins, representing a potential
risk to the diversity of ichthyofauna in Brazil. Fish conservation is an issue that
involves actions able to minimize the impacts caused by human activities, like
deforestation, dam construction and introduction of exotic or alien species. Genetic
techniques such as poliploidy and sex reversal may be used to increase aquaculture
production and also to conserve the ichthyofauna by applying these techniques in
the reproduction of exotic species, leading to sterility of introduced fish species. The
species Astyanax altiparanae was used as a biological model of induced
reproduction and gamete manipulation for the application and standardization of
poliploidy techniques. Good results were obtained with both hormone-induced
reproduction from pituitary extracts and synthetic hormones techniques. The
embrionary development of Astyanax altiparanae was characterized prior the
manipulation of embryos submitted to poliploidy tests, in order to determine thermal
and hydrostatic pressure shocks. Triploidy tests using thermal shocks resulted in a
low number of triploid individuals. Treatments involving pressure shocks failed in
obtaining triploids. Overall, the tests were considered lethal for most individuals when
comparing to those from control test, not exposed to neither thermal nor hydrostatic
pressure shock. No tetraploid individual was obtained in tetraploidy tests and the
lethality of individuals exposed to thermal and hydrostatic pressure was very high in
relation to the control experiment. The present work suggests that the techniques of
chromosomal manipulation regarding ploidy were unefficient for the species
Astyanax altiparanae due to the low frequency of triploid and tetraploid individuals
obtained, besides the high lethality of embryos exposed to thermal and hydrostatic
pressure shocks.
SUMÁRIO
xi
Pg.
1 Introdução _________________________________________________________ 2
1.1 Aqüicultura Mundial ________________________________________________
2
1.2 Aqüicultura Continental Brasileira _____________________________________
5
1.3 Impactos na Biodiversidade __________________________________________
6
1.4 Conservação da Ictiofauna ___________________________________________
9
1.5 O Lambari (Astyanax): Modelo Biológico e Espécie Promissora para
a Piscicultura
_______________________________________________________
13
1.6 Considerações gerais sobre os peixes do gênero Astyanax _________________
15
1.6.1 A Família Characidae e a Subfamília Tetragonopterinae _________________
15
1.6.2 O Gênero Astyanax ______________________________________________
16
1.7 O Cultivo do Lambari _______________________________________________
18
1.8 Reprodução e Desenvolvimento Embrionário ____________________________
20
1.8.1 Reprodução Induzida ou Hipofização ________________________________
22
1.8.2 Desenvolvimento Embrionário ______________________________________
23
1.9 Aplicação de Técnicas de Manipulação Genética _________________________
24
1.10 Potencial Biológico e Econômico do Astyanax altiparanae _________________
26
1.11 Objetivos ________________________________________________________
29
2 Materiais e Métodos __________________________________________________ 32
2.1 Material de Estudo _________________________________________________
32
2.2 Estações de Piscicultura _____________________________________________
32
2.3 Métodos __________________________________________________________
33
2.3.1 Metodologia da indução da reprodução _______________________________
33
2.3.2 Reprodução Induzida – “Desova Livre” _______________________________
37
2.3.3 Reprodução Induzida – Extrusão de Gametas _________________________
40
2.3.4 Desenvolvimento Embrionário ______________________________________
46
2.3.5 Larvicultura Aplicação das Técnicas de Manipulação Cromossômica _______
46
2.3.6 Aplicação das Técnicas de Manipulação Cromossômica _________________
47
2.3.7 Análises Citogenéticas ____________________________________________
53
3 Resultados e Discussão _______________________________________________ 59
3.1 Reprodução Induzida _______________________________________________
59
3.1.1 Desova Livre – Razão Sexual ______________________________________
61
3.1.2 Razão sexual na Desova Livre _____________________________________
63
xii
3.1.3 Desova por Extrusão de Gametas ___________________________________
67
3.2 Embriogênese _____________________________________________________
70
3.3 Aplicação de Metodologia de Manipulação Genética ______________________
75
3.3.1 Choques de Temperatura _________________________________________
76
3.3.2 Choques de Pressão Hidrostática ___________________________________
83
4 Conclusões _________________________________________________________ 90
5 Referências Bibliográficas _____________________________________________ 94
xiii
CONSIDERAÇÕES INICIAIS
Será que existe alguém que nunca ouviu falar no lambari? Possivelmente sim, um
morador de uma grande cidade que não teve a oportunidade de observar e
aproveitar da tranqüilidade e andar descalço nas areias de um riacho no campo!
Mas, pergunte sobre isso a um garoto qualquer que mora no interior e certamente ele
responderá rápido que o lambari é um peixinho pequeno que tem lá no “corguinho”.
Simplicidade ou não, os lambaris são conhecidos pela sua abundância nos ambientes
de água doce típicos dos córregos, rios e lagos da região neotropical.
Não é difícil observar que quando falamos no nome do lambari, as lembranças da
infância parecem ressurgir na nossa mente, revelando os momentos alegres e de
liberdade, na inocência de uma criança que fazendo uso de uma peneira e um
“embornal” saia feliz da vida após pescar dezenas de lambaris. Naqueles momentos,
os perigos normais como cobras, aranhas ou mesmo o risco de afogamento, pareciam
besteiras perto dos riscos que nossas crianças estão sujeitas nos dias de hoje.
Mas ainda relembrando o passado, eu tive a oportunidade quando criança de conhecer os lambaris
nos córregos do entorno da cidade de Penápolis-SP, minha cidade natal. Jamais vou esquecer dos dias
em que meu querido pai me colocou de baixo de uma cachoeira no Salto de Avanhandava, quando
ainda não existia o reservatório da hidrelétrica, para pegar lambaris “com as mãos” dentro das locas
durante a piracema. Hoje sei que o interesse do meu pai não eram os “lambaris” simplesmente e sim
proporcionar um momento único e inesquecível ao seu filho!
Das brincadeiras da infância, o lambari se tornou para mim um meio de sobrevivência. A partir de
1995, comecei a criar o lambari com o objetivo de atender ao mercado da pesca esportiva em
reservatórios, que estava em plena expansão. Devo muito aos “lambaris” o conhecimento prático em
piscicultura que adquiri sobre manejo, doenças e parasitoses, transporte, estocagem, reprodução,
nutrição e outras coisas que acontecem neste tipo de atividade e que a gente aprende no dia a dia.
Atualmente, continuo com a criação e a venda do lambari para a pesca esportiva e junto com vários
outros produtores que aderiram ao cultivo desta espécie de peixe, é provável que 4 milhões de
lambaris sejam comercializados anualmente na região noroeste paulista neste ano! Não existem dados
xiv
oficiais sobre o cultivo do lambari no Brasil, mas sabemos que em todo o país esta espécie nativa vem
sendo criada para diversos fins, como o de processamento para consumo, como base forrageira para
espécies carnívoras e também como isca para a pesca esportiva.
Sempre desejei que um número maior de criadores optasse pela criação do lambari
em suas propriedades. Em minhas andanças como técnico de piscicultura, consegui
convencer alguns deles, que se tornaram grandes produtores de lambari. Mas, ainda
não satisfeito e sempre conversando com o Prof. Fausto, pensamos na idéia de
desenvolver algo com este pequeno peixe, com base no que o saudoso Prof. Silvio
Toledo dizia: “...o lambari é um bom modelo para estudos biológicos pelas
características que apresenta como gerador de prole numerosa, gerações curtas e de
fácil reprodução; enfim, uma espécie ideal para estudos de genética aplicada”.
Nesta tese de doutorado espero ter contribuído com informações sobre a reprodução
artificial do lambari, de maneira que produtores possam desenvolver e otimizar suas
pisciculturas com a criação desta espécie, melhorando a produtividade de larvas e
alevinos. Espero que tais informações possam também contribuir para a
possibilidade do uso das novas metodologias já existentes na área de biotecnologia,
neste caso com a aplicação de técnicas de manipulação cromossômica utilizando a
espécie Astyanax altiparanae. Certamente isto poderá resultar num salto em
quantidade e qualidade da produção!
xv
INTRODUÇÃO
xvi
1 INTRODUÇÃO
1.1 A Aqüicultura Mundial.
O homem se faz dependente da natureza, fazendo uso da biodiversidade
para se alimentar, se vestir, para morar e para curar suas doenças (PRIMACK &
RODRIGUES, 2001). ROULE (1914) em sua publicação sobre piscicultura definiu
que os humanos são fascinados pela exploração dos recursos vivos oriundos da
água. O cultivo de organismos aquáticos destaca-se historicamente e nos dias
atuais se desenvolve a ritmo avançado e a maior parte da aqüicultura mundial tem
se desenvolvido em água doce e, principalmente, na Ásia (BORGHETTI &
OSTRENSKY, 2002). A produção aqüícola de água doce consiste principalmente na
piscicultura, com destaque para a ciprinicultura (cultivo de carpas), segundo
CASTAGNOLLI (1996). A aqüicultura em águas salobras tem se dedicado
principalmente à carcinicultura, promovendo o crescimento dos mercados de
exportação de camarão (MELO, 2004). Com relação a maricultura, o que mais se
tem produzido em volume são algas e moluscos (BRANDINI et al., 2000).
A produção mundial de organismos aquáticos originados da aqüicultura
cresceu de 13.480.431 toneladas métricas em 1987 para 34.116.249 toneladas
métricas em 1996 (FAO, 1999) enquanto que em 2003 a produção total da
aqüicultura foi de 42.000.000 de toneladas métricas e as estimativas baseadas para
2010 e 2015 são de 53.000.000 e 74.000.000 de toneladas métricas,
xvii
respectivamente (FAO, 2004). As estatísticas dão a impressão de que estes
produtos se orientam pelo mercado de exportação (JOHNSON, 2003). O volume
total de camarões marinhos e peixes como salmões que são exportados (29%) é
equivalente aos dos peixes de água doce como tilápias ou carpas (28%), porém
seus preços são mais elevados, o que constitui um importante componente em valor
(FAO, 2004).
Para cerca de 1 bilhão de pessoas no mundo (aproximadamente 17% da
população mundial) o pescado é a fonte principal de proteínas animais. As proteínas
de pescado são essenciais nas dietas alimentares de alguns países de população
densa onde, contudo, a ingestão total de proteínas pode ser baixa. A aqüicultura é a
forma mais eficaz e sustentável de garantir que haja proteína suficiente para o
mundo cuja população não pára de crescer (SORVIG, 2007). A dependência do
pescado parece ser maior nas zonas costeiras que nas continentais. Entretanto, a
produção mundial de pescados, após chegar a fornecer à população mundial o
equivalente a 16,1 quilos per capta em 1997, sofreu uma queda em 1998 suprindo
apenas com 15,8 quilos per capta (FAO, 1998). Especialistas acreditam que, a
médio prazo, deverá existir um limite na quantidade de alimento, incluindo
pescados, que cada indivíduo poderá consumir e tetos de consumo serão
estabelecidos. Está claro, entretanto, que esse limite será alcançado primeiro pelos
países com economias prósperas e mais rapidamente ainda pelos países onde os
pescados fazem parte da tradição alimentar, como o Japão (BORGHETTI &
OSTRENSKY, 2002).
Segundo o relatório da FAO (1999), o crescimento econômico nos próximos
30 anos dará lugar a um aumento do número de pessoas com hábitos estabelecidos
e constantes de consumo de pescado e uma grande variedade de produtos deverá
xviii
ser consumida. Porém, o volume total por pessoa flutuará demasiadamente. A
aqüicultura se expandirá geograficamente, no que diz respeito às espécies
cultivadas e às tecnologias utilizadas. É muito pouco provável que a Ásia continue
dominando a produção na mesma proporção ocorrida nos anos 90 e a maricultura
deverá representar uma grande parte da produção total, principalmente se a
tecnologia do cultivo no mar se mostrar viável.
A aqüicultura cresce a ritmo sustentado agregando valores sobre os produtos
cultivados, utilizando novas tecnologias de produção e de segurança alimentar. A
FAO conclui que modificações genéticas de espécies aquáticas podem incrementar
tanto a quantidade como a qualidade dos produtos da aqüicultura (FAO, 1998). O
melhoramento genético tradicionalmente feito com os animais, a manipulação da
estrutura cromossômica e a hibridação têm proporcionado notáveis contribuições ao
incremento da produção aqüícola e já se pode prever que estas contribuições
aumentem, à medida que as espécies aquáticas se tornem mais domesticadas e se
siga aprimorando a tecnologia voltada ao melhoramento genético.
Fatores como a destruição de habitat natural, a utilização de antibióticos, a
produção de farinha de pescados, a invasão de espécies exóticas nos ecossistemas
e a fabricação de insumos com soja modificada geneticamente têm sido
considerados obstáculos ao desenvolvimento da aqüicultura atual (SORVIG, 2007).
PILLAY (1992) pondera que a aqüicultura não é considerada ainda uma atividade de
grande potencial impactante, mas de atuação como elemento coadjuvante em
relação a outras atividades humanas que utilizam as vias hídricas com destaque na
degradação dos ecossistemas aquáticos. Nestas questões, faz-se necessária a
aplicação da multi e interdisciplinariedade dos conhecimentos relativos ao ambiente
a respeito dos fundamentos da ecologia básica e aplicada associadas às ações
xix
antrópicas. Para a aqüicultura em geral, é fundamental o estabelecimento de
políticas com as quais seja otimizado o setor aqüícola para o bem estar econômico
e social, incluindo os valores nutricionais, a segurança alimentar, a inclusão social e
a conservação ambiental, diretrizes estas fundamentais nos processos de gestão
ambiental.
1.2 A Aqüicultura Continental Brasileira.
A aqüicultura é a atividade que mais tem crescido nas últimas décadas em
todo o mundo, atingindo valores de cerca de 10% ao ano segundo os dados da
FAO, 1999. Na aqüicultura brasileira, ao contrário das atividades agropecuárias mais
tradicionais (bovinocultura, avicultura e suinocultura), que cultivam apenas uma,
duas ou no máximo três diferentes espécies de animais, pelo menos 56 espécies de
peixes e de outros organismos aquáticos vêm sendo utilizadas comercial ou
experimentalmente pela aqüicultura continental brasileira (BORGHETTI &
OSTRENSKY, 2002).
Entre os peixes, o tambaqui (Colossoma macropomum) originário da bacia
amazônica é atualmente a espécie cultivada no maior número de estados
brasileiros, seguido pela tilápia (várias espécies), presente atividades de cultivo em
22 Estados da Federação, não sendo produzida comercialmente somente na região
Norte. E em terceiro lugar como peixe de maior distribuição nacional, está a carpa
comum (Cyprinus carpio), com atividades de cultivo presentes em 20 Estados.
Diante destes números, constata-se que entre as três espécies de peixes cultivados
de maior distribuição nacional, duas são espécies exóticas, provenientes de outros
xx
países, sendo a tilápia de origem africana e as carpas de origem asiática
(BORGHETTI & OSTRENSKY, 2002).
A maior parte da produção mundial da aqüicultura é proveniente ainda de
sistemas semi-intensivos, considerados de baixa produtividade, fato este que
também pode ser observado no Brasil. As perspectivas atuais apontam para
modificações da produção na aqüicultura brasileira, com base nos dados de
crescimento dos cultivos nos sistemas intensivos como a produção de peixes em
tanques-rede (CASTAGNOLLI, 2000). O Brasil apresenta área superior a 5 milhões
de hectares de áreas alagadas, principalmente nos reservatórios das grandes
hidrelétricas, sendo o país que apresenta o maior potencial para a produção de
peixes de água doce em tanques-rede (CASTAGNOLLI, 2000). As espécies de
tilápias, apesar de serem exóticas às bacias hidrográficas do Brasil, apresentam
atualmente os melhores desempenhos zootécnicos nos cultivos em tanques-rede,
ultrapassando os 100 kg/M
3
de produção, tornando viável a implantação de uma
cadeia produtiva da tilápia no Brasil.
1.3 Impactos na Biodiversidade.
Sabe-se que as espécies introduzidas, sejam elas provenientes de outros
países (exóticas) ou transferidas de outras bacias hidrográficas (alóctones), quando
disponíveis nos ambientes naturais ou em sistemas de cultivo provocam impactos
de natureza complexa, em função das implicações que podem ter sobre a fauna
local (AGOSTINHO, 1992). A despeito do número de introduções de espécies
exóticas ou alóctones já realizadas nos ecossistemas aquáticos brasileiros, as
informações disponíveis acerca dos impactos causados são ainda reduzidas, mas
xxi
sabe-se que estas podem afetar as espécies nativas pela competição por recursos
(MARCHETTI, 1999), predação e piscivoria (GARCÍA–BERTHOU, 2002)
transferência de patógenos e parasitas (GABRIELLI & ORSI, 2000) ou ainda por
alterações introduzidas no habitat (ELVIRA & ALMODÓVAR, 2001), como o
comportamento de revolver o substrato de fundo, tal como fazem as carpas e
algumas espécies de tilápias (AGOSTINHO & JÚLIO JR., 1996). Estas espécies
podem ainda causar reduções nos estoques nativos ou mesmo extinções locais,
decorrentes de alterações no habitat e ainda de degradação genética das espécies
nativas provocada pela miscigenação (AGOSTINHO & JÚLIO JR., 1996; FORYS &
ALLEN, 1999).
As águas doces ocupam 0,0093% do volume total de água do planeta e no
entanto, 12% das espécies animais vivem nas águas interiores. Cerca de 20.000
espécies de peixes vivem nos ambientes de água doce (NELSON, 1994). LOWE-
McCONNELL (1999) refere-se à existência de mais de 1500 espécies de peixes que
ocorrem somente na bacia Amazônica e na bacia do Prata, estimando-se ainda a
ocorrência de cerca de 550 espécies na bacia do Rio Paraguai, especialmente no
vasto complexo sistema do Pantanal (BONETTO, 1994).
Nota-se que a ictiofauna brasileira e sul-americana é rica em diversidade,
mas os modelos aqüícolas utilizados ainda são importados e estruturados com base
no conhecimento adquirido no cultivo espécies exóticas, principalmente de tilápias e
carpas praticados em todo o mundo. A introdução de espécies exóticas de plantas,
peixes e outros organismos tem resultado em extensas modificações na cadeia
alimentar em lagos e reservatórios no Brasil. Um exemplo deste processo pode ser
ilustrado pela introdução acidental ou proposital de Cichla ocellaris (tucunaré) que
xxii
alterou profundamente a cadeia alimentar em lagos do rio Doce (TUNDISI & SAIJO,
1997).
Espécies como a corvina (Plagioscion squamosissimus), de hábito alimentar
variado e com oportunismo trófico, constituem um bom exemplo para análise dos
efeitos da introdução de espécies alóctones. Disseminada por toda a bacia do rio
Paraná e atualmente com importante participação na pesca do reservatório de
Itaipu, a corvina foi a espécie introduzida mais bem sucedida e que atualmente
prolifera nos principais corpos d′água do alto Paraná (AGOSTINHO & JULIO JR,
1999). SANTOS & FORMAGIO (2000) demonstram que, enquanto a ocorrência de
Plagioscion squamosissimus e de Pimelodus maculatus aumentou de 1987 a 1995
no reservatório de Volta Grande (MG), as espécies de pequeno porte, dos gêneros
Astyanax e Steindachnerina tiveram seus estoques reduzidos ou nem sequer foram
mais registradas, demonstrando que após a introdução da corvina, a ictiofauna
deste reservatório alterou-se drasticamente.
A contínua interferência das atividades humanas nos sistemas aquáticos
continentais do Brasil produziu impactos diretos ou indiretos, com conseqüências
para a qualidade da água, a biota aquática e o funcionamento de lagos, rios e
represas. Entre os principais agentes causadores de impacto estão as atividades de
desmatamento, que resultam na perda da zona tampão entre sistemas terrestres e
aquáticos; a mineração, que produz alterações físicas e químicas extremamente
elevadas nos sistemas, além de provocar o assoreamento dos componentes
hídricos; a construção de rodovias e ferrovias, que promovem a drenagem de áreas
alagadas e a remoção de florestas, com alterações na estrutura dos rios e lagos ao
longo das obras. Impactos continuados ainda podem ser causados por despejos de
material residual proveniente de fontes orgânicas ou inorgânicas, pela introdução de
xxiii
espécies exóticas nos mananciais hídricos e, com merecido destaque, os impactos
resultantes da construção de reservatórios (DAVID et al., 2006).
Segundo WOYNAROVICH (1991), as mudanças causadas no ambiente após
os represamentos são catastróficas para muitas espécies de peixes, especialmente
para aquelas de características migratórias de longa distância, como o dourado
(Salminus maxilosus) e o pintado (Pseudoplatystoma corruscans). O ambiente
originalmente lótico se transforma numa região semi-lêntica, acarretando mudanças
na temperatura da água, na oxigenação, na deposição de sedimentos e na química
da água e do solo. Nesta condição ambiental percebe-se claramente que as fontes
de matéria e energia são profundamente modificadas, passando a ocorrer um
predomínio da produção primária fitoplanctônica com aumento do perifíton (fontes
autóctones), em relação à fase do rio onde essas fontes eram de origem alóctone.
Tais condições podem ser limitantes para as espécies de peixes típicas de rios,
enquanto que outras podem não achar uma maneira de completar seu ciclo de vida
após estas mudanças drásticas no ambiente, fazendo com que a diversidade e
composição das espécies modifiquem-se bastante no vetor espaço-temporal
(AGOSTINHO, 1992).
Acredita-se que ao aumentar a produtividade de um reservatório, as perdas
do ambiente natural poderiam ser compensadas (WOYNAROVICH, 1991). Assim,
ações de manejo da ictiofauna vêm sendo realizadas intensivamente nos
reservatórios nos quais as espécies exóticas ou alóctones são introduzidas, com o
propósito de preencher tais nichos vazios e aumentar a produção pesqueira
(AGOSTINHO & JÚLIO JR., 1999, AGOSTINHO, 1992).
1.4 Conservação da Ictiofauna.
xxiv
Enquanto a pesca extrativista tem se mostrado em estado de estagnação
praticamente desde 1986, os dados estatísticos mostram que a produção de peixes
cultivados no mundo para fins de alimentação humana mais do que dobrou entre
1987 e 1997, segundo dados da FAO (1999). Essas atividades, no entanto, teriam
também aumentando potencialmente a destruição de habitats, a deposição de
resíduos e as possibilidades de invasões de espécies exóticas em águas
continentais e em estuários. Mesmo com essas evidências de impactos ambientais,
os defensores da aqüicultura refletem sobre a redução das pressões da pesca sobre
os estoques naturais oceânicos e continentais, substituídos pelos organismos
cultivados (LIMA-JÚNIOR & LATINI, 2006). Poucos especialistas em pesca e
aqüicultura atualmente ainda refutam a idéia de que a redução dos estoques
oceânicos ocorreria em decorrência da destruição dos habitats e da exploração
excessiva dos estoques de peixes oceânicos, que até recentemente eram utilizados
como fonte de proteína animal barata para a produção de rações utilizadas nos
cultivos da aqüicultura (LIMA-JÚNIOR & LATINI, 2006).
Atualmente no Brasil as espécies mais adequadas para a aqüicultura são
exóticas e apresentam elevado potencial invasor. Em resposta aos chamados
“pacotes tecnológicos” importados de outros países, o cultivo de espécies nativas
seria então uma alternativa para solucionar essa necessidade de proteína animal. O
Brasil apresenta a maior diversidade de peixes de água doce do planeta (LOWE-
McCONELL (1999). No entanto, considera-se que seriam necessários muitos
investimentos em pesquisa para a adequação de algumas destas espécies às
condições de criação em cativeiro, ressaltando-se ainda que espécies alóctones
também possam ser causadoras de impactos sobre a ictiofauna existente (SANTOS
xxv
& FORMAGIO, 2000; TUNDISI & SAIJO, 1997). Cria-se, assim, uma situação
conflituosa na tentativa de se chegar ao ponto de equilíbrio entre a atividade
aqüícola e a conservação ambiental. Considera-se, então, que o estabelecimento
racional de um zoneamento das bacias hidrográficas pudesse funcionar como
alternativa ao uso de espécies exóticas, permitindo distinguir áreas prioritárias para
a proteção ambiental de outras nas quais as criações poderiam ser realizadas
(LIMA-JUNIOR & LATINI, 2006).
Além dos impactos sobre a ictiofauna causados pela introdução de espécies
exóticas, outros fatores podem contribuir de modo significativo para a perda da
biodiversidade, como a mudança do regime hídrico dos corpos aquáticos, a poluição
e a destruição dos habitats. Tendo em vista que a construção de grandes barragens
implica obrigatoriamente no aproveitamento múltiplo do reservatório formado, os
objetivos precípuos destes seria a geração de energia elétrica, seguida do controle
de enchentes, abastecimento público, navegação, irrigação, turismo, pesca, etc.
(MACHADO, 1975; DAVID et al., 2006). Verifica-se que nestes novos ambientes
estabelecidos, os recursos pesqueiros disponíveis à época da existência dos rios
ainda não barrados sofrem freqüentemente um crescente e acentuado processo de
empobrecimento, não apenas quantitativo, mas também qualitativo. Assim, em
razão de modificações no regime hídrico estabelecidas pelas condições de
represamento do Rio Paraná e dos seus principais tributários, ocorreu o quase
desaparecimento de certas espécies destes ambientes, como o pintado
(Pseudoplatystoma corruscans) e o dourado (Salminus maxillosus), ao mesmo
tempo em que foi verificado o predomínio de outras como a pirambeba
(Serrassalmus spilopleura) e o acará (Geophagus brasiliensis), além da alteração da
distribuição das populações (AGOSTINHO, 1992).
xxvi
A poluição é um dos fatores que mais contribui para a alteração dos
ecossistemas aquáticos. A ictiofauna é prejudicada pelo efeito danoso causado pelo
lançamento de resíduos industriais e domésticos nos mananciais que além de
alterarem as características físicas, químicas e biológicas da água, acarretam
problemas de eutrofização, com efeitos negativos sobre os peixes e sobre a própria
qualidade da água (VALENTINI et al., 1972; MACHADO, 1975; DAVID et al., 2006).
Uma alternativa apresentada para a conservação da ictiofauna nos ambientes
modificados por represamentos é o trabalho desenvolvido nos centros de pesquisa e
estações de aqüicultura. Nestes, pode-se produzir alevinos de espécies autóctones
de piracema visando à restauração de estoques endogâmicos e à ampliação dos
estoques das espécies ameaçadas ou em processo de redução populacional, bem
como de reinstalar estoques de espécies existentes anteriormente, como formas de
controlar ou diminuir os efeitos de processos estabelecidos (TOLEDO-FILHO et al.,
1992).
O repovoamento de peixes necessita de monitoramento. Programas de
manejo e monitoramento genético de peixes usados no repovoamento de
reservatórios de hidrelétricas vêm sendo desenvolvidos desde 1987 pelo Laboratório
de Biologia e Genética de Peixes do Instituto de Biociências, UNESP, de Botucatu
(SP), nos reservatórios dos rios Paranapanema e Tietê. O principal objetivo desses
programas de manejo e repovoamento tem sido, em última análise, contribuir para a
conservação do potencial biológico de populações selvagens de peixes cujo habitat
tenha sido alterado e que corram risco de redução ou até mesmo de
desaparecimento.
As estações de piscicultura atualmente envolvidas nos projetos de
conservação da ictiofauna estão sendo direcionadas para objetivos de manejo
xxvii
genético dos estoques de peixes destinados ao repovoamento. Neste caso são
ressaltados os esforços para minimizar as mudanças causadas pela deriva genética
e pela consangüinidade, assim como pelas dificuldades decorrentes do processo de
adaptação às condições de cultivo, de modo a que se maximizem características de
adaptação e de desempenho dos estoques introduzidos nos reservatórios.
(TOLEDO-FILHO et al., 1992)
O presente trabalho teve, assim, entre seus objetivos a possibilidade de
utilização de uma espécie nativa da bacia do alto rio Paraná, Astyanax altiparanae,
como modelo biológico, seja para a adaptação e estabelecimento de melhores
protocolos de manejo e de criação desta espécie, de grande interesse para cultivo
intensivo. Tais conhecimentos permitiriam viabilizar a aplicação de técnicas de
biomanipulação genética, bem como estudos do controle genético dos estoques.
1.5 O Lambari (Astyanax): Modelo biológico e Espécie Promissora para a
Piscicultura.
Existem muitas espécies de peixes conhecidas popularmente como lambaris,
que povoam pequenos riachos, lagos e os grandes rios formadores das bacias
hidrográficas de todo o ambiente tropical. O lambari-do-rabo-amarelo é uma espécie
de pequeno porte, que atinge de 10 a 15 cm de comprimento, podendo chegar a 60
gramas de peso. Possui hábito alimentar onívoro e seu crescimento é rápido,
chegando à maturidade sexual com cerca de quatro meses de idade em condições
de cultivo, normalmente com 7 a 9 cm de comprimento para os machos e 12 a 15
cm de comprimento para as fêmeas (PORTO-FORESTI et al., 2001).
O gênero Astyanax, pertencente à família Characidae, corresponde à maior
unidade dos Tetragonopterinae, sob o ponto de vista sistemático e constitui um dos
xxviii
gêneros dominantes da América do Sul (EIGENMANN, 1921). A representatividade
deste gênero é bastante grande e complexa, com um número expressivo de
representantes, sendo atualmente identificadas aproximadamente 74 espécies e
subespécies. O nome comum destes peixes varia de região para região, sendo
reconhecidos como “tambiú”, “piaba”, “piabinha”, “lambari-do-rabo-amarelo” e ainda
outros nomes particulares e de uso local. Ao contrário das diferentes denominações
comuns ao gênero Astyanax, a espécie Astyanax bimaculatus, como era referida
anteriormente por diversos pesquisadores, apresentava distribuição ampla desde a
Bacia do Prata até o Panamá e ainda desde águas de marés até elevações de
aproximadamente 1.500 metros.
Em revisões sistemáticas e filogenéticas realizadas no gênero Astyanax,
verificou-se que Astyanax bimaculatus não correspondia à consideração de uma
espécie somente. A mais recente revisão taxonômica dos Astyanax das bacias do
Paraná, do São Francisco e Amazônica resultou na reestruturação da nomenclatura
das espécies deste gênero, passando-se à denominação de Astyanax altiparanae
para o lambari-do-rabo-amarelo ou tambiú que ocorre na bacia do Rio Tietê e seus
afluentes (GARUTTI, 1995). Tendo em vista que as experiências práticas de cultivo
de peixes de pequeno porte são realizadas na maioria dos casos com exemplares
desta espécie, considera-se que o lambari tambiú poderia ser uma boa opção na
piscicultura brasileira.
Durante o período reprodutivo, diferenças morfológicas nítidas podem ser
evidenciadas entre machos e fêmeas, sendo que as fêmeas, além de serem
maiores e possuírem o corpo mais arredondado, são freqüentemente mais precoces
no crescimento do que os machos (PORTO-FORESTI et al., 2005; SATO et al.,
2006). Neste período, observa-se ainda nas fêmeas uma forte irrigação por vasos
xxix
sangüíneos na região ventral do corpo, principalmente nas bases de inserção das
nadadeiras peitorais e ventrais. Os machos são menores, possuem o corpo
alongado e no período reprodutivo apresentam a nadadeira anal áspera ao toque,
sendo tal característica importante para a sua identificação (PORTO-FORESTI et
al., 2005).
1.6 Considerações gerais sobre os peixes do gênero Astyanax
1.6.1 A família Characidae e a subfamília Tetragonopterinae
A família Characidae (Pisces, Characiformes) engloba a maior parte dos
peixes brasileiros de água doce incluindo também a grande maioria dos peixes de
escama (BRITSKI, 1972). Na América do Sul essa família compreende cerca de 30
subfamílias e aproximadamente 250 gêneros, nos quais se incluem peixes de
hábitos alimentares muito diversificados (herbívoros, onívoros, carnívoros) e que
ocupam uma grande variedade de habitats (BRITSKI, 1972).
A existência de um grande número de espécies em Characidae, associada à
enorme variedade de formas, tem dificultado a proposição de classificações que
reflitam agrupamentos naturais dentro dessa família, havendo dúvidas de que se
trate efetivamente de um grupo monofilético (LUCENA, 1993). Segundo ALMEIDA-
TOLEDO (1997), os estudos citogenéticos levados a efeito em Characidae refletem
de certo modo a heterogeneidade característica dessa família, uma vez que têm
sido detectadas diferentes particularidades citogenéticas entre os representantes
das subfamílias que a compõem.
xxx
Tetragonopterinae é a subfamília de Characidade que representa o maior
número de espécies no Brasil, sendo conhecida pelo fato de nela estarem incluídos
os peixes vulgarmente chamados de lambaris. Essa subfamília está representada
por toda a América do Sul e Central, estendendo-se da fronteira do México com os
Estados Unidos até a Argentina (BRITSKI, 1972). A classificação dos seus
representantes baseia-se na dentição, que é caracterizada pela presença de dentes
cuspidados, organizados em duas ou três séries no pré-maxilar e em uma única
série na mandíbula (BRITSKI, 1972). As espécies de Tetragonopterinae, cujo hábito
alimentar predominante é o onívoro, vivem em uma grande variedade de ambientes
(BRITSKI et al., 1984).
Devido ao fato de a subfamília Tetragonopterinae apresentar uma enorme
diversidade morfológica e específica, tem sido cada vez mais aceita a idéia de que
esta não representa um agrupamento natural monofilético, mas parafilético
(BUCKUP, 1998; WEITZMAN & MALABARBA, 1998).
1.6.2 O gênero Astyanax
Astyanax é considerado o gênero mais representativo da subfamília
Tetragonopterinae, sendo um dos gêneros dominantes na América do Sul
(EIGENMANN, 1921). Esse gênero apresenta distribuição geográfica ampla na
região Neotropical e possui aproximadamente uma centena de espécies e
subespécies nominais (GARUTTI & BRITSKI, 2000).
Morfologicamente, as espécies pertencentes ao gênero Astyanax
caracterizam-se por apresentarem duas séries de dentes no pré-maxilar (série
interna com 5 dentes), linha lateral completa e nadadeira caudal nua, coberta de
xxxi
escamas apenas na base (BRITSKI, 1972). Contudo, como elementos decorrentes
da ausência de capturas e de estudos para uma perfeita identificação dos
exemplares e amostras conseguidas, verifica-se que um número grande de
espécies muitas das quais descritas com base em poucos exemplares, tem sido
agrupado nesse gênero (GARUTTI, 1988).
A espécie Astyanax bimaculatus pode ser reconhecida pela presença de uma
mancha ovalada escura na região umeral e outra na região caudal, enquanto A.
fasciatus possui mancha umeral difusa e nadadeiras caudal e dorsal vermelho-vivas
(BRITSKI, 1964; 1972). Astyanax schubarti é muito semelhante morfologicamente a
A. fasciatus, da qual difere pela altura maior do corpo e por possuir nadadeiras
amarelas (BRITSKI, 1964; 1972). Segundo GARUTTI (1988), Astyanax é um gênero
complexo, podendo apresentar morfologia e padrões de coloração muito
semelhantes entre as diferentes espécies.
Na revisão taxonômica das espécies e subespécies de Astyanax realizada
por GARUTTI (1995), as formas identificadas inicialmente como pertencentes ao
grupo A. bimaculatus por possuírem características em comum como a mancha
umeral de forma oval e mancha no pedúnculo caudal estendendo-se à extremidade
dos raios caudais medianos, incluíam formas suficientemente distintas, justificando
que se pudesse atribuir a cada uma delas a categoria de espécie. Esses estudos
resultaram na descrição de 21 espécies novas, entre elas Astyanax maculisquamis
(GARUTTI & BRITSKI, 2000), procedente da bacia do rio Paranã, afluente do rio
Tocantins, assim como estabeleceu a denominação de Astyanax altiparanae para o
lambari-de-rabo-amarelo para exemplares de ocorrência nos componentes da bacia
do alto rio Paraná (GARUTTI, 1995). Até então, a mais recente revisão taxonômica
do gênero Astyanax havia sido realizada por EIGENMANN (1921; 1927) e as
xxxii
publicações posteriores se referiam apenas à descrição de espécies novas ou
citações já conhecidas (GARUTTI, 1995).
1.7 Cultivo do Lambari.
Do ponto de vista de adequação e otimização, a criação do lambari nas
propriedades rurais constitui-se numa excelente alternativa para pequenos e médios
produtores, que procuram módulos de diversificação de suas atividades nas
propriedades. O produto resultante da criação do lambari poderia ter diferentes
destinações, entre as quais a sua utilização no consumo direto, sua industrialização
na forma de conservas, ser utilizado como alimento natural ou forragem na criação
de peixes carnívoros ou ainda ser comercializado como isca viva para a pesca
esportiva, entre outras possibilidades (PAIVA, 1997).
Existem várias alternativas metodológicas para o cultivo do lambari. Pode-se
iniciar a produção com a instalação de um policultivo, estocando o lambari com
outras espécies de peixes, principalmente aquelas não carnívoras de grande porte
como o pacu, por exemplo. Entretanto, dificuldades de manejo, principalmente
durante a despesca dos peixes maiores, podem resultar em significativa mortalidade
dos lambaris, devido às lesões e estresse causados durante a manipulação das
redes de arrasto, sendo, por isso, mais indicada a prática do monocultivo para um
melhor desempenho da criação (PORTO-FORESTI et al., 2001).
A reprodução natural desta espécie pode ser realizada colocando-se os
reprodutores previamente selecionados em tanques de terra. Nesta condição
geralmente utilizam-se abrigos para os peixes como macrófitas (aguapés) em 10 a
15% da área do viveiro, que servem de proteção para as larvas e alevinos após a
eclosão (PORTO-FORESTI et al., 2005). Este método resulta em boa produção de
xxxiii
larvas e alevinos, mas proporciona também algumas dificuldades em relação ao
manejo posterior à reprodução, por dificultar o controle da sobrevivência das larvas
e alevinos e da predação realizada pelos próprios reprodutores, que podem comer
ovos e larvas. Mesmo com a remoção dos reprodutores após a reprodução, a
dificuldade baseia-se na impossibilidade de controle da densidade dos lotes com
idades diferenciadas nos tanques de reprodução natural (PORTO-FORESTI et al.,
2005).
As diferentes espécies do gênero Astyanax foram estudadas por diversos
autores quanto ao aspecto reprodutivo. IHERING E AZEVEDO (1936) relataram que
A. bimaculatus apresentou desova parcelada durante toda a estação chuvosa.
Contrariamente, NOMURA (1975) encontrou evidências de desova total nas
espécies A. fasciatus e A. schubarti estudadas no rio Mogi-Guaçu, Cachoeira de
Emas, SP. Já AGOSTINHO et al. (1984) sugeriram o período de novembro a
fevereiro para ocorrência da desova destas espécies e que esta se processa de
forma parcelada. As estimativas para a o tamanho de maturação sexual para
Astyanax variam de 7,8 a 10,4 cm de comprimento total, conforme descrito em
estudos realizados por NOMURA (1975); AGOSTINHO et al. (1984) e SANTOS et
al. (1991). Estima-se ainda que a idade da primeira maturação gonadal em
condições naturais seja de 3 anos de vida (SANTOS et al., 1991) e em condições de
cultivo esta ocorra logo aos 4 meses de vida (SILVA, 1996).
A ocorrência do processo de reprodução parcelada constituir-se-ia num fator
de importância no cultivo do lambari, podendo viabilizar a obtenção de 3 a 4
desovas durante o ano e possibilitando um incremento substancial na produção.
Contudo, um melhor controle no manejo da larvicultura também deveria ser
desenvolvido, em decorrência do aparecimento de lotes de indivíduos em diferentes
xxxiv
estágios de crescimento. Do mesmo modo, sabe-se que problemas como as altas
densidades decorrentes da falta de controle na produção de alevinos podem levar
ao crescimento diferenciado dos indivíduos. E há também que se considerar a
possibilidade da ocorrência de desovas de indivíduos precoces nascidos no período,
que também irão contribuir para o aparecimento de heterogeneidade no tamanho,
além de possíveis diferenças de tamanho decorrentes de características fisiológicas
manifestadas em certas espécies, diferenciando machos e fêmeas (dimorfismo
sexual).
Outra causa importante da diferenciação do crescimento, neste caso
relacionada ao manejo dos estoques, é o desajuste de espaço físico no viveiro, que
leva a um aumento da competição entre os peixes, agravando a heterogeneidade
dos lotes. Esses casos, embora possam se constituir em fatores depreciativos da
produção, não se apresentam como motivos imperativos para que a reprodução
natural do lambari seja descartada num processo de produção. O método de
despesca seletiva tem sido utilizado como uma alternativa, já que a cada semana do
período reprodutivo é feita uma triagem dos lotes que atingem o tamanho desejado
e estes são dirigidos para o processo de engorda (PORTO-FORESTI et al., 2005).
A heterogeneidade de tamanho do corpo é marcante nos lambaris durante as
fases de alevino e juvenil, mantendo-se esta característica até a fase adulta. Uma
expressão desta heterogeneidade é o dimorfismo sexual que se estabelece na fase
adulta, em que as fêmeas em geral são maiores do que os machos (PORTO-
FORESTI et al., 2005; SATO et al., 2006).
1.8 Reprodução e Desenvolvimento Embrionário.
xxxv
Os peixes se caracterizam por apresentarem todos os mecanismos de
reprodução, principalmente o bissexualismo ou gonocorismo, hermafroditismo e a
partenogênese (VAZZOLER, 1996). Tal característica, peculiar somente deste grupo
de vertebrados, poderia explicar o grande número de espécies existentes com as
mais diversas adaptações anátomo-fisiológicas. Nos teleósteos, o processo de
reprodução ocorre de diferentes formas e, apesar de sua complexidade, as
estruturas fundamentais das gônadas assemelham-se, de modo que elas são
destinadas tanto para a produção de gametas necessários para o processamento
da reprodução, como para a síntese e secreção de esteróides que regulam a
atividade das células germinativas (CASTILHO-ALMEIDA, 1999). A oogênese pode
ser subdividida em diferentes fases: crescimento do ovócito incluindo a
vitelogênese; maturação final do ovócito e ovulação. Na espermatogênese, também
são determinadas escalas de maturação, embora sem a mesma riqueza de detalhes
que as referentes aos ovários (CHAVES, 1991).
Os ovários têm sido órgãos mais estudados que os testículos, possivelmente
devido a elementos de natureza metodológica, em virtude das células da linhagem
espermatogênica não sofrerem variações tão marcantes quanto às da linhagem
ovocitogênica durante seu desenvolvimento. Uma análise histológica de testículos
nunca será um indicador tão preciso do grau de maturação de um indivíduo macho
quanto será a de ovários para as fêmeas (CHAVES, 1991).
Pode-se de dizer que a influência do sexo também se reflete em índices
quantitativos, como a variação no peso e dimensões das gônadas. No caso dos
testículos, esta variação não é tão pronunciada como a que é verificada nos ovários
durante o desenvolvimento, mesmo no caso da ocorrência de um pequeno
acréscimo de peso por produção de fluido seminal ao término da maturação nos
xxxvi
machos. Além de menores variações no peso das gônadas, os machos registram
variações relativamente pequenas também no diâmetro das células em maturação,
dado comumente utilizado na identificação do sexo dos reprodutores nos processos
de hipofização de fêmeas em estações de piscicultura: enquanto os ovócitos
crescem muito, os espermatócitos variam pouco de tamanho (CHAVES, 1991).
1.8.1 Reprodução Induzida ou Hipofização.
Nas espécies reofílicas ou de piracema, o desenvolvimento embrionário pode ser estudado em
laboratório como conseqüência de eventos da reprodução induzidos por hormônios, que levam à ovulação
controlada nas fêmeas e à espermiação nos machos. As dosagens utilizadas dependem do tipo de hormônio
(sintético ou extrato hipofisário), da espécie e do tamanho (peso) dos reprodutores (WOYNAROVICH, 1991)
nos quais o hormônio é aplicado.
A reprodução induzida (artificialmente) do lambari com a utilização de hormônios indutores
mostra-se freqüentemente mais produtiva que a reprodução natural, pois permite um melhor controle,
planejamento e otimização da produção, tanto na fase de alevinagem como na de engorda. Neste
processo, os reprodutores são selecionados conforme as características externas, evidenciadas no
período reprodutivo e são induzidos à liberação de ovócitos e de esperma com o uso de extratos
hipofisários de peixes, aplicando-se duas doses de hormônios conforme as práticas usuais em
estações de piscicultura (WOYNAROVICH, 1991).
Essa técnica de reprodução é facilmente realizada, podendo resultar num aproveitamento
maior que aquele obtido com a reprodução natural. A incubação dos ovos e embriões do lambari
também é realizada seguindo as práticas comuns de reprodução, com a produção de larvas e pós-
larvas alcançando taxas de até 90% de sobrevivência (PORTO-FORESTI et al., 2005). Neste
trabalho, pretendeu-se aprimorar a padronização da técnica de indução hormonal da reprodução do
lambari-de-rabo-amarelo, estabelecer metodologia para a fertilização controlada realizada com base
na extrusão dos gametas e também formalizar protocolos eficientes de produção de larvas e de
facilidade de manejo dos reprodutores. Como decorrência das facilidades de aplicação de tais
práticas, pode-se visualizar a possibilidade da utilização de metodologias de manipulação genética
nesta espécie.
1.8.2 Desenvolvimento Embrionário
Ocorrida a fecundação no processo final de indução e extrusão dos gametas, os ovos são
transferidos para incubadoras com água e aeração adequadas, onde ocorrerá o desenvolvimento até
a eclosão das larvas (PORTO-FORESTI et al., 2005).
O desenvolvimento embrionário dos teleósteos pode ser caracterizado pelas seguintes
etapas: pós-fecundação, segmentação, morfogênese, organogênese inicial, organogênese média,
organogênese tardia e eclosão (RIBEIRO et al., 1995). As etapas de morfogênese e organogênese
inicial incluem as fases de gástrula inicial, intermediária e avançada. As etapas de organogênese
xxxvii
tardia e eclosão estendem-se desde o aparecimento dos primeiros pares de somitos até a eclosão
das larvas (RIBEIRO et al., 1995).
Uma proposta de estudo do processo e das etapas do desenvolvimento embrionário em
Astyanax altiparanae poderia ter como objetivos, além da descrição do próprio evento embriológico,
também a busca de informações sobre os estádios do desenvolvimento nos embriões, para
possibilitar a aplicação das técnicas de manipulação cromossômica de indução de poliploidia (triploidia
e tetraploidia), realizadas por meio de choques de temperatura ou de pressão hidrostática que são
aplicadas no embrião em momentos específicos das fases iniciais do seu desenvolvimento.
1.9 Aplicação de Técnicas de Manipulação Genética
O cultivo do lambari em condições de alta densidade e a possibilidade da
aplicação de metodologias específicas como técnicas de melhoramento genético,
manipulação cromossômica (obtenção de indivíduos estéreis) e para reversão de
sexo (visando à obtenção de linhagens monossexuais), pode certamente resultar na
melhoria da produção, bem como viabilizar a utilização desta espécie em projetos
de conservação e controle ambiental. O interesse na utilização destas técnicas no
cultivo de lambaris merece destaque pelo fato da espécie apresentar gerações
curtas, prole numerosa e ser de fácil manejo em condições de laboratório e de
campo.
Uma perspectiva para o cultivo desta espécie está na utilização das técnicas
de manipulação cromossômica, que podem ser aplicadas com relativa facilidade nos
peixes, pelo fato de que este grupo geralmente apresenta fecundação externa,
favorecendo o manuseio dos gametas (THORGAARD, 1983). Dentre as várias
técnicas de manipulação cromossômica existentes, a triploidia é o tipo mais
difundido na área da piscicultura (FORESTI et al., 1994). O interesse na obtenção
de indivíduos triplóides se deve às características de implicações econômicas que
eles podem apresentar, que podem ser traduzidas na possibilidade de maior
crescimento (WOLTERS, 1982) e em esterilidade nos estoques (TIWARY, 2000).
xxxviii
O maior crescimento dos peixes triplóides (3n) em relação aos diplóides (2n)
decorre principalmente por apresentarem esterilidade gonádica. Durante o período
de maturação sexual os diplóides de ambos os sexos sofrem um retardo no
crescimento, concentrando suas energias no desenvolvimento das gônadas.
Entretanto, as fêmeas triplóides, sendo estéreis, não desenvolvem gônadas
funcionais e, continuando o crescimento em peso e comprimento, acabam por
superar as fêmeas diplóides em 5% a 20% do peso ao final do período de
maturação (TOLEDO-FILHO et al., 1992, 1996). Isso pode ser constatado com
espécies como o bagre do canal (Ictalurus punctatus), a truta, as carpas chinesas e
ainda outros peixes utilizados na aplicação das técnicas de triploidia (CASSANI &
CANTON, 1986; HENKEN et al., 1987; SHEEHAN et al., 1999). Porém, alguns
autores relatam que existem poucas diferenças entre peixes diplóides e triplóides,
principalmente em para características de interesse econômico relacionadas aos
índices de conversão alimentar, ao crescimento e ao peso total dos indivíduos
analisados (KERBY et al., 2002).
Experimentos de aplicação desta técnica de manipulação cromossômica já
vêm sendo realizados de forma preliminar nos lambaris na Estação de Piscicultura
Kabeya em Glicério (SP), desde 1999. Os objetivos principais da proposta
concentram-se na padronização de metodologia para esta espécie que resulte na
obtenção de alto índice de indivíduos triplóides, no controle da heterogeneidade de
tamanho dos indivíduos adultos nos tanques de cultivo e também na utilização da
esterilidade gonádica característica dos triplóides para o controle da densidade de
peixes nos tanques, otimizando assim o cultivo e a produção nesta espécie.
Os indivíduos triplóides, por serem estéreis, também podem ser usados no
controle da poluição genética que freqüentemente ocorre com os escapes ou
xxxix
descartes das iscas vivas no ambiente natural (PORTO-FORESTI et al., 2005). Tal
procedimento impedindo a miscigenação de populações e espécies isoladas
naturalmente pode constituir-se numa estratégia importante para minimizar
possíveis problemas adversos de impacto ambiental e conseqüente “contaminação
genética” de rios e lagos com formas provenientes de sistemas externos.
Os estudos em desenvolvimento, envolvendo novas metodologias de cultivo e
o uso de técnicas de manejo genético certamente poderão abrir novos caminhos
para otimizar o cultivo não só desta espécie, mas de um modo geral na piscicultura,
contribuindo também para a ampliação dos conhecimentos e sua utilização de modo
adequado por parte dos criadores de peixes no Brasil.
Desse modo, também faz parte dos objetivos gerais deste trabalho realizar o
desenvolvimento e a padronização das técnicas genéticas em piscicultura,
promovendo com isso aplicações genéticas no manejo de espécies de interesse
econômico e, ao mesmo tempo, ampliar as possibilidades de aplicação das técnicas
de biotecnologia disponíveis, no cultivo de peixes.
1.10 Potencial Biológico e Econômico do Astyanax altiparanae
A pesca do tucunaré constitui um atrativo turístico da pesca esportiva e no
Estado de São Paulo, a região dos Grandes Lagos, formados pelo represamento de
grandes rios da região (Noroeste Paulista) está se transformando em grande área
turística. Atualmente, podem ali ser encontradas duas espécies de peixes
esportivos, o tucunaré amarelo (Cicla ocellaris) e o tucunaré azul (Cicla temensis),
ambas originárias da bacia amazônica. Uma vez introduzidas nas bacias do Alto
Paraná e Médio e Baixo Tietê, estas se adaptaram muito bem nos ambientes de
águas lênticas dos reservatórios. São espécies carnívoras, consideradas vorazes e,
xl
devido ao seu hábito predador, afetam as populações nativas de peixes dessas
bacias hidrográficas, já fortemente alteradas pelo impacto dos barramentos
(PORTO-FORESTI et al., 2005).
Para muitos pescadores, a pesca do tucunaré é considerada uma arte e para
tal, diferentes instrumentos de captura como caniços, molinetes e iscas artificiais de
todas as cores e formatos são utilizados. Mas, além de fugir ao menor ruído, este
peixe, muito exigente em relação à isca, dificilmente consegue resistir a um lambari.
Contudo, com a diminuição das populações destes pequenos peixes nos rios e com
a edição de leis ambientais que não permitem a pesca indiscriminada na natureza,
aumenta a cada dia a procura por lambaris para serem usados como isca para a
pesca esportiva (PORTO-FORESTI et al., 2001).
Até recentemente, os lambaris eram considerados por muitos produtores
como elementos indesejáveis nos viveiros por invadirem e colonizarem rapidamente
o ambiente de criação dos peixes nobres (PAIVA, 1997). Nos tanques de criação,
competem por espaço e alimento com as espécies cultivadas. O aproveitamento
destes pequenos peixes se resumia, então, à alegria dos funcionários nos dias de
despesca, quando a sobra da captura formada pelos pequenos peixes era
geralmente descartada. Este conceito foi mudando a partir de observações mais
acuradas durante o manejo dos tanques de cultivo. Casos de associação de
lambaris com tilápias não revertidas resultaram no controle da população destas,
uma vez que os lambaris predavam os ovos, as larvas e pós-larvas das tilápias
(PORTO-FORESTI et al., 2005).
Por outro lado, a ocorrência natural dos lambaris nos viveiros também passou
a ser aproveitada por alguns produtores, com a sua comercialização na forma
eviscerada e sem escamas, para bares e lanchonetes. Tais fatos corriqueiros na
xli
piscicultura, que algumas vezes resultam de soluções criativas por parte do
produtor, não têm resultado, contudo, em empreitadas para a criação de lambaris
em monocultivo (PORTO-FORESTI et al., 2005).
Levando-se em conta a sua fácil reprodução, a boa taxa de sobrevivência das
larvas e alevinos, o rápido crescimento e o hábito alimentar onívoro, as atividades
de produção de lambaris para a produção de iscas vivas ou mesmo para o consumo
direto ou processamento pode ser considerada uma boa opção de negócio.
O custo geral da produção de peixes nas pisciculturas depende de diferentes
fatores, determinados por elementos que envolvem aspectos gerais de economia e
componentes locais do mercado. Produtores que têm seus estabelecimentos nas
regiões onde a pesca esportiva é praticada poderiam, como alternativa, ter maior
retorno e garantia de sucesso no seu empreendimento se houvesse envolvimento
também com atividades relacionadas ao comércio de iscas vivas. E haveria ainda a
possibilidade de venda do produto na forma de congelados ou enlatados, após
processamento adequado, conforme comentado por PORTO-FORESTI et al.
(2005).
Existe ainda um outro mercado que poderá dar espaço ao cultivo do lambari,
que é a indústria da farinha de peixe, onde as exigências de produção de um
produto de boa qualidade no mercado mundial são cada vez mais urgentes.
Segundo a FAO, a aqüicultura consome 35% da farinha de peixe obtida no mundo
todo. Em 2006 foram produzidas 6 milhões de toneladas de farinha de peixe e 1
milhão de toneladas de óleo de peixe (SORVIG, 2007).
A procura de subprodutos da pesca entre as grandes marcas de fábricas de
ração animal vem aumentando a cada ano, acirrando a disputa por esta matéria-
prima e considera-se que o cultivo do lambari poderia se adequar perfeitamente às
xlii
condições exigidas por esse mercado. Um produto de custos competitivos teria por
base nesta espécie a fácil obtenção de alevinos, o crescimento rápido, a rusticidade,
o fácil manejo e outras características que são observadas dia a dia pelos
produtores. Além disso, esta espécie se adapta facilmente ao arraçoamento com
rações formuladas com base em produtos de origem vegetal, o que reduziria de
modo significativo os custos com alimentação.
Considera-se, então que o estabelecimento de conhecimentos aprofundados
sobre as características biológicas das espécies de peixes, neste caso
representadas pelo lambari-do-rabo-amarelo (Astyanax altiparanae) e a utilização
destas informações em associação à aplicação de técnicas adequadas de manejo e
de reprodução, de melhoramento genético dos estoques e de desenvolvimento e
aplicação de protocolos específicos de metodologias em biotecnologia, poderão
resultar na formulação de um modelo de desenvolvimento e incentivo para os
piscicultores, ampliando as possibilidades de crescimento desta área.
1.11 Objetivos
Este trabalho teve por objetivo geral a caracterização e aprimoramento do
processo de reprodução induzida em Astyanax altiparanae (lambari-de-rabo-
amarelo), visando o estabelecimento de procedimentos mais eficientes de produção
para utilização no cultivo intensivo desta espécie e a adaptação de protocolos de
fertilização controlada e desenvolvimento embrionário, para viabilizar a aplicação de
técnicas de biomanipulação do genoma. Assim, para formular informações e
direcionar sua aplicação em programas de cultivo, pretendeu-se:
xliii
a) caracterizar, de modo detalhado, o processo da reprodução induzida pela
aplicação de hormônios hipofisários e sintéticos em Astyanax altiparanae, para
estabelecer protocolos adequados da técnica de reprodução induzida,
caracterizando as fontes hormonais, dosagens, razão sexual viável, hora-grau e
extrusão de gametas;
b) descrever as etapas do desenvolvimento embrionário da espécie nas suas
diferentes transformações, caracterizando a fertilização, as fases embrionária e pré-
larval até a eclosão, visando com isso estabelecer os tempos iniciais do processo de
clivagem, para permitir a aplicação das técnicas de manipulação genética;
c) realizar, se possível, testes de aplicação das técnicas de manipulação genética,
indutoras de modificações do grau de ploidia dos indivíduos com o uso de choques
de temperatura e de pressão hidrostática, para a obtenção de indivíduos triplóides
ou tetraplóides, visando estabelecer um protocolo de utilização desta metodologia
de indução de poliploidia para esta espécie.
xliv
MATERIAL E MÉTODOS
xlv
2 MATERIAL E MÉTODOS
2.1 Material de Estudo
A espécie de peixe escolhida para a realização dos estudos programados foi Astyanax
altiparanae (lambari-do-rabo-amarelo) pertence ao gênero Astyanax, da família Characidae,
amplamente distribuído pela América do Sul, na região Neotropical. Vários representantes do
grupo ocorrem na região, mas a escolha da espécie deveu-se à sua ampla ocorrência nos
componentes da Bacia do Alto Rio Paraná. Na Figura 1 abaixo, está representado um
exemplar de Astyanax altiparanae.
Figura 1. Exemplar adulto de Astyanax altiparanae
2.2 Estações de Piscicultura
As atividades de campo executadas no presente trabalho foram realizadas em parte no
Laboratório de Reprodução de Peixes da Estação de Piscicultura Kabeya, localizada no
xlvi
município de Glicério, SP e também no Laboratório de Reprodução de Peixes da Estação de
Piscicultura da GA-Alevinos, localizado nas dependências da Usina Hidrelétrica Mário Lopes
Leão (AES-Tietê), município de Promissão-SP (Figuras 2a e 2b). As atividades de análise
laboratorial foram realizadas no Laboratório de Biologia e Genética de Peixes, do Instituto de
Biociências da Unesp, campus de Botucatu-SP e no Laboratório de Genética de Peixes, da
Faculdade de Ciências da Unesp, campus de Bauru-SP .
Figura 2. Locais da realização das atividades de campo, (a) piscicultura Kabeya localizada no município de
Glicério-SP; (b) piscicultura GA Alevinos, localizada na usina hidrelétrica de Promissão, SP.
2.3 Métodos
2.3.1 Metodologias da Indução da Reprodução
a
b
xlvii
Para a realização dos experimentos de reprodução induzida foram utilizados estoques
de reprodutores de Astyanax altiparanae mantidos na Estação de Piscicultura Kabeya e
também na Estação de Piscicultura da GA-Alevinos. Foram utilizados os métodos de indução
da reprodução por meio da aplicação de extratos hipofisários naturais seguindo a metodologia
descrita por WOYNAROVICH (1986); também foram usados hormônios sintéticos para
facilitação da ovulação das fêmeas e espermiação dos machos, gerando dados para
comparação dos resultados de fecundação e geração de proles.
Os exemplares de Astyanax altiparanae utilizados no processo de reprodução foram
selecionados com base nos caracteres sexuais secundários dos animais, indicadores do
processo de maturação gonadal (Figura 3).
As fêmeas maduras apresentaram como característica marcante o abdome proeminente
e bastante desenvolvido, quando comparadas ao dos indivíduos do sexo masculino, além da
presença de intensa vascularização, conforme é mostrado na Figura 4 (a). Os machos de A.
altiparanae apresentam o corpo mais esguio e o abdômen normalmente desenvolvido (Figura
4b). Para sua identificação visual em relação às fêmeas, verificou-se que os indivíduos
machos apresentam espículas nos raios da nadadeira anal durante o período reprodutivo
(Figura 5), enquanto nas fêmeas esta nadadeira apresenta-se lisa, sem a presença de espículas
(Figura 6).
Outra diferença morfológica entre fêmeas e machos observada nesta espécie de lambari,
que possibilita a discriminação dos sexos refere-se aos padrões de crescimento dos indivíduos.
Durante a fase de crescimento juvenil, as fêmeas atingem comprimento total maior que o dos
machos (Figura 7), o que se constituiria numa característica de interesse a ser considerada no
estabelecimento de programas de cultivo e exploração zootécnica desta espécie.
xlviii
Figura 3. Seleção e manejo de reprodutores de Astyanax altiparanae (a); em (b), sexagem dos indivíduos e sua
separação em recipientes apropriados.
Figura 4. Caracteres sexuais secundários relacionados à identificação do sexo em indivíduos adultos de
Astyanax altiparanae. Em (a), exemplar de indivíduo fêmea com o abdômen bastante desenvolvido e
intensamente vascularizado; em (b), exemplar de indivíduo macho apresentando o abdômen menos dilatado que
o da fêmea e manuseio da nadadeira anal para constatação de ocorrência da “aspereza” característica.
a
b
a
b
a
b
c
d
xlix
Figura 5. Observação em microscopia de pequeno aumento da nadadeira anal de indivíduo macho de Astyanax
altiparanae, mostrando a presença dos ganchos da estrutura, característica sexual secundária que indica que o
indivíduo está maduro. Em (a) e (b) sem utilização de coloração; em (c) e (d), com utilização de coloração por
azul de metileno.
a
b
c
d
l
Figura 6. Observação em microscopia de pequeno aumento da nadadeira anal de indivíduo fêmea de Astyanax
altiparanae, demonstrando a ausência de ganchos nas extremidades da estrutura óssea deste componente
anatômico nestes indivíduos. Em (a) e (b) sem utilização de coloração; em (c) e (d), com utilização de coloração
por azul de metileno.
Figura 7. Aspectos externos e internos de indivíduos adultos de Astyanax altiparanae. Em (a), caracterização da
diferença de tamanho entre exemplares adultos de macho (esquerda) e fêmea (direita). Em b, visualização da
a
b
li
diferenças no tamanho e na distribuição das gônadas na cavidade abdominal (setas) em exemplares de macho
(esquerda) e de fêmea (direita).
2.3.2 Reprodução Induzida – “Desova Livre”
A denominação “desova livre” utilizada no presente trabalho de reprodução artificial
de peixes é caracterizada quando fêmeas e machos recebem doses específicas de hormônios e
são colocados juntos em aquários ou incubadoras, para que possam realizar as atividades de
reprodução (Figura 8). Inicialmente, machos e fêmeas foram colocados em aquários separados
até a aplicação da primeira dose de hormônio e colocados juntos nos aquários após a segunda
dose de hormônio. Finalizada a administração das dosagens hormonais, após a segunda
dosagem a temperatura da água foi registrada a cada 1 hora. Esta contagem de tempo e
registro da temperatura da água permite estabelecer uma relação entre tempo e ação dos
hormônios, denominada “hora grau”.
Estudos anteriores determinaram valores entre 180 a 200 de “hora-grau” para a
ocorrência da desova livre no lambari. Após as aplicações hormonais e decorrido o período de
tempo determinado, a reprodução pode ocorrer naturalmente sem a necessidade de
manipulação e extrusão dos gametas. Os reprodutores são então retirados dos aquários ou
incubadoras após a ocorrência da desova, evitando-se a possibilidade de canibalismo da prole
pelos parentais. Em alguns casos, as fêmeas de lambari podem “abortar” a desova, liberando
os ovócitos logo após a administração da primeira dose de hormônio.
lii
Figura 8. Casais de Astyanax altiparanae mantidos na incubadora para realização da desova livre, acomodados
em uma tela para facilitação da retirada dos indivíduos da incubadora após a desova, para evitar possível
canibalismo da prole pelos parentais.
Na aplicação desta técnica reprodutiva, utilizou-se o método da hipofisação com o uso
de extrato bruto de hipófise de carpa, aplicando-se dosagens fracionadas nas fêmeas e nos
machos (WOYNAROVICH, 1986). O extrato de hipófise foi preparado a partir de material
(hipófises) extraído de outros peixes em estado de reprodução (Figura 9a). As glândulas, que
são conservadas secas, são maceradas e o produto suspenso em soro fisiológico sendo então
aplicado na região da base da nadadeira peitoral dos animais (Figura 9b). As dosagens foram
liii
administradas nas fêmeas e nos machos em intervalos que variaram de 8 a 12 horas entre a
primeira e a segunda aplicação, conforme descrito nos tratamentos ilustrados na Tabela 1.
A variação nos intervalos das aplicações entre as primeiras e segundas doses de
hormônio é determinada conforme a resposta de ovulação das fêmeas.
Figura 9. (a) Preparação do extrato contendo os hormônios indutores da reprodução, utilizando-se hipófises de
carpa; (b) aplicação do hormônio para indução da reprodução, realizada na base da nadadeira peitoral do animal.
Tabela 1. Aplicação, dosagens de extrato bruto diluído de hipófise e intervalo entre as aplicações em fêmeas e
machos de Astyanax altiparanae, conforme tratamentos 1 e 2.
TRATAMENTOS APLICAÇÃO DOSAGEM INTERVALO
1
(Fêmeas)
Primeira Dosagem (1)
Segunda Dosagem (2)
1,5 mg de hipófise/kg de peixe
4,0 mg de hipófise/kg de peixe
-
8 HORAS/12 HORAS
2
(Machos)
Primeira Dosagem (1)
Segunda Dosagem (2)
1,0 mg de hipófise/kg de peixe
1,0 mg de hipófise/kg de peixe
-
8 HORAS/12 HORAS
a
b
liv
Neste método de reprodução induzida, os reprodutores são normalmente colocados nos
tanques na proporção de 2 machos para cada fêmea (2:1). Tal proporção, embora considerada
em bases empíricas aplica-se como a proporção sexual mais razoável para se atingir à melhor
taxa de fecundidade na “desova livre”. Para contrapor tal método empírico, foram testadas
diferentes razões sexuais para observação da influência determinada pelas diferentes
proporções de machos para cada fêmea, com observação posterior das taxas de fertilização de
ovos e porcentagem de nascimento de larvas obtidas. Na tabela abaixo (Tabela 2), está
colocada a proporção de sexos e a razão sexual nos testes realizados de “desova livre”. A
realização de testes com a variação apenas na proporção dos machos deve-se ao fato de que a
produção de esperma é bastante restrita nesta espécie, representando um fator determinante e
limitante nos programas de reprodução com vistas à produção intensiva.
Tabela 2. Proporção de sexos e razão sexual dos testes realizados na “desova livre” de Astyanax altiparanae.
TRATAMENTOS MACHOS FÊMEAS RAZÃO SEXUAL
M1 20 20 1:1
Réplica M1 20 20 1:1
M2 40 20 2:1
Réplica M2 40 20 2:1
M3 60 20 3:1
Réplica M3 60 20 3:1
M4 80 20 4:1
Réplica M4 80 20 4:1
* As dosagens e aplicações nestes testes repetem a metodologia descrita acima para a reprodução induzida de
desova livre.
2.3.3 Reprodução Induzida – Extrusão de Gametas
lv
Após a seleção de reprodutores, a realização do processo de indução da reprodução
artificial de peixes por meio da extrusão de gametas inicia-se com a separação dos lotes de
machos e fêmeas, que devem ser estocados em diferentes recipientes e mantidos isolados.
Adotou-se como padrão a utilização de lotes de 500 peixes para cada evento de reprodução
induzida por extrusão de gametas, selecionando-se entre 100 fêmeas e 400 machos,
aproximadamente.
No processo de indução da reprodução do lambari, utilizou-se preferencialmente
hormônio sintético a base de gonadotrofina coriônica humana (hCG) cuja ação é praticamente
idêntica à do hormônio luteinizante (LH) presente na hipófise. Neste caso, utilizou-se o
hormônio Profasi HP godadotrofina coriônica humana (hCG) altamente purificada conforme
descrição do fabricante, produto este facilmente encontrado nas farmácias de alopatia. Este
hormônio sintético apresenta-se em ampolas de 2.000, 5.000 e 10.000UI (Unidades
Internacionais de gonadotrofina coriônica humana), acompanhadas de ampola de solução de
diluição com a seguinte composição: cloreto de sódio – 9 mg e água destilada – 1 ml. Como a
reprodução do lambari é realizada em lotes de aproximadamente 500 animais, por
conveniência optou-se pelas ampolas de 2.000 UI, evitando sobras e a conseqüente perda de
viabilidade do produto que é facilmente degradado após a sua manipulação. O hormônio
sintético foi preparado sempre imediatamente antes do uso e aplicado conforme o esquema
apresentado na Figura 10.
Hormônio Sintético (hCG)
Ampolas de 2000 UI
lvi
Exemplo
* Exemplo utilizado para a primeira dosagem hormonal em fêmeas de lambari
Figura 10. Esquema de aplicação do hormônio sintético (hCG) na indução de reprodução em Astyanax
altiparanae.
As dosagens foram aplicadas utilizando-se doses fracionadas nas fêmeas e nos
machos. O hormônio sintético foi diluído em soro fisiológico e aplicado na região da base da
nadadeira peitoral dos animais (Figura 11). As injeções foram administradas nas fêmeas e nos
machos, com intervalo de 12 horas entre a primeira e segunda aplicação, conforme descrito
nos tratamentos ilustrados na Tabela 3.
PRIMEIRA DOSE (FÊMEAS) = 1 UI/g
100 FÊMEAS X 10 g de peso médio = 1000 gramas/peixe
1 UI/g X 1000 g = 1000 UI
Diluir o
hormônio em 1 ml de solvente (solução estoque), pegar 0,5 ml desta solução
estoque e diluir em 9,5 ml de soro fisiológico. Aplicar 0,1 ml da solução final em cada
fêmea na dosagem de 1 UI/g.
lvii
Figura 11. Aplicação do hormônio para a indução da reprodução. A agulha é introduzida na base da nadadeira
peitoral do animal.
Tabela 3. Dosagens e aplicações de hormônio sintético em fêmeas e machos de Astyanax altiparanae, conforme
tratamentos 1 e 2.
TRATAMENTOS APLICAÇÃO DOSAGEM INTERVALO
1
(Fêmeas)
Primeira Dosagem (1)
Segunda Dosagem (2)
1,0 UI de hormônio/g de peixe
3,0 UI de hormônio/g de peixe
-
12 HORAS
2
(Machos)
Primeira Dosagem (1)
Segunda Dosagem (2)
Sem aplicação
2,5 UI de hormônio/g de peixe
-
12 HORAS (relação Fêmea)
Realizada a administração das dosagens hormonais, a temperatura da água foi
registrada a cada 1 hora, após a aplicação da segunda dosagem. Com isso, foi determinada a
hora-grau para a desova do lambari, estabelecida entre os valores de 140 e 160 e atingido este
valor, foi realizada a extrusão dos gametas das fêmeas e dos machos. Inicialmente, as fêmeas
foram retiradas dos aquários e muito bem enxugadas com pano seco e limpo, para que se
iniciasse o procedimento da extrusão dos ovócitos sem a presença de água, evitando a
ativação do fechamento da micrópila do ovócito. Este procedimento é realizado exercendo-se
pressão suave com os dedos no abdômen dos animais na direção antero-posterior (Figura 12),
de modo a provocar a liberação dos ovócitos e do esperma no recipiente coletor.
Os gametas femininos foram depositados em placas de Petri ou em cubas de louça
(Figura 12), aguardando os procedimentos de extrusão dos gametas dos machos, que são
lviii
depositados sobre os ovócitos (Figura 13). Conforme verificado na realização de protocolos
preliminares de reprodução induzida desta espécie, constatou-se que os indivíduos do sexo
masculino do lambari liberam pouca quantidade de esperma durante a extrusão. Para a
situação controle dos experimentos utilizou-se então o esperma colhido de 2 a 3 machos para
cada fêmea, procurando garantir mais segurança de sucesso no processo da reprodução.
Realizada a extrusão dos gametas, procedeu-se à homogeneização dos mesmos que
pode ser feita com o auxílio de uma pena grande ou simplesmente utilizando os dedos das
mãos previamente lavados e secos (Figura 14a). Em seguida, na fase final do processo,
adicionou-se água à mistura dos gametas contidos no recipiente para a ativação destes e
ocorrência da fertilização (Figura 14b). Após cerca de 2 minutos da mistura com água,
iniciou-se o processo de lavagem dos ovos em água corrente no mesmo recipiente; esta
atividade prosseguiu por alguns minutos, até a completa eliminação de restos celulares. Os
ovos foram então depositados em incubadoras de cerca de 160 litros, na proporção de 10
desovas por incubadora (Figura 15a e 15b), quando foram realizados os experimentos gerais
de viabilidade do processo utilizado. Foram realizadas seguidas amostragens de embriões nas
primeiras horas da incubação para acompanhamento e registro das taxas de fertilização.
lix
Figura 12. Extrusão dos ovócitos de fêmeas do lambari, Astyanax altiparanae.
lx
Figura 13. Extrusão dos gametas masculinos do lambari, Astyanax altiparanae, que são depositados sobre
os ovócitos das fêmeas.
Figura 14. (a) Homogeneização dos gametas do lambari, Astyanax altiparanae, com o dedo; (b) adição de água
da incubadora à mistura de gametas, para efetivação do processo de fertilização dos ovócitos.
Figura 15. (a
) Ovos do lambari após a
fertilização, no pr
ocesso de limpeza em água
corrente; (b
) incubadoras de fibra de vidro,
com capacidade aproximada de 160 litros,
onde foram depositados os ovos de
Astyanax altiparanae
para o seu
desenvolvimento até a eclosão e nascimento
das larvas.
a
b
a
b
lxi
2.3.4 Desenvolvimento Embrionário
Durante o período de desenvolvimento embrionário que se realiza nas incubadoras de
ovos, foram realizadas coletas de amostras de embriões em diferentes tempos de incubação.
Inicialmente, na primeira hora do desenvolvimento, foram coletados ovos a cada 10 minutos,
a partir do ponto zero (fertilização). Após a primeira hora, os ovos foram coletados a cada 1
hora até a eclosão das larvas. Os ovos coletados nos devidos tempos foram fixados em
solução de KARNOVISK (1965) por 48 horas a 4°C, lavados e estocados em álcool 70% para
posterior coloração em hematoxilina e análise em microscopia de luz.
Durante a análise do desenvolvimento embrionário da espécie estudada, realizada por
meio da microscopia de luz, foram geradas tabelas que representam a morfologia e as fases do
desenvolvimento embrionário desde as fases iniciais do embrião até a eclosão da larva. Os
protocolos de estudo do desenvolvimento embrionário do lambari poderão fornecer
informações detalhadas para a possível aplicação das técnicas de manipulação cromossômica,
principalmente para a indução de poliploidia que exige a aplicação de choques térmicos ou de
pressão hidrostática em momentos determinados do período inicial da clivagem do embrião.
lxii
2.3.5 Larvicultura
Após a eclosão, as larvas permaneceram nas incubadoras até atingirem a fase de pós-
larva. A sobrevivência das larvas foi acompanhada pela observação do desenvolvimento até a
absorção total do saco vitelínico e início da alimentação exógena, ocorrido com cerca de 18
horas.
2.3.6 Testes de Aplicação das Técnicas de Manipulação Cromossômica
As técnicas de poliploidia empregadas foram aplicadas somente após o
estabelecimento dos protocolos de desenvolvimento embrionário da espécie, onde foram
estimados os tempos reais das fases do desenvolvimento e início da clivagem nos embriões.
Com a caracterização do tempo e das transformações embrionárias, tentativas de indução de
triploidia e de tetraploidia foram realizados com a utilização de tratamentos com altas e baixas
temperaturas da água, bem como com a aplicação de choques de pressão hidrostática de
diferentes intensidades.
Para indução da triploidia, foram aplicados choques de temperatura e pressão no início
do processo de desenvolvimento precisamente após a fecundação, na tentativa de determinar a
retenção do segundo corpúsculo polar do óvulo e permitir, assim, a formação de embriões
com dois lotes genômicos maternos e um paterno. O protocolo utilizado foi formulado com
base nas informações copiladas a partir dos trabalhos de THORGAARD (1983); TOLEDO-
FILHO (1996); MOREIRA (2001) e de HUERGO (2004), entre outros.
lxiii
A indução de tetraploidia foi testada com a realização de aplicação dos choques de
temperatura e pressão hidrostática antecedendo à primeira clivagem do ovo, que proporciona a
fusão dos dois blastômeros em formação no início do desenvolvimento embrionário,
possibilitando a origem de embriões tetraplóides que apresentam o dobro do lote genômico
normal da espécie. O protocolo utilizado foi formulado com base nas informações copiladas a
partir dos trabalhos de THORGAARD (1983); TOLEDO-FILHO (1996) e de MOREIRA
(2001), entre outros, realizados com diferentes espécies.
A comprovação da efetividade dos tratamentos de triploidia e tetraploidia foi realizada
por análises citogenéticas, sendo utilizada para obtenção de cromossomos metafásicos a
técnica descrita por FORESTI et al. (1993). Para caracterização de poliploidia, foi utilizada a
coloração das células pela impregnação com nitrato de Prata, segundo a técnica descrita por
HOWELL & BLACK (1980) e utilizada por FORESTI et al., (1994) no estudo da triploidia
induzida em pacu, Piaractus mesopotamicus.
Foram utilizadas duas desovas para cada tratamento ou seja, óvulos de duas fêmeas
fertilizadas para cada teste, estimando-se entre 5.000 a 6.000 ovos para cada tratamento,
obtidos de fêmeas com peso entre 15 a 25 gramas.
2.3.6.1 Choques de Temperatura
Os testes de indução de triploidia e tetraploidia por choques de temperatura, foram
realizados de acordo com os protocolos apresentados nas Tabelas 4 e 5.
lxiv
Tabela 4. Protocolo de testes de indução de triploidia em Astyanax altiparanae, com a aplicação de choques
com diferentes temperaturas e tempos de exposição.
TRATAMENTO TEMPERATURA DO
CHOQUE
INÍCIO DO CHOQUE TEMPO DE
EXPOSIÇÃO
TRI 1
38°C 2′ após fecundação
3 minutos
TRI 2
38°C 5′ após fecundação
3 minutos
TRI 3
40°C 2′ após fecundação
3 minutos
TRI 4
40°C 5′ após fecundação
3 minutos
TRI 5
6°C 2′ após fecundação
30 minutos
TRI 6
6°C 5′ após fecundação
30 minutos
CONTROLE Ambiente - -
Tabela 5. Protocolo de testes de indução de tetraploidia em Astyanax altiparanae, com a aplicação de choques
com diferentes temperaturas e tempos de exposição.
TRATAMENTO TEMPERATURA DO
CHOQUE
INÍCIO DO CHOQUE TEMPO DE
EXPOSIÇÃO
TETRA 1
36°C 20′ após fecundação
1 minuto
TETRA 2
36°C 20′ após fecundação
5 minutos
TETRA 3
38°C 20′ após fecundação
1 minuto
TETRA 4
38°C 20′ após fecundação
5 minutos
TETRA 5
6°C 20′ após fecundação
60 minutos
TETRA 6
6°C 20′ após fecundação
60 minutos
CONTROLE ambiente - -
Para a realização dos choques térmicos, os tratamentos a quente foram realizados
utilizando-se uma placa de aquecimento mostrada na Figura 16 (Marca Corning modelo
Stirrer Hot Plate) e frascos (bequers) de 500 ml de volume com água da incubadoura, onde
foram colocados os ovos de cada tratamento do experimento. A placa de aquecimento
permitiu a estabilização das temperaturas estabelecidas nos protocolos dos testes. Para a
realização dos choques a frio utilizou-se água da incubadora resfriada na geladeira (Figura
lxv
17). Durante o tempo de exposição dos ovos a baixas temperaturas, os recipientes também
foram colocados na geladeira, mantendo-se as temperaturas estabelecidas nos protocolos dos
testes.
Tanto nos choques quentes quanto frios, as temperaturas dos tratamentos foram
controladas utilizando-se termômetros com bulbo de mercúrio, evitando-se possíveis
variações que poderiam influenciar na efetividade dos choques térmicos.
A efetividade dos tratamentos com choques de temperatura, foi avaliada por meio da taxa de
sobrevivência de alevinos de lambari, para testar a viabilidade na aplicação das técnicas observando-
se a ocorrência de triplóides e tetraplóides e o nível de letalidade decorrente dos tratamentos em
comparação ao grupo controle.
Figura 16. Placa de aquecimento, utilizada para a realização dos tratamentos com choques de altas temperaturas.
O termômetro colocado no recipiente foi utilizado para controle e monitoramento da temperatura durante o
tratamento de choque térmico quente sobre embriões de Astyanax altiparanae.
lxvi
Figura 17. Realização dos choques térmicos em embriões de Astyanax altiparanae submetidos à baixa
temperatura. A temperatura foi controlada por termômetros mergulhados na água contida nos recipientes.
2.3.6.2 Choques de Pressão Hidrostática
Os testes de indução de triploidia e de tetraploidia foram realizados conforme
protocolos apresentados nas Tabelas 6 e 7. Os tratamentos com pressão hidrostática utilizados
estão expressos em valores de psi (1 psi = 0,7031 Kgf /cm
2
).
Tabela 6. Protocolo dos testes de triploidia utilizados para Astyanax altiparanae, com os embriões
submetidos a choques de pressão hidrostática aplicados por diferentes tempos.
TRATAMENTO Intensidade de
pressão (psi)
Início do choque Tempo de
exposição
TRI 1 3000
2′ após fecundação
5’ minutos
TRI 2 4000
2′ após fecundação
2’ minutos
TRI 3 4000
2′ após fecundação
5’ minutos
TRI 4 4000
5′ após fecundação
2’ minutos
TRI 5 4000
5′ após fecundação
5’ minutos
TRI 6 4000
8′ após fecundação
5’ minutos
TRI 7 5000
5′ após fecundação
5’ minutos
CONTROLE
sem choque
- -
Tabela 7.
Protocolo dos testes de tetraploidia utilizados para Astyanax altiparanae, com os embriões
submetidos a choques de pressão hidrostática aplicados por diferentes tempos.
TRATAMENTO Intensidade de Início do choque Tempo de
lxvii
pressão (psi) exposição
TETRA 1 3000
20′ após fecundação
5’ minutos
TETRA 2 4000
20′ após fecundação
2’ minutos
TETRA 3 4000
20′ após fecundação
5’ minutos
TETRA 4 4000
20′ após fecundação
2’ minutos
TETRA 5 4000
20′ após fecundação
5’ minutos
TETRA 6 4000
20′ após fecundação
8’ minutos
TETRA 7 5000
20′ após fecundação
5’ minutos
CONTROLE sem choque - -
Para a realização dos testes de poliploidia utilizando choques de pressão hidrostática, utilizou-
se uma câmara de aço com volume aproximado de 300 ml, equipada com êmbolo pelo qual foi
exercida a força produzida por prensa hidráulica (Figura 18) onde foram colocados os ovos de
Astyanax altiparanae de cada tratamento nos testes de triploidia e tetraploidia.
Os protocolos utilizados incluíram apenas os testes considerados não letais em observações
prévias à realização dos experimentos do trabalho. A exclusão de cada teste é comentada no capítulo
dos resultados.
A efetividade dos tratamentos foi avaliada por meio da determinação da taxa de sobrevivência
dos alevinos, que forneceu indicações sobre a viabilidade da aplicação das técnicas. Foi registrada a
ocorrência de indivíduos triplóides e tetraplóides e o nível de letalidade decorrente dos tratamentos,
em comparação ao grupo controle.
a
b
c
lxviii
Figura 18. (a) Aparelho utilizado para produção de pressão hidrostática (b) apresentando câmara de
aço com volume de cerca de 300 ml, equipada com êmbolo pelo qual é exercida a força produzida por
prensa hidráulica, para atingir os níveis de pressão exigidos e medidos em psi. Em (c), detalhe da
câmara, onde são depositados os ovos de Astyanax altiparanae.
2.3.7 Análises Citogenéticas
As análises citogenéticas foram realizadas com o objetivo de identificar a ploidia dos
indivíduos nos tratamentos e no grupo controle. Foram utilizados os métodos de estimulação de
mitoses (LOZANO et al., 1988; OLIVEIRA et al., 1988), preparações diretas de células renais in vitro
(FORESTI et al., 1993), preparações diretas de células renais in vivo (FORESTI et al., 1981) e
coloração das regiões organizadoras de nucléolo (NORs) com Nitrato de Prata (HOWELL & BLACK,
1980). Algumas modificações foram realizadas nessas técnicas, ajustando-as para a espécie
estudada.
2.3.7.1 Estimulação de Mitoses
Em algumas preparações cromossômicas foi utilizada a técnica de estimulação de divisão
celular para obtenção de maior número de mitoses nos indivíduos, que constou de injeção de solução
de fermento biológico segundo OLIVEIRA et al. (1988). O procedimento utilizado consistiu em:
1) preparar uma solução de fermento biológico (Fleischmann) na seguinte proporção: 0,5 g de
fermento, 0,5 g de açúcar e 7 ml de água destilada;
2) incubar a solução em uma estufa (37°C) por cerca de 30 min;
lxix
3) injetar a solução na região dorso-lateral do peixe, na proporção de 1 ml por 100 g de peso do
animal. A injeção da quantidade total é realizada em duas doses, dividida e aplicada no período de 48
h;
4) manter o animal em aquário bem aerado.
2.3.7.2 Preparação Direta para Obtenção de Cromossomos Mitóticos de Peixes
Técnica de obtenção de cromossomos metafásicos in vivo
A técnica utilizada para obtenção de cromossomos metafásicos in vivo foi a descrita por
FORESTI et al. (1981) e utilizada com algumas modificações. O procedimento consiste em:
1) injetar, na região intra-abdominal, solução aquosa de colchicina (0,025%) na proporção de
aproximadamente 1 ml / 100 g de peso do animal;
2) deixar o peixe em aquário bem aerado, por um período de 50 min;
3) sacrificar o animal, retirando a parte anterior do rim. Transferir o material para uma pequena cuba
de vidro, contendo 7 ml de uma solução hipotônica de KCL (0,075M);
4) dissociar o material com o auxílio de pinças de dissecção, complementando esse processo com o
auxílio de uma pipeta Pasteur, até que se obtenha uma solução aquosa homogênea;
5) transferir a solução obtida para um tubo de centrífuga e depositar este no interior de uma estufa a
37°C por 21 min;
6) retirar o tubo da estufa, colocando 7 gotas de fixador gelado (metanol e ácido acético na proporção
de 3:1 respectivamente); agitar levemente a mistura com uma pipeta Pasteur e deixar repousar por 5
min à temperatura ambiente;
7) adicionar cerca de 6 ml de fixador e novamente agitar a mistura; levar à centrífuga (900 ± 100 rpm)
por 10 min;
8) retirar o sobrenadante e ressuspender o precipitado em 7 ml de fixador; centrifugar por 7 min a 900
± 100 rpm;
9) repetir o item 8 por duas ou três vezes, para uma completa fixação e lavagem das células em
suspensão;
10) pingar o material em lâminas;
11) deixar secar ao ar.
lxx
As lâminas podem ser guardadas no congelador durante muito tempo, servindo, assim, para
aplicação de várias técnicas de bandamento cromossômico.
Técnica de obtenção de cromossomos metafásicos “in vitro”
A técnica utilizada para obtenção de cromossomos metafásicos in vitro foi a descrita por
FORESTI et al. (1993) e utilizada com algumas modificações. O procedimento consistiu em:
1) sacrificar o animal, retirando tecidos da parte anterior do rim, brânquias e testículos no caso dos
machos;
2) colocar os tecidos retirados em placas de Petri contento 6 ml de solução de Hanks em temperatura
ambiente;
3) dissociar o material, procurando obter uma suspensão de células.Para tal, dissociar inicialmente o
material com pinças de ponta fina e depois, homogeneizar com auxílio de uma pipeta Pasteur;
4) retirar a suspensão celular da placa de Petri e transferí-la para um tubo de centrífuga. Acrescentar
1 gota de solução de colchicina a 0,05% e agitar levemente.
5) transferir o tubo para o interior de uma estufa a 37°C por 15 min;
6) centrifugar o material a 1000rpm por 8 min. Retirar e descartar o sobrenadante, acrescentar 6 ml de
solução hipotônica (KCl 0,075 M) e agitar levemente;
7) retornar o tubo para o interior da estufa a 37°C por 30 min;
8) retirar o tubo contendo suspensão de células da estufa, adicionar 5 gotas de fixador gelado
(metanol e ácido acético na proporção de 3:1 respectivamente) e agitar levemente a mistura com uma
pipeta Pasteur. Deixar repousar por 5 min em temperatura ambiente;
9) adicionar cerca de 6ml de fixador e novamente agitar a mistura. Levar à centrífuga (1000 ± 100
rpm) por 10 minutos;
10) retirar o sobrenadante e ressuspender o precipitado em 6 ml de fixador novo. Centrifugar por 7
minutos a 1000 ± 100 rpm;
11) repetir o item 8 por duas ou três vezes e fazer a suspensão final;
12) pingar o material em lâminas;
13) deixar secar e proceder à coloração.
lxxi
As lâminas podem ser guardadas no congelador durante muito tempo, servindo, assim, para
aplicação de várias técnicas de bandamento cromossômico.
2.3.7.3 Detecção das Regiões Organizadoras de Nucléolos (NORs) através da Impregnação com
Nitrato de Prata (Ag-NO
3
).
O procedimento utilizado seguiu a técnica descrita originalmente por HOWELL & BLACK
(1980), sendo utilizadas duas soluções:
• Solução A (solução coloidal reveladora): 1 g de gelatina muito bem dissolvida em 50 ml de água
destilada. Acrescentam-se 0,5 ml de ácido fórmico.
• Solução B (solução de nitrato de Prata): 1 g de AgNO
3
dissolvida em 2 ml de água destilada.
Depois de preparadas essas soluções devem ser mantidas em frascos escuros, a 4°C.
O procedimento para a coloração das NORs é o seguinte:
1) hidrolisar o material contido nas lâminas por 3 min em HCl 1N a 60°C;
2) secar as lâminas. Pingar uma gota da solução A e duas gotas da solução B sobre o material na
lâmina e cobrir com lamínula;
3) deixar as lâminas sobre um suporte no interior de um banho-maria a 60°C. Em alguns minutos
(aproximadamente 3), a mistura das soluções se torna marrom dourada. Lavar a lâmina em água
destilada, retirando a lamínula e deixar secar;
4) corar com Giemsa na proporção de 1:30 em tampão fosfato (pH = 6.7) por aproximadamente 10
seg;
5) deixar secar ao ar.
lxxii
RESULTADOS E DISCUSSÃO
lxxiii
3 RESULTADOS E DISCUSSÃO
3.1 Reprodução Induzida
A seleção de reprodutores para aplicação nos experimentos de reprodução induzida foi
realizada em indivíduos adultos do lambari-do-rabo-amarelo estocados nos tanques da estação de
piscicultura. A escolha dos indivíduos e identificação de sexos foi realizada com base nas diferenças
morfológicas entre machos e fêmeas e em caracteres sexuais secundários externos, indicadores
também do grau de maturidade sexual dos exemplares, conforme caracterizado na Figura 4.
Trabalhos anteriormente realizados sobre a reprodução induzida do lambari Astyanax
bimaculatus demonstraram que nesta espécie, enquanto a nadadeira anal das fêmeas permanece lisa
e sem espículas, nos machos ela se apresenta com pequenos ganchos nas extremidades dos
ossículos formadores deste apêndice. Este tipo de dimorfismo sexual também aparece em vários
representantes de Characidae capturados no ambiente natural nos seus períodos reprodutivos (SATO
et al., 2006) e mostraram-se fundamentais para a sexagem dos indivíduos na espécie estudada no
presente trabalho, Astyanax altiparanae. Além disso, foi observado que em condições de cultivo
utilizando-se altas densidades de estocagem, a presença das espículas nos machos se manteve e
pode ser detectada por longo tempo nos indivíduos, em alguns casos ocorrendo esse tipo de
dimorfismo sexual durante todo o ano.
Na reprodução induzida do lambari (Astyanax altiparanae) foi utilizado o processo padrão da
formação de “pools” de reprodutores, constituídos por cerca de 500 animais por evento reprodutivo,
para facilitação dos cálculos das dosagens hormonais e, principalmente, para promover viabilização
da produção de pós-larvas para serem estocadas nos tanques e viveiros de piscicultura. Foi
observado que tanto na reprodução induzida por desova livre como naquela por extrusão de gametas,
com realização de fecundação controlada, os ovócitos apresentaram cores diferenciadas em
tonalidades de marrom, aparecendo o produto da desova também esverdeado ou amarelado (Figura
lxxiv
19). Esta variação de coloração do material gamético extrusado das fêmeas, de ocorrência comum
nas espécies do grupo, já havia sido observada também por IHERING & AZEVEDO (1936).
Figura 19. Aspecto geral dos ovócitos obtidos de fêmeas maduras de Astyanax altiparanae,
apresentando diferentes colorações para o produto gamético; (a) cor marrom e (b) cor verde-
amarelada.
Foi verificado que as diferenças de coloração apresentadas pelo produto da desova
aparentemente não determinaram diferenças no desempenho reprodutivo das fêmeas manipuladas
na reprodução induzida. Supõe-se que o diferencial na coloração dos ovócitos poderia tratar-se
apenas de um politipismo pigmentar,sem qualquer influência na viabilidade reprodutiva da fêmeas,
durante a realização da reprodução artificial. Por outro lado, há necessidade verificação da
possibilidade de determinadas cores do produto estarem associadas com a idade e desenvolvimento
dos gametas nesta espécie, fatos determinantes para o sucesso da aplicação do processo
reprodutivo. Foi observado também que após a fertilização os ovos passaram a apresentar tênue
camada pegajosa revestindo o córion tornando-se semi-aderente. Esta característica também foi
descrita por SATO et al., (2006), nos estudos das características dos gametas e do processo de
reprodução induzida de Astyanax bimaculatus.
3.1.1 “Desova Livre”
A realização do processo de reprodução denominado “desova livre” permite a obtenção de
boas taxas de nascimento de larvas. Avaliando os resultados obtidos durante os testes realizados, a
média da fecundação ficou entre 40 e 60%, utilizando-se 2 machos para cada fêmea, razão sexual
usualmente empregada na execução dos protocolos para reprodução desta espécie na estação de
b
a
lxxv
piscicultura da GA-Alevinos e comumente utilizada também pelos produtores. Esta relação serviu
como controle e como base de comparação para os diferentes tratamentos experimentais realizados
sobre a proporção de sexos dos reprodutores na reprodução de Astyanax altiparanae.
As aplicações das dosagens de extrato bruto de hipófise carpa nos reprodutores de lambari variaram em
intervalos entre 8 e 12 horas. A variação nos intervalos das aplicações entre as primeiras e segundas doses de
hormônio foi determinada conforme a resposta de ovulação das fêmeas, uma vez que as condições
ambientais, a nutrição e a saúde dos peixes podem interferir diretamente na maturação gonadal dos lotes de
reprodutores, influenciando assim, a possibilidade de manipulação da reprodução artificial (PORTO-
FORESTI et al., 2005). Por tratar-se de uma técnica empírica, a reprodução induzida por hormônios
hipofisários pode ser alterada estrategicamente em dosagens e intervalos de aplicação, tendo por base os
melhores resultados da reprodução e sobrevivência das larvas de peixes conforme indicado por
WOYNAROVICH (1986).
Seguindo a metodologia de reprodução induzida utilizada rotineiramente para espécies de
peixes tropicais, após a aplicação das dosagens específicas de hormônios indutores foi realizado
acompanhamento da sua ação fisiológica, sendo utilizados valores de hora-grau adequados para esta
espécie, que resultaram na expulsão dos produtos gaméticos em torno de 180 a 200 horas-grau.
Após ser efetuada a fertilização foram levantados dados de efetividade deste processo por meio da
contagem direta dos embriões viáveis e em desenvolvimento nas incubadoras, bem como realizadas
estimativas de sobrevivência pela contagem dos indivíduos na fase de pós-larva, no momento da
soltura nos tanques de alevinagem.
A viabilidade dos embriões e larvas obtidos por meio desta técnica também pode ser
fundamentada no fácil manejo dos reprodutores e o reduzido tempo de manipulação dos peixes
durante a reprodução. Foi verificado que a taxa de sobrevivência dos reprodutores após a realização
do processo de reprodução ficou entre 95 a 97%. Estes altos valores de sobrevivência provavelmente
puderam ser obtidos devido ao baixo nível de estresse a que os parentais foram submetidos, uma vez
que cuidados foram tomados para evitar a ocorrência de lesões no corpo dos animais, que poderiam
resultar em ferimentos ou na perda de escamas. Contudo, foi registrada a morte de alguns indivíduos
que deve ter ocorrido provavelmente devido ao processo fisiológico de ação dos hormônios indutores
da reprodução, administrados de acordo com os protocolos estabelecidos para indução do processo
reprodutivo.
lxxvi
A reprodução por desova livre pode ser realizada entre os meses de setembro a fevereiro,
sendo que o período compreendendo os meses de novembro, dezembro e janeiro, é considerado o
mais adequado para a realização deste tipo de reprodução para a maioria das espécies de peixes
desta região, incluindo o lambari-do-rabo-amarelo. Tal afirmação tem por base os dados obtidos de
freqüência de reprodução, sendo que a desova obtida para a maioria das fêmeas (entre 90 a 100%)
coincide com o período citado anteriormente. Nos meses de setembro, outubro e fevereiro a
reprodução pode ser tentada, mas verifica-se que é maior o número de fêmeas que “falham”, não
realizando a ovulação esperada ou produzindo ovócitos imaturos que resultam em baixas taxas de
fertilização.
Deve ser ressaltado ainda que esta alternativa de reprodução, do ponto de vista da sua maior
viabilidade de aplicação, limita-se ao período mais intenso da reprodução natural do lambari que neste
caso foi observado ocorrer principalmente durante os meses de novembro a janeiro, podendo
eventualmente ser diferente para outras regiões do país (SATO et al., 2006). No caso da localidade
exercer alguma influência nos resultados da reprodução sugere-se o melhor acompanhamento dos
reprodutores, com relação à manifestação das características sexuais secundárias e pela realização
de testes para avaliações dos melhores períodos para a aplicação desta técnica.
3.1.2 Razão sexual na Desova Livre
Com a aplicação do método de “desova livre” na reprodução do lambari, foram testadas e
comparadas diferentes proporções de machos para cada fêmea, na tentativa de buscar mais
eficiência na aplicação desta técnica. A escolha de variação na razão sexual dos reprodutores, com a
utilização de número maior de indivíduos do sexo masculino em relação ao feminino, além da busca
de maior efetividade do processo de fertilização, também responde aos requisitos de conservação
genética do estoque. Os dados de estudos sobre melhores combinações nos cruzamento apontam
para o fato de que a utilização de maior número de machos pode significar maior possibilidade de
aumento de variabilidade genética e heterose nas futuras gerações, desde que os parentais não
sejam portadores de baixa diversidade genética e endogâmicos (TOLEDO-FILHO, 1996).
Por outro lado, sabe-se que na espécie utilizada no presente trabalho, os machos produzem
pouca quantidade de esperma, inviabilizando algumas vezes a aplicação de programas de reprodução
por extrusão de gametas. Assim, o estabelecimento de uma relação adequada entre o número de
lxxvii
fêmeas e de machos utilizados nos cruzamentos poderia se constituir num fator de garantia da
produção.
Após a realização dos procedimentos da técnica de reprodução induzida e obtenção da
desova livre, amostras de embriões foram analisadas em microscópio estereoscópico, para
estabelecimento dos fatores de fertilidade e determinação da freqüência de embriões viáveis no
processo da reprodução. Considera-se que a sobrevivência indicada seja o reflexo da taxa de
fertilização obtida. Os resultados obtidos sobre a razão sexual com os melhores índices de
sobrevivência neste tipo de reprodução induzida, estão relacionados na Tabela 8 e indicam o
tratamento M3, utilizando a proporção de 3 machos: 1 fêmea, com os maiores valores de
sobrevivência (entre 69,3% e 69,7%, para a réplica). Também a razão utilizada no experimento M2,
que utilizou a proporção de 2 machos: 1 fêmea, resultou em valores altos (65,8%) numa das réplicas;
de modo semelhante o experimento M4, em que a razão foi de 4 machos: 1 fêmea, uma réplica
apresentou 69,9% como taxa de sobrevivência. Os dados da Figura 20 demonstram que existe
correlação dos dados entre a maior freqüência de embriões que sobreviveram e o maior número de
machos para cada fêmea, apesar de não serem significativos os valores de diferença obtidos pelo
teste Qui-Quadrado. Estas observações são confirmadas pela análise dos dados que constam da
Figura 21, demonstrando que tanto nos tratamentos quanto nas réplicas, o uso do maior número de
machos para cada fêmea contribuiu para o aumento das taxas de fertilização, traduzidas pelos valores
de maior sobrevivência dos embriões. Observa-se também uma tendência de estabilização dos
valores no experimento M4, no qual a razão utilizada foi de 4 machos: 1 fêmea.
Tabela 8. Freqüência de embriões de Astyanax altiparanae viáveis, resultantes da aplicação do
processo de reprodução por “desova livre”, utilizando diferentes razões na relação do número de
machos e de fêmeas.
TRATAMENTOS
MACHOS FÊMEAS RAZÃO
SEXUAL M/F
SOBREVIVÊNCIA %
HORA
GRAU
M1 20 20 1:1 39,7 180
RÉPLICA M1 20 20 1:1 38,9 180
M2 40 20 2:1 32,4 180
RÉPLICA M2 40 20 2:1 65,8 180
M3 60 20 3:1 69,3 180
lxxviii
RÉPLICA M3 60 20 3:1 69,7 180
M4 80 20 4:1 56,6 180
RÉPLICA M4 80 20 4:1 69,9 180
*
Razão sexual significativamente diferente para p < 0,001, Qui-quadrado teste.
Figura 20. Correlação linear entre a relação do número de machos para o de fêmeas de Astyanax
altiparanae presentes e a formação de embriões viáveis. Equação da reta: y = 0,459x + 32,3
Porcentagem de embriões viáveis
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
M1
R
eplic
a1
M2
R
epl
ica2
M3
R
eplic
a3
M4
R
ep
lica4
Porcentagem
lxxix
Figura 21. Porcentagem de sobrevivência de embriões de Astyanax altiparanae em diferentes razões sexuais
utilizados na reprodução por “desova livre”.
3.1.3 Desova por Extrusão de Gametas
A aplicação desta técnica pode apresentar vários aspectos favoráveis à sua utilização em
programas de reprodução do lambari-do-rabo-amarelo como nos casos em que se fizesse necessário
o prolongamento do período de obtenção de larvas desta espécie fora da época normal e de
reprodução intensiva. Está técnica foi utilizada em diferentes testes durante o período que
compreendeu o mês de setembro de um ano até o mês de maio do ano seguinte. Não foi aplicada
apenas durante os meses de ocorrência de baixas temperaturas da água, típicas dos meses de
outono e inverno na região. Nestas condições, as gônadas dos peixes também passam por alterações
na atividade tecidual, reduzindo ou cessando a produção de gametas (VAZZ0LER, 1996). A aplicação
desta técnica permitiu a manipulação dos gametas e dos embriões do lambari, com a caracterização e
controle das fases do desenvolvimento embrionário, possibilitando, assim, a realização de testes de
com técnicas genéticas de manipulação cromossômica na espécie Astyanax altiparanae.
Os resultados obtidos com a reprodução induzida por extrusão de gametas são relevantes
sob os aspectos de produtividade de larvas, facilidade da manipulação dos gametas e manejo geral
da espécie que esta técnica pode proporcionar. Nos testes realizados, o uso de hormônios sintéticos
sugere uma eficiência maior em comparação aos resultados obtidos quando foram utilizados extratos
hipofisários. A hipofização foi utilizada como teste de reprodução, tendo sido relacionados casos de
fêmeas que não ovularam ou que abortaram, liberando os ovócitos precocemente e em momento
impróprio para a fertilização, contudo, em número menor do que aquelas que se desenvolveram
segundo o protocolo normal de reprodução artificial. Para a espécie utilizada e consideradas as
condições do experimento, a aplicação deste indutor natural mostrou-se pouco relevante, em
lxxx
comparação aos resultados obtidos com o uso de hormônio sintético. Portanto, o uso de extratos
hipofisários neste caso, ficou restrito à aplicação nos protocolos de reprodução induzida de desova
livre.
Tais resultados poderiam ser decorrentes do fato de que enquanto o hormônio sintético
apresenta-se como uma substância mais pura, precisa e homogênea, o extrato hipofisário pode
conter diferentes tipos de impurezas como restos de tecidos e substâncias com diversas atividades,
como proteínas e hormônios, que poderiam interferir na perfeita ação dos componentes indutores da
reprodução nos peixes.
O emprego desta técnica tornou-se rotina nas estações de piscicultura onde se desenvolveu
este trabalho. Durante o período de reprodução dos peixes foram observadas taxas de fecundação e
sobrevivência larval entre 78,0% e 88,4%, conforme mostrado na Tabela 9. Nesta tabela estão
relacionados os resultados tratamentos dos testes de reprodução, mostrando as altas taxas de
sobrevivências obtidas para os embriões de lambari pelo processo de reprodução induzida por
extrusão de gametas, utilizando-se gametas obtidos e utilizados na proporção de três machos
extrusados para cada fêmea (razão sexual 3:1) e hora-grau de 140 para a realização da extrusão.
Como observado para a reprodução por “desova livre”, a utilização de maior proporção de machos
(3:1) em relação à das fêmeas, também se mostra mais vantajosa, pois, além de garantir mais
segurança de sucesso da reprodução também pode promover aumento da variabilidade genética da
prole, com a participação de mais indivíduos parentais do sexo masculino na reprodução induzida
(TOLEDO-FILHO et al., 1996; PORTO-FORESTI et al., 2005).
Comparando-se os protocolos utilizados na realização da reprodução de Astyanax altiparanae
no presente trabalho com os dados relatados para Astyanax bimaculatus descritos por SATO et al
(2006), podem ser verificadas diferenças nos valores da hora-grau para a realização da extrusão dos
gametas, apresentados como 140 horas-grau para Astyanax altiparanae e 331 horas-grau para
Astyanax bimaculatus. Deve ser considerado que a metodologia utilizada por aquele autor apresentou
algumas diferenças em relação àquela utilizada no presente trabalho.
A sobrevivência dos reprodutores utilizados nos experimentos de reprodução mostrou taxa
acima de 90% de sobrevivência, após as atividades de hipofização e extrusão dos gametas. Casos de
perdas esporádicas de alguns indivíduos também ocorreram, provavelmente decorrentes da intensa
manipulação desenvolvida nos procedimentos de extrusão dos gametas. Também devem ser
lxxxi
considerados os processos fisiológicos de ação dos hormônios indutores da reprodução
administrados no organismo para indução do processo reprodutivo.
Tabela 9. Freqüência de embriões de Astyanax altiparanae viáveis, resultantes da aplicação do
processo de reprodução por “desova por extrusão”. Foi utilizada a razão de três machos para cada
fêmea (3:1), com a extrusão realizada a partir de 140 horas-grau.
TRATAMENTOS
MACHOS
FÊMEAS RAZÃOSEXUAL
M/F
SOBREVIVÊNCIA
%
HORA-
GRAU
T1 3 1 3:1 79,8 140
T2 3 1 3:1 88,4 140
T3 3 1 3:1 87,4 140
T4 3 1 3:1 78,0 140
3.2 Embriogênese
A coleta de embriões foi realizada após a reprodução induzida por extrusão
de gametas. Neste caso, a amostragem foi realizada durante e após a fertilização,
proporcionando a observação de todas as etapas necessárias para o
acompanhamento dos estádios do desenvolvimento embrionário do lambari. Na
Tabela 10, estão representados os aspectos morfológicos e a descrição resumida
das fases do desenvolvimento embrionário de A. altiparanae, a partir do momento
da fertilização, realizada durante a primeira hora da embriogênese. Na Tabela 11
estão representadas as fases seguintes, a partir do início da segunda hora até a
finalização da embriogênese e eclosão, completada com cerca de 11 horas de
desenvolvimento, de embrião até a fase de larva. Destas tabelas constam também
as medidas de temperatura da água da incubadora, que apresentou variação entre
25°C e 26°C durante o processo.
lxxxii
O tempo de incubação foi de 11 horas nas condições ambientais que
influenciaram o desenvolvimento durante a incubação dos embriões. Observou-se,
ainda, que em outras condições ambientais com temperaturas acima de 26°C, o
desenvolvimento embrionário para esta espécie permaneceu em torno das 11 horas
de incubação, sugerindo-se que este é período de tempo do desenvolvimento para
incubação dos embriões até o nascimento das larvas, podendo ser considerado
como padrão para esta espécie. Segundo estudos realizados por SATO et al (2006),
a espécie Astyanax bimaculatus apresentou ovo adesivo e pequeno, com
embriogênese de curta duração. A eclosão das larvas desta espécie ocorreu após
tempo médio em 17 horas de incubação. Contudo, outros experimentos realizados
pelo mesmo autor referentes ao processo reprodutivo desta espécie, revelaram
tempos de incubação de 36 horas com a temperatura da água a 18 °C, de 18 horas
a 23 °C e de 12 horas a 28 °C (SATO et al., 2006), para o desenvolvimento
completo dos embriões até a eclosão.
Tabela 10. Caracterização sucinta das fases do desenvolvimento embrionário de Astyanax
altiparanae na primeira hora de incubação, apresentando aspectos morfológicos dos embriões.
AMOSTRAGEM
T (
o
C)/ DA
ÁGUA
FASES DO DESENVOLVIMENTO FIGURA
1
(Zero e 20
minutos)
26°C
Ovo recém fertilizado
Fase inicial da reprodução no momento
da fertilização, denominado de ponto
zero da coleta de embriões.
2
(30 minutos)
26°C
2 blastômeros
Ocorrência da primeira clivagem do
embrião que iniciou-se entre 20 e 30
minutos a partir do ponto zero, quando
surgiram as primeiros embriões com
dois blastômeros.
lxxxiii
3
(40 minutos)
26°C
4 blastômeros
Clivagens do embrião com 4
blastômeros se desenvolvendo após 40
minutos do ponto da fertilização
4
(50 minutos)
26°C
8, 14 e 16 blastômeros
Após 50 minutos de desenvolvimento do
embrião à partir do ponto zero, foram
observados embriões com 8, 14 e 16
blastômeros
5
(60 minutos)
26°C
32 blastômeros - Blástula
Estádio de blástula com
aproximadamente 32 blastômeros, fase
registrada com 60 minutos de
desenvolvimento embrionário à partir da
fertilização dos óvulos.
Tabela 11. Caracterização do desenvolvimento embrionário de Astyanax altiparanae após a primeira
hora de incubação dos embriões.
AMOSTRAGEM
T (
o
C) DA
ÁGUA
FASES DO
DESENVOLVIMENTO
FIGURA
6
(2 horas)
26°C
Gástrula inicial com 25% de
epibolia
7
(3 horas)
26°C
Gástrula com 50% de epibolia
8
(4 horas)
26°C
Gástrula com 75% de epibolia
lxxxiv
9
(5 horas)
26°C
Gástrula tardia com 90% de
epibolia (Organogênese
inicial)
10
(6 horas)
25°C
Organogênese inicial
11
(7 horas)
25°C
Organogênese inicial
Tabela 11. Continuação ...
12
(8 horas)
25°C
Organogênese final, 24 pares
de somitos
13
(9 horas)
25°C
Larva em crescimento,
intestino posterior e cauda
lxxxv
14
(10 horas)
25°C
Larva em crescimento,
intestino posterior e cauda
15
(11 horas)
25°C
Larva recém eclodida
Os dados constantes das Tabelas 10 e 11 resumem as fases do
desenvolvimento embrionário de Astyanax altiparanae, com base na descrição do
desenvolvimento embrionário de Prochilodus lineatus, realizada por NINHAUS-
SILVEIRA (2004). Na Tabela 10, a amostragem representa os produtos da fase final
da reprodução, que se inicia no momento da fertilização dos ovócitos, denominado
ponto zero. As células isoladas (zigotos) apresentam-se normalmente isoladas e
arredondadas devido à hidratação. Entre esta fase e a seguinte, exposta na
amostragem 2, procedem os eventos principais do desenvolvimento embrionário
para a aplicação das técnicas de manipulação cromossômica. Neste período
ocorrem os processos que culminam com a primeira clivagem celular do embrião,
iniciada num período entre 15 e 25 minutos após a fertilização. Este evento
determina o aparecimento de embriões com dois blastômeros, que são identificados
nesta fase. Na amostra 3 são encontrados embriões com 4 blastômeros, que
aparecem cerca de 40 minutos após a o ponto zero. A continuidade das clivagens
leva ao aparecimento de embriões com 8 e 16 blastômeros, no período decorrido de
tempo de cerca de 50 minutos. Os embriões atingem o estágio de blástula quando
lxxxvi
apresentam cerca de 32 blastômeros, o que ocorre no período 5 após 60 minutos da
fertilização.
Após a primeira hora do desenvolvimento embrionário, as amostras
passaram a ser coletadas em intervalos de 1 hora, tendo em vista que se iniciam no
embrião também modificações internas expressivas; as modificações observadas
externamente ocorrem de modo mais lento. As amostras coletadas a partir deste
ponto foram analisadas e as informações obtidas estão relacionadas na Tabela 11.
Na amostra 6, coletada cerca de 2 horas após o ponto de fertilização, podem ser
observados embriões na fase inicial do processo de gastrulação, que se apresentam
com 25% de epibolia. O processo de desenvolvimento prossegue, sendo possível
observar nos embriões da amostra 7, coletados após 3 horas da fertilização, os
embriões na fase da característica de gástrula, com 50% de epibolia, enquanto que
na amostra 8, com os embriões continuando a finalização do processo de
gastrulação, a epibolia atinge valores de cerca de 75 %. Nas amostras 9, 10 e 11
pode-se verificar embriões ainda em processo de gastrulação, alguns com 90% de
epibolia, ao lado de outros em fase de organogênese inicial. A amostra 12, coletada
8 horas após o ponto zero ilustra a ocorrência da organogênese final já com a
presença de somitos nos embriões. Nas amostras 13 e 14 têm inicio as fases finais
do desenvolvimento, com a larva em crescimento e mostrando a formação do
intestino posterior e da cauda. Finalmente, na amostra 15 da Tabela 11, foram
encontrados embriões na fase final do desenvolvimento e larvas recém eclodidas,
que iniciaram sua movimentação na coluna d’água da incubadora.
3.3 Testes de Poliploidia
lxxxvii
O uso da poliploidia em peixes é uma técnica de manipulação cromossômica que pode ser
aplicada em piscicultura e já foi relatada por vários autores como TAVE (1993), THORGAARD (1983),
RANZANI-PAIVA (1998), HUERGO (2004), PORTO-FORESTI & FORESTI (2004), entre outros.
Porém, os indivíduos triplóides e tetraplóides frequentemente não apresentam condições para garantir
sua viabilidade, do modo como ocorre com os indivíduos diplóides normais. As transformações
genômicas e estruturais afetam a sobrevivência de embriões e larvas, provavelmente devido ao efeito
letal dos choques utilizados nas técnicas de manipulação cromossômica (MOREIRA, 2001) ou ao
acúmulo de genes recessivos, prejudiciais ao desenvolvimento. Tratamentos com choques de
temperatura e pressão hidrostática foram utilizados na tentativa de formalizar protocolos para a
obtenção de indivíduos triplóides e tetraplóides de Astyanax altiparanae.
A baixa sobrevivência observada após a fase de larva e de alevino no lambari e as baixas
freqüências de peixes triplóides e tetraplóides obtidas nos tratamentos realizados dentro das
condições estabelecidas no presente trabalho indicam que, para esta espécie, outros protocolos
precisam ser testados para viabilizar a aplicação das técnicas de manipulação cromossômicas,
principalmente aquelas relacionadas à obtenção de indivíduos poliplóides. A seguir, são apresentados
os resultados obtidos nos testes realizados, que constaram de tratamentos com choques de
temperatura e pressão hidrostática aplicados aos embriões do lambari, na tentativa de induzir
poliploidia.
3.3.1 Choques de Temperatura
Os tratamentos para indução de triploidia realizados com base nos protocolos descritos na Tabela 4, resultaram em taxas de
sobrevivência variáveis dos embriões que deram origem as larvas. Estas, após o período de alimentação endógena, foram transferidas para 4
tanques de alvenaria de 3 m
2
de área e foram alimentadas com plâncton cultivado em viveiros e ração balanceada com 55% de proteína
bruta (PB). No tratamento 1 (TRI 1) foram obtidos 83 juvenis após um período de 60 dias da realização da reprodução e do choque de
temperatura e no tratamento 2 (TRI 2) a sobrevivência foi baixa apresentando apenas 14 juvenis. Foram analisados 32 indivíduos dos
tratamentos 1 e 10 indivíduos do tratamento 2, submetidos a um choque de temperatura de 38°C, 2 minutos para o TRI 1 e 5 minutos para
TRI 2, após a fecundação durante 3 minutos de exposição.
Para identificação do grau de ploidia dos indivíduos e saber determinar a eficácia dos
tratamentos indutores, inicialmente foram realizadas análises dos indivíduos do grupo controle. Neste
tratamento foram disponibilizados cerca de 800 indivíduos, que sobreviveram até a fase juvenil
lxxxviii
(Tabela 12), quando as análises foram realizadas. Destes, 20 foram analisados citogeneticamente
para determinação do número de cromossomos de cada indivíduo.
As preparações cromossômicas resultaram em metáfases de boa qualidade, a partir das
quais foram realizadas as contagens e montados os cariótipos, conforme representado na Figura 22.
Todos os indivíduos apresentaram número diplóide de 2n=50 cromossomos, como seria esperado.
Figura 22. Cariótipo de Astyanax altiparanae apresentando 2n=50, obtido de indivíduos do grupo controle dos
testes de poliploidia.
Foram então realizadas as análises citogenéticas de 32 indivíduos obtidos nos tratamentos 1 e 2 (TRI 1 e TRI 2), conforme
apresentado na Tabela 5. Os resultados obtidos mostraram que entre os indivíduos analisados, apenas três foram identificados como
triplóides, apresentando metáfases mitóticas com três lotes cromossômicos da espécie (Figura 23). Nos tratamentos 3 e 4 (TRI 3 e TRI 4) a
sobrevivência foi muito baixa, resultando em apenas 5 indivíduos, todos na parcela referente ao tratamento TRI 3 e nenhum no tratamento
TRI 4. As análises citogenéticas realizadas nos 5 indivíduos obtidos no tratamento TRI 3, todos foram identificados como triplóides e
apresentaram metáfases semelhantes àquelas já relacionadas na Figura 23.
A obtenção dos cromossomos dos peixes para análise é realizada através de metodologia
relativamente simples e de baixo custo, que permite uma rápida caracterização das espécies
(PORTO-FORESTI & FORESTI, 2004). Usualmente as espécies apresentam pares de cromossomos
(e assim são chamados de diplóides ou com 2n cromossomos) que são divididos igualmente na
formação dos gametas que recebem cada um, metade do número de cromossomos dos pais (um
conjunto haplóide de cromossomos ou n cromossomos). Através de uma análise inicial, pode-se
lxxxix
identificar diferentes espécies (com diferentes números de cromossomos, por exemplo), bem como
caracterizar o aparecimento de indivíduos triplóides (3n cromossomos) e tetraplóides (4n
cromossomos) (PORTO-FORESTI & FORESTI, 2004). Este procedimento foi utilizado no presente
trabalho e mostrou ser muito eficaz no diagnóstico.
Figura 23. Metáfases de exemplar triplóide de Astyanax altiparanae, evidenciando três lotes de
cromossomos da espécie (3n=75 cromossomos) (a). Em b, aplicando a técnica de identificação da
NOR, 3 cromossomos se apresentam marcados.
Nos tratamentos TRI 5 e TRI 6 realizados com choques de baixa temperatura, conforme
protocolo descrito na Tabela 5, a sobrevivência obtida entre os indivíduos submetidos aos tratamentos
foi maior do que nos choques de alta temperatura (Tabela 12). Desses tratamentos, sobreviveram
aproximadamente 500 indivíduos no TRI 5 e 600 indivíduos no TRI 6. As análises citogenéticas
realizadas em 50 indivíduos destes tratamentos não revelaram a ocorrência de indivíduos triplóides
em nenhum dos tratamentos (TRI 5 e TRI 6).
Os resultados obtidos nos testes de indução de triploidia por choques térmicos e relacionados na Tabela 12 parecem indicar
maiores possibilidades de sucesso com o uso de choques de altas temperaturas. Tratamentos realizados com a temperatura de 38°C
resultaram na indução de indivíduos triplóides viáveis, embora em baixa freqüência (9,4%). Os choques frios aplicados aparentemente não
foram suficientes para determinar a retenção dos cromossomos.
Tabela 12. Testes de indução de triploidia em Astyanax altiparanae, com aplicação de choques
de temperatura em diferentes tempos de exposição. São apresentados os dados de
sobrevivência na fase juvenil e a freqüência de indivíduos triplóides.
TRATAMENTO
TEMPERATURA
DO CHOQUE
INÍCIO DO
CHOQUE
TEMPO DE
EXPOSIÇÃO
SOBREVIVÊNCIA NA
FASE DE JUVENIL
%
TRIPLÓIDES
a
b
xc
TRI 1
38°C 2′após
fecundação
3 minutos 83 9,4%
TRI 2
38°C 5′ após
fecundação
3 minutos 14 0%
TRI 3
40°C 2′ após
fecundação
3 minutos 5 100%
TRI 4
40°C 5′ após
fecundação
3 minutos 0 0%
TRI 5
6°C 2′ após
fecundação
30 minutos *500 0%
TRI 6
6°C 5′ após
fecundação
30 minutos *800 0%
CONTROLE Temperatura
ambiente
Sem choque Não realizado 3.600 indivíduos 0%
* Os peixes foram estimados utilizando-se uma peneira como medida da para contar os indivíduos
que sobreviveram nos tratamentos realizados.
Devido à necessidade de grande número de tanques para estocagem dos peixes de todos os
tratamentos, os indivíduos do controle foram colocados em tanques de terra de 200 m
2
e a
sobrevivência foi estimada com base no desempenho de produção da piscicultura (entre 60 a 70% de
sobrevivência, na fase juvenil).
A indução de poliploidia frequentemente está associada à ocorrência de altas taxas de mortalidade, conforme foi observado nos
testes de triploidia realizados. Isto pode ser ter como causa o desenvolvimento anormal determinado pela adição de um novo conjunto
cromossômico ao genoma diplóide, que poderia resultar em desbalanços da atividade gênica nas células ou ainda devido ao efeito latente da
ação do choque térmico (RIGOLINO, 2003). Pode ser considerado também que fatores como o grau de “inbreending”, que seria
potencializado com a retenção do segundo corpúsculo polar, poderiam determinar um aumento da freqüência de genes recessivos e
determinar a inviabilidade dos embriões. Além disso, a intensidade dos choques de temperatura e a duração dos tratamentos aplicados, a
ocorrência de deformações nos alevinos e o menor crescimento quando comparados aos indivíduos do grupo controle (diplóides), poderiam
se constituir em fatores determinantes para a obtenção de resultados positivos nos testes de triploidia, conforme comentado por KERBY
(2002) e RIGOLINO (2003), entre outros.
Os tratamentos realizados com o objetivo de obtenção de indivíduos tetraplóides e realizados de acordo com os protocolos
apresentados na Tabela 5, apresentaram taxas de sobrevivência variáveis dos embriões, como ocorrido nos tratamentos para obtenção de
triplóides. As larvas que sobreviveram aos tratamentos de indução de tetraploidia foram transferidas para 4 tanques de alvenaria de 3 m
2
de
área após o período de alimentação endógena e foram alimentadas com plâncton cultivado em viveiros e ração balanceada com 55% de
proteína bruta, seguindo o mesmo protocolo aplicado nos testes de triploidia.
Os tratamentos 1 e 2 (TETRA 1 e TETRA 2), nos quais os embriões foram submetidos a choque térmico de 36°C, cerca de 20
minutos decorridos após a fertilização, por períodos de 1 e 5 minutos de duração, resultaram em cerca de 700 indivíduos que se
desenvolveram até a fase juvenil (Tabela 13), caracterizada 60 dias após a realização da reprodução e aplicação do choque de temperatura. A
análise citogenética realizada em 40 indivíduos desses tratamentos, não caracterizou a ocorrência de indivíduos tetraplóides (com 4n=100
cromossomos). Para os tratamentos 5 e 6 (TETRA 5 e TETRA 6), nos quais os embriões foram submetidos a choque térmico de 6°C, cerca
de 20 minutos decorridos após a fertilização, por períodos de 60 minutos de duração, a sobrevivência foi de aproximadamente 1.200 juvenis
xci
(Tabela 13). Pela análise citogenética realizada em 50 indivíduos não foi caracterizada a ocorrência de indivíduos tetraplóides, sendo todos
diplóides normais, com 50 cromossomos. Os tratamentos TETRA 3 e TETRA 4, considerados letais em testes realizados previamente á
aplicação do protocolo final utilizado no experimento, não foram relacionados.
Os resultados obtidos parecem demonstrar que a técnica aplicada não foi eficiente na indução
de tetraploidia em nenhum dos tratamentos realizados. Contudo, as altas taxas de sobrevivência
observadas até a fase juvenil parecem indicar que o fato dos tratamentos não terem atingido os
limites da letalidade, podem oferecer condições para a viabilidade de aplicação da metodologia
escolhida, com o aperfeiçoamento dos protocolos.
Indivíduos tetraplóides têm sido com o uso de diferentes protocolos, utilizando tanto a
aplicação de choques de altas quanto baixas temperaturas em diversas espécies (CHOURROUT,
1984; CHOURROUT et al., 1986; TABATA, 2004). Tais tratamentos são bem sucedidos se o
momento de aplicação do agente bloqueador da divisão celular seja preciso, que a temperatura seja
suficiente para impedir a segregação dos lotes cromossômicos no processo de divisão celular em
andamento e que este tenha duração no tempo suficiente para manter as condições estabelecidas até
que a célula, agora com novos conjuntos cromossômicos, possa retomar seu caminho normal de
divisão. Se alguma destas condições não for atingida, o processo pode resultar na inviabilidade do
embrião. Os resultados obtidos nos testes de indução de tetraploidia em Astyanax altiparanae dão
indicações de que novas tentativas devem ser feitas, uma vez que, as taxas de sobrevivência
relativamente altas encontradas e a presença apenas de indivíduos diplóides normais autorizariam a
experimentação com tratamentos mais radicais, com valores de temperatura mais altos e mais baixos
que aqueles utilizados nos protocolos apresentados. Também o momento de aplicação dos
tratamentos deve ser revisto, com início dos choques térmicos em tempos menores que 18 minutos
após a fertilização.
Choques térmicos quentes ou frios podem ser efetivos quando empregados na temperatura
além do limite tolerado pela espécie. Choques com intensidades entre 8 e 11°C para peixes de águas
quentes como Cyprinus carpio e Tilapia áurea e tratamentos entre 26 e 28°C para peixes de águas
frias como salmonídeos, foram efetivos na sobrevivência dos embriões, conforme citado por
RIGOLINO (2003) e TABATA, (2004). Obtenção de indivíduos tetraplóides tem sido mais comum em
experimentos com espécies de salmonídeos (CHOURROUT, 1984; CHOURROUT et al, 1986).
xcii
Tabela 13.
Testes de indução de tetraploidia em Astyanax altiparanae, com aplicação de choques de
temperatura em diferentes tempos de exposição. São apresentados os dados de sobrevivência na
fase juvenil e a freqüência de indivíduos triplóides.
TRATAMENTO
TEMPERATURA
DO CHOQUE
INÍCIO DO
CHOQUE
TEMPO DE
EXPOSIÇÃO
SOBREVIVÊNCIA
NA FASE DE
JUVENIL
%
TETRAPLÓIDES
TETRA 1
36°C 20′ após
fecundação
1 minuto *400 0%
TETRA 2
36°C 20′ após
fecundação
5 minutos *300 0%
TETRA 5
6°C 20′ após
fecundação
60 minutos *600 0%
TETRA 6
6°C 20′ após
fecundação
60 minutos *600 0%
CONTROLE Temperatura
ambiente
Sem choque Não realizado **5.000 0%
* Os peixes foram estimados utilizando-se uma peneira como medida da para contar os indivíduos
que sobreviveram nos tratamentos realizados.
** Devido à necessidade de número de tanques para estocagem dos peixes de cada tratamento, os
indivíduos do controle foram colocados em tanques de terra de 200 m
2
e a sobrevivência foi estimada
com base no desempenho de produção da piscicultura (entre 60 a 70% de sobrevivência na fase
juvenil).
3.3.2 Choques de Pressão Hidrostática
Utilizando choques de pressão para obtenção de indivíduos triplóides, observou-se que as taxas de sobrevivência se mostraram
muito baixas nas fases de alevino e juvenil. As larvas obtidas após o período de alimentação endógena, foram transferidas para tanques de
alvenaria de 1 m
2
de área e foram alimentadas com plâncton cultivado em viveiros e ração balanceada com 55% de proteína bruta. Foram
realizados testes prévios para observação do nível de letalidade dos valores de pressão hidrostática expressos em psi aplicados nos embriões
de lambari. Acima de 5000psi, observou-se que para a espécie Astyanax altiparanae o nível de letalidade dos embriões foi de 100% nos
tratamentos realizados neste trabalho. A partir da realização de protocolos preliminares, foram estabelecidos os tratamentos com pressão
hidrostática que foram utilizados.
Os tratamentos 1 (TRI 1), 2 (TRI 2), 3 (TRI 3), 4 (TRI 4), 5 (TRI 5) e 6 (TRI 6), foram realizados no mesmo período e os juvenis
caracterizados após um período de 45 dias da realização da reprodução e do choque de pressão hidrostática. Conforme demonstrado na
Tabela 14, no tratamento 1 (TRI 1) a sobrevivência foi de 5 indivíduos juvenis, no tratamento 2 (TRI 2) a sobrevivência foi de 20 indivíduos
juvenis; no tratamento 3 (TRI 3) foi de 9 indivíduos juvenis; no tratamento 4 (TRI 4) foi de 15 indivíduos juvenis; no tratamento 5 (TRI 5)
foi de 5 indivíduos juvenis e no tratamento 6 (TRI 6) foi de 9 indivíduos juvenis. O tratamento TRI 7, considerado letal em testes realizados
previamente á aplicação do protocolo final utilizado no experimento, não foi relacionado.
Todos os indivíduos obtidos nos testes de indução de triploidia em Astyanax altiparanae por choques de pressão hidrostática
foram submetidos á análise citogenética, para verificação do número de cromossomos de cada indivíduo. Todos se mostraram diplóides,
com 50 cromossomos, não sendo caracterizados indivíduos triplóides nestes experimentos. Os dados obtidos permitem supor que os
xciii
tratamentos utilizados, de acordo com os protocolos estabelecidos para aplicação nas condições do presente trabalho, não resultaram na
indução de triploidia (Tabela 14).
Tabela 14. Testes de indução de triploidia utilizados para Astyanax altiparanae, com aplicação de
choques de pressão hidrostática. São considerados o momento de início do choque, os diferentes
tempos de exposição dos embriões, a sobrevivência na fase juvenil e a freqüência de indivíduos
triplóides.
TRATAMENTO
INTENSIDADE DE
PRESSÃO (PSI)
INÍCIO DO
CHOQUE
TEMPO DE
EXPOSIÇÃO
SOBREVIVÊNCIA
NA FASE DE
JUVENIL
%
TRIPLÓIDES
TRI 1 3.000
2′ após
fecundação
5’ minutos 5 0%
TRI 2 4.000
2′ após
fecundação
2’ minutos 20 0%
TRI 3 4.000
2′ após
fecundação
5’ minutos 9 0%
TRI 4 4.000
5′ após
fecundação
2’ minutos 15 0%
TRI 5 4.000
5′ após
fecundação
5’ minutos 5 0%
TRI 6 4.000
8′ após
fecundação
5’ minutos 9 0%
CONTROLE Sem choque Não realizado Não realizado * 3.000 0%
* Devido à necessidade de número de tanques para estocagem dos peixes de cada tratamento, os
indivíduos do controle foram colocados em tanques de terra de 200 m2 e a sobrevivência foi estimada
com base no desempenho de produção da piscicultura (entre 60 a 70% de sobrevivência na fase
juvenil).
A produção de triplóides em peixes depende de vários fatores como a intensidade do choque,
o tempo de duração e exposição dos ovos ao choque, bem como da qualidade dos ovos utilizados
(HUERGO, 2004). Em trabalhos realizados com Rhandia quelen, submetidos aos testes de indução
de triploidia, os tratamentos com choques térmicos resultaram em sobrevivência menor quando
comparados aos mesmos testes com utilização de choques de pressão hidrostática (HUERGO, 2004).
xciv
Peixes tetraplóides possuem quatro conjuntos de cromossomos e podem ser obtidos por
meio de choques aplicados no embrião antes da primeira clivagem e da formação dos primeiros
blastômeros (MOREIRA, 2001; PORTO-FORESTI & FORESTI, 2004).
Como resultado da utilização de choques de pressão para obtenção de indivíduos
tetraplóides, foi observado que as taxas de sobrevivência se mostraram muito baixas nas fases de
alevino e juvenil, do mesmo modo como foi observado nos tratamentos para obtenção de indivíduos
triplóides. As larvas obtidas foram transferidas para tanques de alvenaria de 1 m
2
de área, após o
período de alimentação endógena e foram alimentadas com plâncton cultivado em viveiros e ração
balanceada com 55% de proteína bruta. Testes prévios realizados para observação dos níveis de
letalidade decorrentes dos valores de pressão hidrostática expressos em psi aplicados nos embriões
de Astyanax altiparanae, revelaram que acima de 5000psi o nível de letalidade dos embriões foi de
100% neste trabalho. A partir das informações obtidas com a realização de protocolos preliminares,
foram estabelecidos os tratamentos com pressão hidrostática que foram utilizados.
Os tratamentos 1 (TETRA 1), 2 (TETRA 2), 3 (TETRA 3), 4 (TETRA 4), foram realizados no
mesmo período e os juvenis caracterizados após 45 dias da realização da reprodução e do choque de
pressão hidrostática. No tratamento 1 (TETRA 1) a sobrevivência foi de 4 indivíduos juvenis; no
tratamento 2 (TETRA 2) foi de 16 indivíduos; no tratamento 3 (TETRA 3) foi de 4 indivíduos e no
tratamento 4 (TETRA 4) foi de 10 indivíduos. Todos os indivíduos sobreviventes dos testes de indução
de tetraploidia com o uso de choques de pressão hidrostática foram submetidos à análise
citogenética, para verificação do número de cromossomos. Todos apresentaram número diplóide de
2n=50 cromossomos sendo, portanto, considerados diplóides normais; indivíduos tetraplóides não
foram caracterizados nos tratamentos realizados. Portanto, os resultados obtidos com os diferentes
tratamentos demonstram que estes não foram efetivos para a indução de tetraploidia nas condições
utilizadas no presente trabalho (Tabela 14). Os resultados obtidos e demonstrados acima
apresentaram freqüência muito baixa de sobrevivência sem ocorrência de indivíduos tetraplóides
(Tabela 15). Os tratamentos TETRA 5, TETRA 6 e TETRA 7 (Tabela 7), considerados letais em testes
realizados previamente á aplicação dos protocolos do experimento, não foram relacionados.
Tabela 15. Testes de indução de tetraploidia utilizados para Astyanax altiparanae, com aplicação de
choques de pressão hidrostática. São considerados o momento de início do choque, os diferentes
xcv
tempos de exposição dos embriões, a sobrevivência na fase juvenil e a freqüência de indivíduos
triplóides.
TRATAMENTO INTENSIDADE
DE PRESSÃO
(PSI)
INÍCIO DO
CHOQUE
TEMPO DE
EXPOSIÇÃO
SOBREVIVÊNCIA
NA FASE JUVENIL
%
TETRAPLÓIDES
TETRA 1 3.000
20′ após
fecundação
5’ minutos 4 0%
TETRA 2 4.000
20′ após
fecundação
2’ minutos 16 0%
TETRA 3 4.000
20′ após
fecundação
5’ minutos 4 0%
TETRA 4 4.000
20′ após
fecundação
2’ minutos 10 0%
CONTROLE sem choque Não realizado Não realizado *3.000 0%
* Devido à necessidade de número de tanques para estocagem dos peixes de cada tratamento, os
indivíduos do controle foram colocados em tanques de terra de 200 m2 e a sobrevivência foi estimada
com base no desempenho de produção da piscicultura (entre 60 a 70% de sobrevivência na fase
juvenil).
A intensidade de pressão hidrostática de 5000psi mostrou-se letal para os embriões de
Astyanax altiparanae nos testes prévios realizados para os diferentes tempos de exposição
escolhidos, enquanto os tratamentos com choques de intensidade de 3000 e 4000psi apresentaram
baixa viabilidade, com taxas reduzidas de sobrevivência de indivíduos que chegaram à fase juvenil.
Contudo, alguns autores utilizaram, em diferentes espécies, choques de pressão hidrostática com
valores entre 7000 e 11000psi, conforme descrito por CASSANI & CATON (1986) e tempo maior de
exposição que o determinado nos protocolos formulados para este trabalho, que foi entre 2 e 5
minutos de duração. Ressalta-se que, concordando com a afirmação de HUERGO (2004), vários
processos fisiológicos que ocorrem em ovos recém fertilizados não são totalmente conhecidos, sendo
determinados por reações desencadeadas entre a fertilização e a primeira clivagem. Estes poderiam
desencadear efeitos diversos e levar à imprecisão o resultado dos choques aplicados nos tratamentos
de indução da tetraploidia. A obtenção de indivíduos tetraplóides tem sido obtida de modo mais
freqüente em experimentos com espécies de salmonídeos do que com espécies de águas quentes
(CHOURROUT, 1984 e CHOURROUT et al., 1986)
Os estudos desenvolvidos nesse trabalho, envolvendo metodologias de cultivo e os testes de
aplicação de técnicas de biomanipulação certamente poderão abrir novos caminhos para otimizar o
cultivo não só desta espécie de Astyanax, mas de um modo geral, de outras espécies de interesse
para a piscicultura, contribuindo para a ampliação dos conhecimentos e sua utilização de modo
adequado por parte dos criadores de peixes no Brasil.
xcvi
Espera-se, por fim, que as informações geradas com a experimentação desenvolvida neste
trabalho possam resultar em subsídios para a formulação de novos projetos, envolvendo o
desenvolvimento e a padronização das técnicas genéticas em piscicultura, promovendo com isso a
aplicação do conhecimento genético em conservação e ao mesmo tempo promovendo a divulgação e
a aplicação da biotecnologia para o cultivo de peixes.
xcvii
CONCLUSÕES
xcviii
4 CONCLUSÕES
No presente trabalho utilizou-se a espécie de peixe Astyanax altiparanae, conhecida
popularmente como lambari-do-rabo-amarelo, para a aplicação de metodologias de reprodução
induzida, visando sedimentar conhecimentos que permitissem a realização de testes com técnicas de
manipulação cromossômica. A formulação de protocolos viáveis de indução de poliploidia em
indivíduos desta espécie poderia resultar em modelos de aplicação para programas de piscicultura
com outras espécies de ocorrência na região tropical. Os resultados obtidos permitiram formular as
seguintes conclusões:
- A utilização do processo de reprodução induzida denominado “desova livre”, permitiu a obtenção de
boas taxas de eclosão e obtenção de larvas desta espécie. Esta metodologia apresentou-se como
uma opção de fácil aplicação, indicando que o protocolo atual, que já vem sendo utilizado pelos
piscicultores, poderia ser aperfeiçoado e potencializando, maximizando os resultados. Sua aplicação
mostrou-se mais efetiva durante os períodos mais quentes do ano, que correspondem aos meses de
novembro, dezembro e janeiro na região. Foi verificado que as melhores taxas de produção de larvas
para esta espécie, quando aplicado este processo de reprodução, correspondem a uma razão sexual
com proporção maior de indivíduos machos para cada fêmea (3:1 ou 4:1). O sucesso com o uso de
maior número de machos em relação ao de fêmeas poderia, assim, estar relacionado simplesmente à
disponibilização de esperma para a fertilização nesta espécie.
- No processo de reprodução induzida envolvendo a extrusão dos gametas, observou-se que sua
utilização possibilita a manipulação direta dos gametas e o controle do processo de fertilização. Tais
particularidades podem dar oportunidade para a formulação de protocolos de manipulação dos
cromossomos nos embriões, viabilizando a aplicação de metodologias biotecnológicas na piscicultura.
xcix
- O estudo do desenvolvimento embrionário do lambari Astyanax altiparanae foi realizado com a
finalidade de caracterizar as fases do processo, principalmente as fases iniciais, para possibilitar a
aplicação das técnicas de indução de poliploidia. Foi observado que a primeira clivagem do embrião
do lambari ocorreu entre 20 e 30 minutos a partir da fertilização do ovócito (tempo zero). Além disso,
observou-se que o período médio de incubação dos embriões até a eclosão das larvas foi de
aproximadamente 11 horas, mesmo em diferentes condições ambientais.
- Nos testes de indução de triploidia e de tetraploidia realizados em Astyanax altiparanae foram
observados altos índices de letalidade, tanto nos tratamentos com choques de temperatura quanto
naqueles em que a pressão hidrostática foi usada como agente indutor. Os resultados indicam que os
protocolos utilizados não foram efetivos, dentro das condições estabelecidas nos experimentos, para
viabilizar a produção de indivíduos poliplóides em escala de utilização em programas de piscicultura.
- Embora tenham resultado em altas taxas de mortalidade dos embriões, os tratamentos visando a
indução de triploidia resultaram em indivíduos que sobreviveram até a fase de juvenil, quando foram
caracterizados citogeneticamente. Os choques com altas temperaturas resultaram em indivíduos
triplóides, ainda que em baixa freqüência. Os tratamentos de indução com a aplicação de pressão
hidrostática não resultaram em indivíduos triplóides.
- Os choques térmicos ou de pressão hidrostática aplicados nos embriões desta espécie para
indução de tetraploidia, não resultaram em indivíduos tetraplóides, embora as taxas de sobrevivência
observadas nos tratamentos tenham sido altas, comparadas aos testes de triploidia. A análise
citogenética realizada em indivíduos amostrados em estágio juvenil revelou a presença apenas de
diplóides. Considera-se que a modificação dos protocolos, com a aplicação de tratamentos mais
radicais, tanto de variação da temperatura quanto da intensidade dos tratamentos de pressão, além
da verificação mais específica do momento de aplicação dos agentes, poderiam determinar o
incremento das freqüências de embriões poliplóides.
- Os testes citogenéticos realizados mostraram-se efetivos para a identificação dos níveis de ploidia
dos indivíduos resultantes dos tratamentos utilizados no presente trabalho.
c
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RESUMO
A aqüicultura mundial se estabelece como atividade sustentada pelo aumento do
consumo de carnes brancas e pela estagnação da captura e depleção dos estoques
de peixes no ambiente. O uso de espécies como tilápias, carpas, trutas, salmões
tornam-se cada vez mais comum nos países tradicionais na aqüicultura. No Brasil
espécies exóticas e alóctones sempre foram utilizadas na piscicultura e em projetos
de repovoamento de reservatórios de hidrelétricas. Esses peixes tornaram-se
invasores da maioria das bacias hidrográficas brasileiras, representando riscos para
diversidade da ictiofauna do Brasil. A conservação de peixes é um tema que envolve
ações que minimizam os impactos causados pelas atividades humanas como o
desmatamento, a poluição, construção de reservatórios e a introdução de espécies
exóticas ou alóctones. Técnicas genéticas a poliploidia, a reversão de sexo podem
ser utilizadas como incremento à produção aquícola e também para promover a
conservação da ictiofauna aplicando estas técnicas na reprodução de peixes
exóticos para promover a esterilidade dos estoques de peixes introduzidos. A
espécie Astyanax altiparanae foi utilizada como modelo biológico de reprodução
induzida e manipulação de gametas para a aplicação e padronização das técnicas
de poliploidia. Foram obtidos bons resultados com as técnicas de reprodução
induzida por hormônios obtidos em extratos hipofisários e também com o uso de
hormônios sintéticos. Para a manipulação dos embriões submetidos aos testes de
cxviii
poliploidia, foi caracterizado o desenvolvimento embrioários do lambari Astyanax
altiparanae, para a determinação dos choques de temperatura e de pressão
hidrostática. Nos testes de triploidia com uso de choques de temperatura, foram
obtidos indivíduos triplóides em baixa freqüência. Nos tratamentos com choques de
pressão hidrostática não foram obtidos indivíduos triplóides. Os testes em geral,
foram considerados letais para a maioria dos indivíduos dos tratamentos
comparados com os indivíduos do controle, que não foram submetidos aos choques
de temperatura ou pressão hidrostática. Nos testes de tetraploidia não foram obtidos
indivíduos tetraplóides e a letalidade dos indivíduos submetidos aos choques de
temperatura e pressão hidrostática foi muito alta em comparação com o controle do
experimento. Para a espécie Astyanax altiparanae, neste trabalho sugere-se que as
técnicas de manipulação cromossômica de ploidia não foram efetivas devido à baixa
freqüência de obtenção de indivíduos triplóides e tetraplóides e alta letalidade dos
embriões submetidos aos choques de temperatura e pressão hidrostática.
cxix
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