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INSTITUTO NACIONAL DE PESQUISAS DA AMAZÔNIA – INPA
Universidade Federal do Amazonas – UFAM
Programa de Pós-Graduação em Biologia Tropical e Recursos Naturais
Divisão do Curso de Entomologia – DCEN
Taxonomia de Philosepedon Eaton, 1904 (Diptera,
Psychodidae, Psychodinae) no Brasil
CÍNTHIA BARRÊTO CHAGAS
Manaus – Amazonas
Janeiro de 2009
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INSTITUTO NACIONAL DE PESQUISAS DA AMAZÔNIA – INPA
Universidade Federal do Amazonas – UFAM
Programa de Pós-Graduação em Biologia Tropical e Recursos Naturais
Divisão do Curso de Entomologia – DCEN
Taxonomia de Philosepedon Eaton, 1904 (Diptera,
Psychodidae, Psychodinae) no Brasil
CÍNTHIA BARRÊTO CHAGAS
Orientador: Dr. José Albertino Rafael
Co-Orientador: Dr. Freddy Ruben Bravo Quijano
Dissertação apresentada à Coordenação do
Programa de Pós-Graduação em Biologia
Tropical e Recursos Naturais, do convênio
INPA/UFAM, como parte dos requisitos
para obtenção do título de Mestre em
Ciências Biológicas, área de concentração
em Entomologia
Manaus – Amazonas
Janeiro de 2009
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ii
C433 Chagas, Cínthia Barrêto
Taxonomia de Phylosepedon Eaton, 1904 (Diptera, Psychodidae,
Psychodinae) no Brasil / Cínthia Barrêto Chagas .--- Manaus : [s.n.],
2009.
xiii, 85 f. : il.
Dissertação (mestrado)-- INPA/UFAM, Manaus, 2009
Orientador : José Albertino Rafael
Co-orientador : Freddy Ruben Bravo Quijano
Área de concentração : Entomologia
1. Philosepedon – Brasil. 2. Psychodinae. 3. Taxonomia. I. Título.
CDD 19. ed. 595.77
Sinopse:
Philosepedon foi proposto com base em uma espécie, Psychoda humeralis,
espécie-tipo do gênero. A taxonomia de Philosepedon é controversa, com
pelo menos três propostas de diagnose já publicadas. A diagnose mais ampla
provavelmente é a mais adequada para este gênero. Os exemplares estudados
são provenientes das coleções do INPA, MZUEFS, DZUP e NHM. Foram
estudados os tipos das espécies brasileiras: Philosepedon spathipenis, P.
plaumanni, P. uncinatum e P. oblongolum, e foram encontradas 21 espécies
novas para o Brasil.
Palavras-chave: 1. Taxonomia 2. Psychodinae 3. Philosepedon 4. espécies
novas 5. Brasil
iii
BANCA EXAMINADORA
Dra. Eunice Aparecida Bianchi Galati
Departamento de Entomologia da Faculdade de Saúde Pública da Universidade de São
Paulo – USP
Dra. Márcia Souto Couri
Departamento de Entomologia do Museu Nacional da Universidade Federal Do Rio de
Janeiro – MNRJ/UFRJ
Dra. Rosaly Ale-Rocha
Coordenação de Pesquisas em Entomologia do Instituto Nacional de Pesquisas da
Amazônia – CPEN/INPA
Dr. Silvio Shigueo Nihei
Departamento de Zoologia do Instituto de Biociências da Universidade de São Paulo –
USP
Dr. Sionei Ricardo Bonatto
Departamento de Zoologia da Universidade de Federal do Paraná – UFPR
iv
AGRADECIMENTOS
Esta é uma das partes mais belas de uma dissertação, pois nela agradecemos a
todos que consideramos importantes durante este processo. Espero que eu consiga
expressar em palavras o quanto sou grata a todos que de alguma forma me ajudaram na
minha formação.
Agradeço em primeiro lugar a Deus, pois sem a fé que tenho Nele seria mais
difícil enfrentar os obstáculos que encontrei nesta caminhada;
Aos meus pais Miosete e Charles Beline, que tanto amo, pelo apoio, incentivo,
conselhos, carinho e compreensão;
Aos meus irmãos, em especial minha linda irmãzinha Mabel que sempre esteve
ao meu lado, me dando força, e que este ano me deu uma linda sobrinha;
À minha linda família que sempre esteve ao meu lado me apoiando e
aconselhando, mesmo quando eu estava em Manaus; em especial aos meus padrinhos
Dindo (Antônio Aldemario) e Dinda (Audrá) por sempre me tratarem como sua filha;
A meu amor Rodrigo por estar sempre presente em minha vida, por me esperar
para que pudéssemos caminhar juntos, por ser meu ponto de equilíbrio quando tive
minhas crises existenciais no decorrer do trabalho e por sempre colocar meu trabalho lá
em cima mesmo quando eu achava que estava horrível e por ter me ajudado com a
finalização das figuras. Gostaria de agradecer também sua família por me tratar sempre
com muito carinho;
Ao INPA pela oportunidade de aprimoramento profissional no Programa de Pós-
Graduação em Entomologia e a UEFS pela estrutura oferecida durante o
desenvolvimento do projeto;
Ao meu orientador, José Albertino Rafael, que se mostrou sempre acessível e
por ter permitido que o projeto fosse realizado em grande parte na Bahia, o que foi
benéfico tanto para o desenvolvimento do projeto quanto na questão sentimental;
Ao meu co-orientador e orientador durante minha estada na Bahia, Freddy
Bravo, pela amizade, carinho, ensinamentos, preocupação e otimismo durante todos
esses anos que trabalhamos com intrigantes Psychodidae;
À coordenadora do curso e orientadora substituta, Beatriz Ronchi Teles, pelo
apoio;
v
Ao Ivan Castro por me ensinar morfologia do tórax, por ter me ajudado com os
desenhos, seja me ensinando a desenhar melhor, seja passando alguns desenhos a limpo
e por nos divertir com sua “impaciência”;
Aos Drs. Luciane Marinoni (DZUP) e Augusto Henriques (INPA), pelo
empréstimo do material utilizado neste trabalho e em especial aos Drs. Zoe Adams e
Erica McAlister (NHM), por terem enviado os exemplares em um momento em que o
museu não estava emprestando material;
Aos meus colegas e amigos do INPA pela amizade e apoio, em especial a Fabão,
Juliana, Mirian, Gil, Veracilda, Tiago, Frederico, André, Alex, Daniel e Jeyson;
Ao Eloy e esposa por nos acolher e apoiar quando chegamos em Manaus e pela
amizade;
Ao Helinho e família pelo apoio e amizade;
Aos meus colegas e amigos do Laboratório de Sistemática de Insetos – UEFS
(LASIS) que me ajudaram no trabalho, principalmente na montagem dos exemplares e
nas conversas descontraídas, em especial a Scheilla que foi muito importante nestes dois
anos;
Aos meus amigos da UEFS, em especial Cláudia, Adriana, Sâmia, Jamile,
Alexia e Danilo pelo apoio no desenvolvimento do trabalho e pela amizade
incondicional;
Aos meus amigos de Salvador sempre presentes em minha vida, em especial a
Camila, minha amiga desde quando éramos bebê;
Ao Laboratório de Taxonomia Vegetal – UEFS (TAXON), principalmente a
Flávio e Efigênia que permitiram o acesso ao laboratório para que pudesse fazer os
desenhos dos espécimes no microscópio com câmara clara;
Ao CNPq, por me conceder uma bolsa de estudos durante estes dois anos de
mestrado que me permitiu realizar este trabalho.
Muito obrigada.
vi
Dedico este trabalho ao meu
noivo Rodrigo e a minha
família.
vii
RESUMO
O gênero Philosepedon Eaton, 1904 foi proposto para Psychoda humeralis Meigen,
1818, espécie-tipo por monotipia. Tanto a posição taxonômica de Philosepedon dentro
de Psychodinae quanto a sua delimitação são temas bastante discutidos. Aqui,
apresenta-se um conjunto de caracteres para sua delimitação e incrementa-se o
conhecimento de sua diversidade no Brasil, onde sua fauna é pouco conhecida. Foram
examinados 185 espécimes das coleções do INPA, MZUEFS, DZUP e NHM,
provenientes dos estados do Amazonas, Pará, Mato Grosso, Bahia, Espírito Santo,
Paraná e Santa Catarina. Os exemplares foram montados em lâminas permanentes em
bálsamo do Canadá e suas estruturas ilustradas e caracterizadas. Foram encontradas 21
espécies novas. O estudo incluiu, também, os exemplares-tipo das quatro espécies
brasileiras previamente descritas. Uma sinonímia é proposta sob Philosepedon,
Feuerborniella Vaillant, 1974 sin. n., com as seguintes combinações novas P. obscura
(Tonnoir, 1919) comb. nov., P. spathipenis (Duckhouse, 1968) comb. nov., P.
plaumanni (Duckhouse, 1968) comb. nov., P. malayensis (Satchell, 1955) comb. nov. e
P. veracruzana (Ibáñez-Bernal, 2004) comb. nov.. Três espécies tratadas em
Philosepedon são transferidas para Threticus Eaton, 1904: T. calabens (Quate, 1965)
comb. nov., T. mutabilis (Quate, 1965) comb. nov. e T. soljani (Krek, 1971) comb.
nov.. Uma espécie tratada em Philosepedon é transferida para Eurygarka Quate, 1959:
E. aliciae (Ibáñez-Bernal e Cáceres, 2005) comb. nov..
viii
ABSTRACT
The genus Philosepedon Eaton, 1904 was proposed to Psychoda humeralis Meigen,
1818 by monotype. The taxonomic position of Philosepedon in Psychodinae and it’s
diagnose are controversial. Here, it is proposed a new diagnose to genus. The objective
of this study was study the Brazilian fauna of Philosepedon, a genus poor studied in this
country. 185 specimens were examined from collections of INPA, MZUEFS, DZUP
and NHM, from the Amazonas, Pará, Mato Grosso, Bahia, Espírito Santo, Paraná and
Santa Catarina states. All the specimens were treated with 10% KOH and mounted in
Canada balsam and its structures illustrated and characterized. In this study, 21 new
species were found, and studied the type-material of four Brazilian species of
Philosepedon. The following synonymy is proposed to Philosepedon: Feuerborniella
Vaillant, 1974, n. syn., with the following new combinations P. obscura (Tonnoir,
1919) n. comb., P. spathipenis (Duckhouse, 1968) n. comb., P. plaumanni (Duckhouse,
1968) n. comb., P. malayensis (Satchell, 1955) n. comb. and P. veracruzana (Ibáñez-
Bernal, 2004), n. comb.. Three species from Philosepedon are transferred to Threticus
Eaton, 1904: T. calabens (Quate, 1965) n. comb., T. mutabilis (Quate, 1965), n. comb.
and T. soljani (Krek, 1971), n. comb.. One specie from Philosepedon is transferred to
Eurygarka Quate, 1959: E. aliciae (Ibáñez-Bernal e Cáceres, 2005), n. comb..
ix
SUMÁRIO
BANCA EXAMINADORA ........................................................................................... iii
AGRADECIMENTOS ...................................................................................................iv
RESUMO ....................................................................................................................... vii
ABSTRACT ................................................................................................................. viii
SUMÁRIO .......................................................................................................................ix
LISTA DE FIGURAS .....................................................................................................xi
1. INTRODUÇÃO ........................................................................................................... 1
1.1. Taxonomia de Philosepedon Eaton 1904 ....................................................... 2
2. OBJETIVOS ................................................................................................................ 7
2.1. Geral ................................................................................................................. 7
2.2. Específicos ........................................................................................................ 7
3. MATERIAIS E MÉTODOS ....................................................................................... 8
3.1. Material examinado ........................................................................................ 8
3.2. Preparação dos espécimes .............................................................................. 8
3.3. Chave de identificação .................................................................................... 9
3.4. Estudos dos espéciemes ................................................................................... 9
3.5. Fórmula do palpo ............................................................................................ 9
3.6. Informações das etiquetas dos espécimes ...................................................... 9
3.7. Terminologia .................................................................................................. 10
4. RESULTADOS E DISCUSSÃO .............................................................................. 11
4.1. Tribo Psychodini Enderlein, 1935 ............................................................... 11
Comentários sobre Psychodini .................................................................. 11
Chave de identificação dos gêneros de Psychodini .................................. 12
4.2. Philosepedon Eaton, 1904 ............................................................................. 13
Comentários quanto à definição de Philosepedon ................................... 14
Chave de identificação para machos das espécies de Philosepedon do
Brasil ............................................................................................................ 17
Philosepedon spathipenis (Duckhouse) ...................................................... 20
Philosepedon plaumanni (Duckhouse) ...................................................... 21
Philosepedon oblongolum Bravo, Chagas e Cordeiro .............................. 22
Philosepedon uncinatum Bravo, Chagas e Cordeiro ................................ 22
Philosepedon sp. nov. a ............................................................................... 23
x
Philosepedon sp. nov. b ............................................................................... 24
Philosepedon sp. nov. c ............................................................................... 25
Philosepedon sp. nov. d ............................................................................... 27
Philosepedon sp. nov. e ............................................................................... 28
Philosepedon sp. nov. f ................................................................................ 29
Philosepedon sp. nov. g ............................................................................... 30
Philosepedon sp. nov. h ............................................................................... 31
Philosepedon sp. nov. i ................................................................................ 32
Philosepedon sp. nov. j ................................................................................ 34
Philosepedon sp. nov. l ................................................................................ 35
Philosepedon sp. nov. m .............................................................................. 36
Philosepedon sp. nov. n ............................................................................... 38
Philosepedon sp. nov. o ............................................................................... 39
Philosepedon sp. nov. p ............................................................................... 40
Philosepedon sp. nov. q ............................................................................... 42
Philosepedon sp. nov. r ............................................................................... 43
Philosepedon sp. nov. s ............................................................................... 44
Philosepedon sp. nov. t ................................................................................ 45
Philosepedon sp. nov. u ............................................................................... 47
Philosepedon sp. nov. v ............................................................................... 48
Comentários sobre as espécies de Philosepedon ....................................... 50
5. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS .................................................................... 51
6. FONTES FINANCIADORAS .................................................................................. 59
APÊNDICE I .................................................................................................................. 60
FIGURAS ....................................................................................................................... 65
xi
LISTA DE FIGURAS
Figura 1: Tórax de Philosepedon. Abreviaturas: as = inserção da asa; es = esclerito
adicional proximal da pteropleura quadrangular; ha = inserção do halter; se =
sensila da mesopleura ............................................................................................... 65
Figuras 2-11: Philosepedon sp. nov. a, holótipo (figuras 3-7, 9, 11) , parátipo do Pará
(figura 2) , parátipo da Bahia (figuras 8, 10) : 2. Cabeça; 3. Base da antena; 4.
Ápice da antena; 5. Labela; 6. Palpo; 7. Asa; 8. Terminália, vista dorsal; 9.
Gonóstilo; 10. Terminália, vista ventral; 11. Cerco. Abreviaturas: ap = apódema
edeagal; asc = ascóide; ce = cerco; ed = edeago; ep = epândrio; epi = epiprocto; esc
= escapo; fl = flagelômero; fm = forquilha mediana; fr = forquilha radial; gs =
gonóstilo; gx = gonocoxito; hi = hipândrio; hip = hipoprocto; la = labela; pa =
parâmero; pe = pedicelo; ph = placa pós-hipandrial; pl = palpo; pt = ponte ocular;
sc = veia sub costal; si = sutura interocular; sp = sensilas do palpo; te = tenácula .. 66
Figuras 12-19: Philosepedon sp. nov. b, holótipo : 12. Base da antena; 13.
Flagelômero com ascóide; 14. Labela; 15. Palpo; 16. Asa; 17. Terminália, vista
dorsal; 18. Terminália, vista ventral; 19. Cerco ....................................................... 67
Figuras 20-27: Philosepedon sp. nov. c, holótipo (figuras 20, 21, 23, 25, 26) ,
parátipo do Paraná (figuras 22, 24) , parátipo do Paraná (figura 27) : 20. Base da
antena; 21. Ápice da antena; 22. Labela; 23. Palpo; 24. Asa; 25. Terminália, vista
dorsal; 26. Terminália, vista ventral; 27. Cerco ....................................................... 68
Figuras 28-35: Philosepedon sp. nov. d, holótipo : 28. Base da antena; 29. Ápice da
antena; 30. Labela; 31. Dois primeiros palpômeros; 32. Asa; 33. Terminália, vista
dorsal; 34. Terminália, vista ventral; 35. Cerco ....................................................... 69
Figuras 36-41: Philosepedon sp. nov. e, holótipo : 36. Base da antena; 37. Palpo; 38.
Asa; 39. Terminália, vista dorsal; 40. Terminália, vista ventral; 41. Cerco ............. 70
Figuras 42-48: Philosepedon sp. nov. f, holótipo : 42. Base da antena; 43. Labela;
44. Palpo; 45. Asa; 46. Terminália, vista dorsal; 47. Terminália, vista ventral; 48.
Cerco ........................................................................................................................ 71
Figuras 49-55: Philosepedon sp. nov. g, holótipo : 49. Base da antena; 50. Labela;
51. Primeiro palpômero; 52. Asa; 53. Terminália, vista dorsal; 54. Terminália, vista
ventral; 55. Cerco ..................................................................................................... 72
xii
Figuras 56-62: Philosepedon sp. nov. h, holótipo (figuras 56-61) , parátipo do Paraná
(figura 62) : 56. Base da antena; 57. Labela; 58. Palpo; 59. Asa; 60. Terminália,
vista dorsal; 61. Terminália, vista ventral; 62. Ápice do cerco com duas tenáculas 73
Figuras 63-70: Philosepedon sp. nov. i, holótipo (figuras 63-66, 68-70) , parátipo do
Espírito Santo (figura 67) : 63. Base da antena; 64. Ápice da antena; 65. Labela;
66. Palpo; 67. Asa; 68. Terminália, vista dorsal; 69. Terminália, vista ventral; 70.
Cerco ........................................................................................................................ 74
Figuras 71-77: Philosepedon sp. nov. j, holótipo (figuras 71-75) , parátipo do Pará
(figuras 76, 77) : 71. Base da antena; 72. Labela; 73. Palpo; 74. Asa; 75.
Terminália, vista dorsal; 76. Terminália, vista ventral; 77. Cerco ........................... 75
Figuras 78-85: Philosepedon sp. nov. l, holótipo : 78. Base da antena; 79. Labela;
80. Palpo; 81. Asa; 82. Terminália, vista dorsal; 83. Terminália, vista ventral; 84.
Cerco esquerdo com seis tenáculas; 85. Ápice do cerco direito com sete tenáculas 76
Figuras 86-93: Philosepedon sp. nov. m, holótipo : 86. Base da antena; 87. Ápice da
antena; 88. Labela; 89. Palpo; 90. Asa; 91. Terminália, vista dorsal; 92. Terminália,
vista ventral; 93. Cerco ............................................................................................. 77
Figuras 94-101: Philosepedon sp. nov. n, holótipo (figuras 96, 98, 99, 101) , parátipo
do Espírito Santo (figuras 94, 97) , parátipo da Bahia (figura 95) , parátipo do
Amazonas (figuras 100) : 94. Base da antena; 95. Ápice da antena; 96. Labela;
97. Palpo; 98. Asa; 99. Terminália, vista dorsal; 100. Terminália, vista ventral; 101.
Cerco ........................................................................................................................ 78
Figuras 102-109: Philosepedon sp. nov. o, holótipo (figuras 102-107, 109) , parátipo
da Bahia (figura 108) : 102. Base da antena; 103. Ápice da antena; 104. Labela;
105. Palpo; 106. Asa; 107. Terminália, vista dorsal; 108. Terminália, vista ventral;
109. Cerco ................................................................................................................ 79
Figuras 110-117: Philosepedon sp. nov. p, holótipo (figuras 110-116) , parátipo da
Bahia (figura 117) : 110. Base da antena; 111. Ápice da antena; 112. Labela; 113.
Palpo; 114. Asa; 115. Terminália, vista dorsal; 116. Terminália, vista ventral; 117.
Cerco ........................................................................................................................ 80
Figuras 118-125: Philosepedon sp. nov. q, holótipo : 118. Base da antena; 119.
Ápice da antena; 120. Labela; 121. Palpo; 122. Asa; 123. Terminália, vista dorsal;
124. Terminália, vista ventral; 125. Cerco ............................................................... 81
Figuras 126-133: Philosepedon sp. nov. r, holótipo (figuras 126-128, 130-133) ,
parátipo da Bahia (figura 129) : 126. Base da antena; 127. Flagelômero com
xiii
ascóide; 128. Labela; 129. Palpo; 130. Asa; 131. Terminália, vista dorsal; 132.
Terminália, vista ventral; 133. Cerco ....................................................................... 82
Figuras 134-141: Philosepedon sp. nov. s, holótipo : 134. Base da antena; 135.
Ápice da antena; 136. Labela; 137. Palpo; 138. Asa; 139. Terminália, vista dorsal;
140. Terminália, vista ventral; 141. Cerco ............................................................... 83
Figuras 142-148: Philosepedon sp. nov. t, holótipo (figuras 142-147) , parátipo do
Amazonas (figura 148) : 142. Base da antena; 143. Labela; 144. Palpo; 145. Asa;
146. Terminália, vista dorsal; 147. Terminália, vista ventral; 148. Cerco ............... 84
Figuras 149-156: Philosepedon sp. nov. u, holótipo (figuras 149-152, 154, 155) ,
parátipo do Espírito Santo (figura 153) , parátipo do Espírito Santo (figura 156)
: 149. Base da antena; 150. Ápice da antena; 151. Labela; 152. Palpo; 153. Asa;
154. Terminália, vista dorsal; 155. Terminália, vista ventral; 156. Cerco ............... 85
Figuras 157-165: Philosepedon sp. nov. v, holótipo (figuras 157-159, 161-165) ,
parátipo da Bahia (figura 160) : 157. Base da antena; 158. Ápice da antena; 159.
Labela; 160. Palpo; 161. Asa; 162. Terminália, vista dorsal; 163. Terminália, vista
ventral; 164. Cerco; 165. Ápice do cerco com tenácula ........................................... 86
1
1. INTRODUÇÃO
Os Psychodidae são de porte reduzido, variando de 1-5 mm de comprimento.
São conhecidas aproximadamente 2600 espécies, distribuídas em todos os continentes,
exceto na Antártida (Quate e Brown 2004).
As larvas são livres, ápodas, eucéfalas, geralmente anfipnêusticas, e são
encontradas em meios aquáticos ou semi-aquáticos ou locais úmidos. As pupas têm
corpo cilíndrico ou achatado dorsoventralmente e possuem trompas respiratórias
protorácicas (Forattini 1973; Quate e Vockeroth 1981).
Os adultos são encontrados em locais sombreados, nas proximidades de locais
úmidos (Maxwell e Lefroy 1923; Forattini 1973; Maes e Killick-Kendrick 1990) e seus
ovos são postos em matéria orgânica em decomposição, fezes, água, musgos ou em
locais pedregosos (Maxwell e Lefroy 1923; Duckhouse 1985; Ali e Kok-Yokon 1990;
Maes e Killick-Kendrick 1990). Em algumas espécies as fêmeas atuam como
polinizadoras (e. g. Diaz e Kite 2002; Gibernau et al. 2003; Gibernau et al. 2004).
Outros psicodídeos têm importância médica, entre eles estão os que se criam na rede de
encanamentos domiciliares que podem causar míases acidentais, ser vetores mecânicos
de patologias ou causar asma, devido às cerdas do corpo (Forattini 1973; Smith e
Thomas 1979; Ježek e Yagci 2005) e os hematófagos na fase adulta podem transmitir
agentes patogênicos causadores de doenças como a leishmaniose (Foratiini 1973; Quate
e Brown 2004).
Quanto à taxonomia, Hennig (1972) e Quate e Vockeroth (1981) propuseram a
monofilia de Psychodidae, proposta que é aceita pela maioria dos pesquisadores do
grupo. A classificação mais aceita divide Psychodidae em seis subfamílias:
Bruchomyiinae, Horaiellinae, Phlebotominae, Psychodinae, Sycoracinae e
Trichomyiinae (Duckhouse 1972, 1978, 1985, 1987; Quate e Vockeroth 1981).
Contudo, esta proposta não é aceita por todos os pesquisadores do grupo. Williams
(1993), por exemplo, considerou quatro subfamílias em Psychodidae e Phlebotominae
como outra família, tendo Bruchomyiinae como subfamília de Phlebotomidae.
Psychodinae é monofilética e tem como sinapomorfia mais evidente a presença
de ponte ocular, podendo ser reduzida secundariamente (Duckhouse 1966; Hennig
1972). A classificação de Psychodinae é um tema controverso, sendo reconhecidas entre
cinco e oito tribos (Enderlein 1935, 1937; Quate 1959a, 1996, 1999; Vaillant 1971-
1983a, 1978b, 1982, 1983b, 1990; Duckhouse 1985, 1987, 1990; Ježek 1983a, 1983b,
2
1984; Quate e Brown 2004). Por outro lado, na classificação seguida nos catálogos de
Psychodinae das distintas regiões biogeográficas são reconhecidas cinco tribos:
Maruinini, Mormiini, Paramormiini, Pericomini e Psychodini (Quate 1965b; Ježek
1997; Duckhouse e Lewis 1989, 2007; Wagner 1991).
1.1. Taxonomia de Philosepedon Eaton, 1904
A delimitação de Philosepedon Eaton, 1904 e sua posição taxonômica dentro de
Psychodinae são temas que têm sido tratados por vários autores na literatura (e.g. Quate
1959a, 1996; Vaillant 1972b, 1974, 1990; Ježek 1985, Duckhouse 1985). A seqüência
histórica destes dois assuntos permitirá entender a problemática taxonômica do gênero.
Philosepedon foi proposto por Eaton (1904), tendo como espécie-tipo Psychoda
humeralis Meigen, 1818, por monotipia. Philosepedon foi separado das demais espécies
de Psychoda Latreille, 1796 por possuir asa com venação radial sem cerdas longas,
finas e flexíveis e terminália da fêmea curta e obtusa.
Tonnoir (1922) considerou Philosepedon como subgênero de Psychoda, porque
Philosepedon foi proposto baseado em apenas dois caracteres. Estes caracteres, segundo
Tonnoir, não são bons caracteres diagnóticos, pois são, muitas vezes, ignorados nas
descrições das espécies. Além disso, Tonnoir (1922) afirmou que, para o
reconhecimento de Philosepedon como gênero, seria necessário que Eaton (1904)
apontasse caracteres importantes nas antenas e na terminália do macho. A proposta de
Tonnoir (1922) foi seguida por outros autores como Enderlein (1937), Tonnoir (1940),
Jung (1956), Vaillant (1960) e Szabó (1965).
Quate (1959a), ao tratar de Psychodini, restituiu o status genérico a
Philosepedon e incluiu, também, na tribo os gêneros Psychoda, Trichopsychoda
Tonnoir, 1922, Threticus Eaton, 1904, Eurygarka Quate, 1959 e Lepidopsychoda
Edwards, 1928. Quate (op. cit.) apresentou uma diagnose para Philosepedon e destacou
cinco caracteres: labela não plana com cerdas apicais, mas sem dentes; ascóides com
formato em Y; asa com a membrana alar sem cerdas; cerco do macho com uma a três
tenáculas e edeago simétrico.
Quate (1959a) destacou a importância dos diferentes formatos da labela na
separação dos gêneros, uma vez que todos os Psychodidae tem labela não plana, exceto
Phlebotominae e Psychoda e enfatizou que este caráter não deveria ser ignorado. Vale
ressaltar que, além de Phlebotominae e Psychoda, Neomaruina Duckhouse, 1985,
3
Epacretron Quate, 1965 e duas espécies de Threticus também possuem labela plana
(Duckhouse 1985).
Quate (1962a) acrescentou à definição de Philosepedon sensu Quate (1959a) a
presença de membrana alar com cerdas e sinonimizou Lepidopsychoda com
Philosepedon e sinonimizou Telmatoscopus (Minioceros) Quate, 1959 com
Lepidopsychoda. Nesta definição, Quate (1962a) não deixou claro o número exato de
tenáculas no cerco do macho, sugerindo apenas que esse número pode variar de uma a
várias tenáculas.
Quate e Quate (1967) não fizeram uma diagnose para Philosepedon, entretanto,
o diferenciaram de Psychoda, por possuir labela não plana sem dentes e edeago
simétrico; e de Threticus, por possuir ascóides com formato em Y.
Vaillant (1971) tem uma visão diferente de Quate (1959a) quanto à composição
de Psychodini. Vaillant (op. cit.) incluiu na tribo apenas Psychoda e Copropsychoda
Vaillant, 1971, gêneros que possuem labela plana com dentes e edeago assimétrico. Os
demais gêneros, incluídos em Psychodini por Quate (1959a), foram transferidos por
Vaillant (1971, 1972a) para Telmatoscopini. É importante destacar que Eurygarka e
Lepidopsychoda foram omitidos de qualquer discussão sobre seu status genérico e sua
classificação em Psychodinae.
Segundo Vaillant (1972b), Threticus, Nielseniella Vaillant, 1972, Philosepedon,
Quatiella Botosaneanu e Vaillant, 1970 e Feuerborniella Vaillant, 1974 possuem
caracteres em comum classificando-os no grupo Threticus de Telmatoscopini. Vaillant
(1972b) não incluiu Trichopsychoda no grupo Threticus por causa das diferenças na
terminália masculina, apesar de possuir características em comum com o grupo.
Vaillant (1972b, 1974) discordou quanto à definição de Philosepedon proposta
por Quate (1959a, 1962a) por considerá-la muito ampla. Nesses trabalhos, Vaillant,
propôs uma definição menos abrangente para Philosepedon na qual inclui as seguintes
características: cerco do macho com duas tenáculas simples ou grupo de duas tenáculas,
membrana alar sem cerdas, além de outras como labela bulbosa com cerdas apicais, mas
sem dentes, ascóides com formato em Y e edeago simétrico. Entre os caracteres
apontados por Vaillant (1972b, 1974) o que mais chamam a atenção é o número de
tenáculas, duas ou grupo de duas, pois este caráter não foi explicado através de uma
análise filogenética ou taxonomica. As espécies descritas em Philosepedon que
possuiam uma tenácula foram transferidas para Quatiella e Feuerborniella.
4
No catálogo de Diptera das Américas ao sul dos Estados Unidos, Duckhouse
(1973a) classificou Eurygarka e Quatiella como subgêneros de Philosepedon. Na
classificação proposta por Vaillant (1972b, 1974), Quatiella foi considerado como
gênero separado de Philosepedon, além disso o autor se omitiu de qualquer comentário
quanto a Eurygarka. Posteriormente, Duckhouse (1974) sinonimizou Quatiella com
Philosepedon afirmando que as características diagnósticas de ambos são iguais. Já o
status genérico de Eurygarka foi restabelecido por Quate e Vockeroth (1981) na chave
dos gêneros de Psychodidae da região Neártica. Curler e Moulton (2008) estabeleceram
uma definição mais detalhada de Eurygarka e discutiram a monofilia do gênero.
Ježek (1983a), a partir de uma análise cladística, baseada em 24 gêneros,
redefiniu os limites de Psychodini e incluiu nesta tribo apenas os gêneros com labela
plana com dentes e edeago assimétrico, assemelhando-se, desta maneira, à proposta de
Vaillant (1971, 1972a): Psychoda, Copropsychoda, Logima Eaton, 1904, Tinearia
Schellenberg, 1803, Ypsydocha Ježek, 1984, Psychodula Ježek, 1984, Chodopsycha
Ježek, 1984, Psychomora Ježek, 1984, Psycha Ježek, 1984 e Psychodocha Ježek, 1984.
Neste trabalho, Ježek propôs que Philosepedon e os demais gêneros relacionados a ele,
Trichopsychoda, Feuerborniella e Threticus, deveriam ser incluídos na tribo
Paramormiini (=Telmatoscopini sensu Vaillant (1971)). Vale ressaltar que o nome
Paramormiini proposto por Enderlein (1935) tem prioridade sobre Telmatoscopini
proposto por Vaillant (1971) por ser mais antigo (Duckhouse 1987) e que trata dos
gêneros relacionados à Paramormia e Telmatoscopus.
Ježek (1985) propôs a subtribo Trichopsychodina de Paramormiini para quatro
gêneros: Trichopsychoda, Philosepedon, Feuerborniella e Threticus. Os gêneros citados
acima, já haviam sido agrupados por Vaillant (1972b, 1974) no grupo Threticus de
Telmatoscopini (=Paramormiini). Nesse mesmo trabalho, Ježek não fez nenhuma
referência aos táxons Quatiella, Eurygarka e Nielseniella, táxons que Quate (1959a),
Quate e Quate (1967) e Vaillant (1971) relacionaram à Trichopsychoda, Philosepedon,
Feuerborniella e Threticus.
Ježek (1985) adotou uma definição mais restrita para Philosepedon que a
proposta por Vaillant (1972b, 1974), e incluiu somente espécies cujo macho tem cerco
com ápice bilobado e com uma tenácula em cada lobo, edeago simétrico, flagelômeros
11, 12 e 13 fusionados e esclerito proximal adicional do pteropleurito quadrangular.
Duckhouse (1985), ao revisar a tribo Psychodini, se aproximou da definição de
Quate (1959a) e propôs 10 prováveis caracteres apomórficos de Psychodini, entretanto,
5
o autor destaca sete, pois estes caracteres são exclusivos da tribo, exceto os carcteres 3 e
6 que ocorrem esporadicamente em Paramormiini : 1) antena com flagelômeros
nodiformes, exceto os três últimos que são reduzidos e com formato subesférico e sem
ascóides; 2) os ascóides com formato em Y, ou formas derivadas como perda de um dos
dois braços anteriores (Threticus) ou três braços anteriores (algumas espécies de
Psychoda); 3) asa com veia R
5
terminando no ápice; 4) veia Sc curta e grossa; 5) tórax
com sensila na região anterior da mesopleura; 6) epândrio (tergito 9 do macho) com
uma abertura pseudoespiracular; 7) antena da larva com duas estruturas sensoriais com
formato de cogumelo, ou reduzido secundariamente.
Nesse mesmo trabalho, Duckhouse
(1985), incluiu em Psychodini Psychoda, Feuerborniella, Philosepedon,
Trichopsychoda, Threticus, Epacretron e Neomaruina.
Em trabalhos posteriores sobre a classificação de Psychodinae, Vaillant (1990,
1991) seguiu a linha de pensamento exposta em Vaillant (1971, 1972a, 1972b, 1974).
Vaillant (1990) sinonimizou Telmatoscopini em Mormiini e manteve a mesma
composição de Vaillant (1971, 1972a, 1972b, 1974). Vaillant (1991) propôs a subtribo
Threticina de Mormiini para os gêneros originalmente tratados por ele como grupo
Threticus: Philosepedon, Feuerborniella, Threticus, Nielseniella, Quatiella e
Trichopsychoda. Vaillant (1991) não considerou o nome anterior da subtribo criado por
Ježek (1985), Trichopsychodina, criando, assim, um problema de prioridade.
Os catálogos dos Psychodidae paleárticos, preparados por Wagner (1991),
Wagner et al. (2002) e no site da fauna de Psychodidae da Europa (Wagner 2004),
seguiram a classificação de Vaillant (1971-1983a, 1990, 1991) tanto para a delimitação
de Philosepedon quanto a sua inserção em Paramormiini (= Telmatoscopini).
Quate (1996) afirmou que apesar de Philosepedon ter sido divido em outros
gêneros (Quatiella e Feuerborniella) por Vaillant (1972a, 1972b, 1974), prefere retomar
a definição proposta por ele em 1959a por acreditar que é necessário um melhor
entendimento das espécies neotropicais, que são numerosas e diversas, mesmo sabendo
que a definição mais ampla provavelmente torne o gênero polifilético.
Ibáñez-Bernal (2004), ao descrever Feuerborniella veracruzana Ibáñez-Bernal,
2004, retomou a definição de Philosepedon sensu Vaillant (1974), na qual as duas
espécies brasileiras, Philosepedon spathipenis (Duckhouse, 1968) e P. plaumanni
(Duckhouse, 1968), foram transferidas para Feuerborniella. Ibáñez-Bernal e Cáceres
(2005) ao descrever uma espécie nova de Philosepedon do Peru, adotaram a proposta
mais ampla de Quate (1996), por acreditar que esta é provavelmente a mais apropriada,
6
entretanto, consideraram Feuerborniella como um gênero válido e mantiveram as duas
espécies brasileiras citadas acima em Feuerborniella. Bravo et al. (2006) adotaram a
proposta de Quate (1996) pelo mesmo motivo utilizado por Ibáñez-Bernal e Cáceres
(2005), contudo consideram as espécies citadas acima como Philosepedon.
Quando se aceita a definição proposta por Quate (1996) para Philosepedon, são
reconhecidas 91 espécies para o mundo, destas 29 são registradas na região Neotropical,
sendo quatro do Brasil: Philosepedon plaumanni (Duckhouse), P. spathipenis
(Duckhouse), P. oblongolum Bravo, Chagas e Cordeiro e P. uncinatum Bravo, Chagas e
Cordeiro (Duckhouse 1973a, 1974; Quate 1996, 1999; Wagner e Masteller 1996;
Collantes e Martínez-Ortega 1999; Ibañez-Bernal e Cáceres 2005; Bravo et al. 2006).
De acordo com a definição de Vaillant (1974), o número de espécies para o mundo é
reduzida para 84, com apenas 24 espécies registradas na região Neotropical e duas no
Brasil Philosepedon oblongolum e P. uncinatum (Vaillant 1974; Collantes e Martínez-
Ortega 1999; Ježek 1999; Ježek e van Harten 2002; Bravo et al. 2006); nesta proposta
as espécies que possuem apenas uma tenácula foram transferidas para Quatiella ou
Feuerborniella. Por fim, de acordo com a definição mais restrita proposta por Ježek
(1985) o número de espécies se reduz para 47 espécies no mundo e sete espécies na
região Neotropical (Ježek 1999; Ježek e van Harten 2002; Bravo et al. 2006).
7
2. OBJETIVOS
2.1. Geral
Estudar a diversidade de espécies do gênero Philosepedon Eaton no Brasil com
base em estudos de exemplares depositados em museus nacionais e do exterior.
2.2. Específicos
Propor uma chave de identificação para os gêneros de Psychodini.
Descrever as espécies novas encontradas.
Propor uma chave de identificação para as espécies registradas no Brasil.
Fornecer registros geográficos das espécies de Philosepedon estudadas.
8
3. MATERIAL E MÉTODOS
3.1. Material examinado
Os espécimes de Philosepedon estudados foram obtidos a partir: a) da Coleção
de Invertebrados do Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia (INPA), Manaus,
Amazonas, Brasil; b) da Coleção Entomológica Professor Johann Becker do Museu de
Zoologia da Universidade Estadual de Feira de Santana (MZUEFS), Feira de Santana,
Bahia, Brasil; c) da Coleção Padre Jesus Santiago Moure da Universidade Federal do
Paraná (DZUP), Curitiba, Paraná, Brasil; e d) do Natural History Museum (NHM),
Londres, Inglaterra.
O Museu de Zoologia da Universidade de São Paulo (MZUSP) foi visitado e os
exemplares montados pertenciam a Phlebotominae. Na Coleção da Universidade
Federal do Amazonas (UFAM) tinha apenas dois exemplares de Clogmia Enderlein,
1937.
3.2. Preparação dos espécimes
Todos os exemplares foram montados em lâminas permanentes de acordo com o
procedimento modificado de Bravo (1996): 1) o espécime foi colocado em uma solução
aquosa de hidróxido de potássio (KOH) a 10%, por aproximadamente três horas dentro
de uma estufa a 50ºC; 2) em água por 10 minutos; 3) após a diafanização, o espécime
foi colocado em ácido acético 10% com corante fucsina básica por 10 minutos; 4) em
álcool 70% por 10 minutos; 5) em álcool 100% por 10 minutos; 6) em óleo de cravo
para a fixação do exemplar por 10 minutos; 7) em acetato de butila por cinco minutos;
8) transferido para uma gota de bálsamo do Canadá sobre lâmina de vidro onde foram
separadas as asas, cabeça e terminália; as asas foram transferidas para outra gota de
bálsamo do Canadá na mesma lâmina. Após esse procedimento as peças foram cobertas
com lamínula.
9
3.3. Chave de identificação
A chave de identificação para os gêneros de Psychodini foi proposta com base
no levantamento de caracteres encontrados na bibliografia. Nesta chave também é
informado à distribuição geográfica dos gêneros.
A chave de identificação para os machos das espécies de Philosepedon que
ocorrem no Brasil foi proposta com base na análise dos exemplares de todas as espécies
estudas neste trabalho.
3.4. Estudo dos espécimes
A identificação dos espécimes foi feita com base nas descrições originais das
espécies, uma vez que não existe chave de identificação para as espécies de
Philosepedon. As espécies já conhecidas para o Brasil foram analisadas (material-tipo e
descrição original) e não foi necessário fazer uma redescrição.
Os exemplares foram desenhados com auxilio de microscópio óptico equipado
com câmara clara.
3.5. Fórmula do palpo
A fórmula do palpo é feita com base nas proporções dos palpômeros. É medido
o tamanho dos quatro palpômeros. A medida do primeiro palpômero equivale a 1. Os
valores dos demais palpômeros são calculados por proporção em relação ao tamanho do
primeiro.
3.6. Informações das etiquetas dos espécimes
Na lista do material examinado de cada espécie, os registros geográficos
seguiram uma ordem de Norte a Sul e Oeste a Leste. O nome do país foi colocado em
maiúsculo, os estados em negrito, os meses de coletas em algarismo romano minúsculo
e a instituição na qual o espécime é proveniente em negrito e entre parênteses. Os dados
de cada etiqueta dos espécimes foram separados por til (~), as informações úteis
adicionais e complemento de abreviações presentes nas etiquetas foram colocadas entre
colchetes.
10
3.7. Terminologia
A terminologia utilizada segue a proposta de McAlpine (1981) e para alguns
caracteres específicos de Psychodini foi seguida a proposta de Duckhouse (1985) e
Ježek (1995).
11
4. RESULTADOS E DISCUSSÃO
Foram estudados 170 exemplares de Philosepedon, distribuídos em 21 espécies
novas e P. uncinatum, procedentes dos estados do Amazonas, Pará, Mato Grosso,
Bahia, Espírito Santo e Paraná. Foram estudados, também, 15 espécimes-tipo de: P.
spathipenis, P. plaumanni, P. uncinatum e P. oblongolum.
4.1. Tribo Psychodini Enderlein, 1935
Diagnose proposta por Duckhouse (1985). Larva: antena com duas estruturas
sensoriais com formato de cogumelo, ou estas estruturas reduzidas secundariamente.
Adulto: antena com 12 a 14 flagelômeros nodiformes, exceto os três últimos que são
reduzidos, subesféricos e sem ascóides; em algumas espécies os flagelômeros 12 e 13
podem ter internodo, ou os flagelômeros 13 e 14 podem ter perdido o internodo
secundariamente; ascóides com formato de Y, ou formatos derivados, como perda de
um dos dois braços anteriores (Threticus) ou três braços anteriores (algumas espécies de
Psychoda). Tórax com sensila cilíndrica, curta e pilosa na mesopleura (fig. 1); esclerito
adicional proximal do anepímero quadrangular. Asa com veia Sc curta e grossa e veia
R
5
terminando no ápice. Terminália masculina: epândrio com um único
pseudoespiráculo. Terminália feminina: placa subgenital (esternito VIII) podendo
apresentar dígito genital, ou estrutura sensorial provavelmente homóloga ao dígito, ou
ainda nenhuma destas estruturas.
Comentários sobre Psychodini
Vaillant (1971, 1972a, 1990) e Ježek (1983a) se opõem às propostas de Quate
(1959a, 1996) e Duckhouse (1985), quanto à definição de Psychodini, e compartilham
da mesma definição, além de serem complementares na classificação genérica ao
retirarem Philosepedon, Threticus, Trichopsychoda, Quatiella, Feuerborniella e
Nielseniella de Psychodini e transferirem para Paramormiini (=Telmatoscopini sensu
Vaillant (1972a) e =Mormiini sensu Vaillant (1990)). No entanto, Vaillant (1971,
1972a, 1990) e Ježek (1983a) utilizaram labela plana com dentes e edeago assimétrico
como caracteres diagnósticos de Psychodini, porém estes caracteres são insuficientes
para separar a tribo, pois Threticus tem edeago assimétrico e há espécies com as duas
12
condições de labela (labela plana com dentes e labela não plana sem dentes). Além
disso, ao proporem Paramormiini (=Telmatoscopini sensu Vaillant (1972a) e =Mormiini
sensu Vaillant (1990)) não apontaram caracteres que permitissem definí-la, desta forma
os gêneros foram reunidos na tribo por semelhanças morfológicas.
Neste trabalho, segue-se a definição de Duckhouse (1985) para Psychodini, por
ser a única proposta baseada em prováveis apomorfias: antena com flagelômeros
nodiformes, exceto os três últimos que são reduzidos e sem ascóides; ascóide com
formato em Y ou derivados; R
5
terminando na ponta da asa; Sc curta e grossa; asa em
posição tectiforme; cerdas eretas na veia R
1
; epândrio do macho com um forâmen, além
de caracteres da larva. Os gêneros inclusos por Duckhouse (1985) em Psychodini são:
Psychoda, Feuerborniella, Neomaruina, Epacretron, Philosepedon, Trichopsychoda,
Threticus. Neste trabalho, são aceitos os gêneros propostos por Duckhouse (1985),
exceto Feuerborniella que é tratado como sinônimo de Philosepedon, além de
Nielseniella e Eurygarka. Estas inclusões são apoiadas pela diagnose de Psychodini
sensu Duckhouse (1985).
Chave de identificação para gêneros de Psychodini no mundo
1. Labela plana com dentes apicais, ascóide com formato em Y ou em tridente .......... 2
- Labela bulbosa sem dentes apicais, ascóide em forma de Y ou derivados; se labela
plana, com dentes apicais, ascóide com formato em S (Threticus fissiceps (Quate &
Quate, 1967) e Threticus nanus (Tonnoir, 1922)) ........................................................ 4
2. Cabeça mais larga do que comprida ................... Epacretron Quate, 1965 (Oriental)
- Cabeça tão larga quanto comprida .............................................................................. 3
3. Edeago simétrico; cerco com mais de duas tenáculas grossas e não estriadas ............
............................................................................ Neomaruina Vaillant, 1963 (Etiópica)
- Edeago assimétrico; cerco com uma tenácula apical estriada .......................................
........................................................................ Psychoda Latreille, 1796 (Cosmopolita)
4. Edeago assimétrico .................................................................................................... 5
- Edeago simétrico ......................................................................................................... 6
5. Ascóide em forma de S; membrana alar sem cerdas ...................................................
............................. Threticus Eaton, 1904 (Neártica, Paleártica, Etiópica e Australásia)
- Ascóide em forma de Y; membrana alar com cerdas ....................................................
.......................................................................... Nielseniella Vaillant, 1972 (Paleártica)
13
6. Cerco do macho com tenáculas com formato de guarda-chuva ..................................
............... Trichopsychoda Tonnoir, 1922 (Neártica, Paleártica, Etiópica e Australásia)
- Cerco do macho com tenáculas simples ...................................................................... 7
7. Ascóide do macho com fomato em Y ou em V, com os braços anteriores foliáceos;
cerco do macho com duas tenáculas .. Eurygarka Quate, 1959 (Neártica e Neotropical)
- Ascóide do macho com fomato em Y ou em V ou um braço anterior, com os braços
anteriores digitiformes; cerco do macho com uma a oito tenáculas ................................
...................................................................... Philosepedon Eaton, 1904 (Cosmopolita)
4.2. Philosepedon Eaton, 1904
Philosepedon Eaton
Philosepedon Eaton, 1904: 57 (espécie-tipo: Psychoda humeralis Meigen, 1818, por
monotipia); 1913: 429; Enderlein, 1935: 248 (chave de identificação); Quate,
1959a: 448; 1962a: 41; b: 181; 1965a: 818; b: 95 (catálogo); 1996: 47; Vaillant,
1961: 134; 1971: 24; 1972b: 107; 1974: 109; Quate e Quate, 1967: 138;
Duckhouse, 1973a: 10; b: 236 (catálogo); 1974: 142; Ježek, 1983a: 258; 1985: 70;
1997: 31 (check list); Duckhouse e Lewis, 1980: 97; 1989: 174 (catálogos); 2007:
174 (catálogo on line); Wagner, 1991: 63 (catálogo); 2004 (catálogo on line);
Wagner et al. 2002: 66 (catálogo); Ibáñez-Bernal e Cáceres, 2005: 157; Bravo et
al., 2006: 63.
Psychoda (Philosepedon); Tonnoir, 1922: 61; 1940: 32; Enderlein, 1937: 87 (chave de
identificação e redescrição); Jung, 1956: 190; Vaillant, 1960: 165; Szabó, 1965:
620.
Termitadelphos Holmgren, 1905: 530 (espécie-tipo: Termitadelphos silvestrii
Holmgren, 1905).
Lepidopsychoda Edwards, 1928: 71 (espécie tipo: Lepidopsychoda tineiformis Edwards,
1928).
Telmatoscopus (Minioceros) Quate, 1959b: 455. (espécie tipo: Telmatoscopus
squamalatus Quate, 1959b: 448 [= Lepidopsychoda tineiformis Edwards, 1928]).
Quatiella Botosaneanu e Vaillant, 1970: 61 (espécie tipo: Philosepedon leonhardti
Vaillant, 1968).
Feuerborniella Vaillant, 1974: 305 (espécie tipo: Psychoda obscura Tonnoir, 1940),
sin. nov.
14
Diagnose. Antena com um par de ascóides em cada flagelômero, com formato de Y
(braços digitiformes), exceto a fêmea de Philosepedon quadricuspis Quate e Quate,
1967 que possui ascóides com formato em V (braços digitiformes) e P. trimicra
(Edwards, 1927) que possui ascóides composto por um braço anterior digitiforme; três
últimos flagelômeros sem ascóides. Tórax com esclerito adicional proximal da
pteropleura quadrangular (fig. 1). Terminália masculina: edeago simétrico, um par de
cercos com uma a oito tenáculas simples, tenácula medindo a metade ou mais que o
comprimento do cerco. Terminália feminina: placa subgenital sem dígito genital e ápice
da placa subgenital unilobado ou bilobado.
Comentários quanto à definição de Philosepedon
Eaton (1904) propôs Philosepedon baseado nas cerdas da venação radial e na
terminália da fêmea, porém citou também na descrição do gênero o edeago simétrico e
cerco do macho com duas tenáculas. Atualmente existem três propostas quanto à
definição de Philosepedon (Quate 1959a, 1962a, 1996; Vaillant 1972b, 1974; Ježek
1985).
Quate (1959a, 1962a) propôs uma definição ampla para Philosepedon e incluiu
os seguintes caracteres: labela não plana, sem dentes apicais; antena com 12 a 14
flagelômeros, sendo os três últimos reduzidos (com várias combinações de fusão);
ascóides com formato em Y ou derivados; asa com veia R
5
terminando no ápice asa;
cerco do macho não muito maior que o epândrio, com uma a sete tenáculas; edeago
simétrico; fêmea com placa subgenital sem dígitos genitais; cerco da fêmea igual ou
inferior ao tamanho da placa subgenital.
Vaillant (1972b, 1974) discordou quanto à definição proposta por Quate (1959a,
1962a) por considerá-la muito ampla. Nestes trabalhos, Vaillant, propôs que as espécies
de Philosepedon deveriam possuir, dentre outras características, cerco do macho com
duas ou grupo de duas tenáculas. Contudo, Vaillant (1972b, 1974) não justificou
filogeneticamente nem taxonomicamente a sua postura em incluir no gênero apenas as
espécies com este número de tenáculas. Ao se adotar esta proposta algumas espécies de
Philosepedon são retiradas do gênero, porém não correspondem a nenhum outro gênero
relacionado (e.g. Quatiella, Feuerborniella), com isso, seria necessário propor novos
gêneros, sendo que muitos destes gêneros seriam monotípicos.
15
Ježek (1985) discordou tanto da proposta de Quate (1959a, 1962a) quanto da
proposta de Vaillant (1972b, 1974) e propôs uma definição ainda mais estrita. Apesar da
proposta de Ježek estar baseada na espécie-tipo Philosepedon humerale, dois problemas
podem ser detectados na sua aplicação: a) algumas espécies originalmente descritas para
Philosepedon não se encaixam nesta definição, e como Ježek não as transfere para
outros gêneros, estas espécies ficam incertae sedis; b) alguns espécimes dos museus
perderam os flagelômeros apicais ou o tórax encontra-se danificado, tornando difícil sua
identificação genérica, com base nos outros dois caracteres que restam (cerco do macho
com duas tenáculas e edeago simétrico), pois estes caracteres não são únicos de
Philosepedon podendo ser encontados também em Eurygarka, provocando o mesmo
problema descrito no ponto "a" acima.
Apesar das propostas de Vaillant (1972b, 1974) e Ježek (1985) restringirem a
definição do gênero elas não resolvem a problemática das espécies que não se
enquadravam na definição, por isso, Quate (1996) retomou a definição ampla para
Philosepedon, proposta que teve raízes no seu trabalho de 1959a, e afirmou que mesmo
que esta definição, provavelmente, transforme o gênero em grupo polifilético, esta
definição permitirá um melhor entendimento da diversidade das espécies neotropicais
de Philosepedon.
A falta de uma hipótese de monofilia, como foi notado por Quate (1996) e
Ibáñez-Bernal e Cáceres (2005), é um dos principais problemas para a aceitação de uma
das propostas de delimitação para o gênero. No presente trabalho é adotada uma
definição ampla, semelhante à de Quate (1996), porque esta definição foi a que melhor
demonstrou a diversidade de Philosepedon na região Neotropical, em especial na área
de estudo (Brasil).
Duckhouse (1973a) classificou Eurygarka como subgênero de Philosepedon, no
entanto, neste trabalho é aceita a proposta de Quate e Vockeroth (1981) e Curler e
Moulton (2008) que tratam Eurygarka como um gênero, cuja monofilia está baseada
nas seguintes apomorfias: (1) ascóide do macho com braços anteriores foliáceos, com
múltiplas veias longitudinais; (2) lobo póstero-mediano do gonocoxitos com cinco ou
mais sensilas em forma de setas; (3) epândrio com depressão suboval ântero-dorsal; (4)
placa subgenital com um lobo.
Neste trabalho são aceitas as propostas de Quate (1962a), Duckhouse (1974) e
Duckhouse e Lewis (1989), na qual Lepidopsychoda, Quatiella e Termitadelphos são
tratados com sinônimos de Philosepedon.
16
Apesar de Lepidopsychoda possuir membrana alar com cerdas, como
Nielseniella e Trichopsychoda este táxon tem caracteres que se sobrepõem aos de
Philosepedon, por exemplo, edeago simétrico, cerco do macho com número de
tenáculas variando de uma a seis, por isso é mantido como sinônimo de Philosepedon.
Quatiella é mantido como sinônimo, porque suas características diagnósticas
podem ser encontradas, separadamente, em outros gêneros, por exemplo, gonocoxitos
contíguos e cerco do macho com uma tenácula (e.g. Eurygarka helicis (Dyar, 1929),
Trichopsychoda africana Satchell, 1955, Philosepedon mayeri (Satchell, 1955)).
Termitadelphos é mantido como sinônimo de Philosepedon, pois sua descrição e
os desenhos não possibilitam um melhor estudo quanto ao seu status genérico. Além
disso, o tipo da única espécie de Tematodelphos, T. silvestrii Holmgren, está perdido.
Ježek (1985) questiona o status genérico de Feuerborniella, pois para ele a
espécie-tipo de Quatiella (Q. interdicta (Dyar, 1928) sensu Vaillant (1974) e seu
sinônimo, Philosepedon leonhardti Vaillant, 1968) pertence a Feuerborniella, o que
sugere Feuerborniella como sinônimo de Quatiella, de acordo com o principio de
prioridade. Contudo, Ježek (1985) não sinonimizou Feuerborniella em Quatiella. Os
trabalhos que fazem a descrição de Q. interdicta e seu sinônimo P. leonhardti
apresentam claras diferenças entre a espécie-tipo de Quatiella e Feuerborniella e mostra
que Q. interdicta tem todas as características diagnósticas de Quatiella e não de
Feuerborniella.
Entretanto, a espécie-tipo de Feuerborniella, F. obscura (Tonnoir, 1919), possui
características tanto de Quatiella (tenácula medindo a metade do cerco) quanto de
Feuerborniella (gonocoxitos separados), e a junção destas características fazem parte da
diagnose de Philosepedon. Desta forma, propomos transferência da espécie-tipo de
Feuerborniella para Philosepedon, logo a sinonímia deste gênero em Philosepedon. Ao
considerar Feuerborniella um sinômino, acabo por transferir, também, as demais
espécies de Feuerborniella: P. obscura comb. nov., P. spathipenis (Duckhouse, 1968)
comb. nov., P. plaumanni (Duckhouse, 1968) comb. nov., P. malayensis (Satchell,
1955) comb. nov. e P. veracruzana (Ibáñez-Bernal, 2004) comb. nov..
A descrição de Philosepedon é baseada principalmente nos machos. A descrição
das fêmeas é baseada na ausência de digito genital na placa sub-genital, sendo que este
só é encontrado em fêmeas de Psychoda e a placa sub-genital com ápice unilobado ou
bilobado, característica encontrada, também, em outros gêneros de Psychodini, por
exemplo, Threticus. Assim, se a fêmea estudada estiver com o ascóide perdido não é
17
possível chegar ao nível genérico. Além disso, as fêmeas que identificamos até o nível
genérico, não foi possível relacioná-las com o macho, devido a diferenças morfológicas,
nem a nenhuma espécie já conhecida, por isso, as fêmeas não são descritas neste
trabalho.
As espécies Philosepedon calabens Quate, 1965a e P. mutabilis Quate, 1965a
das Filipinas e P. soljani Krek, 1971 da Iugoslávia não se encaixam na diagnose de
Philosepedon, devido ao ascóide com formato em S, ou seja, braços sinuosos (anterior e
posterior) e edeago assimétrico, logo possuem características de Threticus. Portanto, as
três espécies são transferidas para Threticus: Threticus calabens (Quate, 1965a) comb.
nov., Threticus mutabilis (Quate, 1965a) comb. nov. e Threticus soljani (Krek, 1971)
comb. nov.. Além disso, Philosepedon aliciae Ibáñez-Bernal, 2004 do Peru não se
encaixa na diagnose de Philosepedon, pois o macho tem ascóide com formato em Y,
sendo os braços anteriores foliáceos, cerco com duas tenáculas e fêmea com braços
anteriores do ascóide digitiformes, logo, possui características de Eurygarka, por isso é
transferida para Eurygarka: Eurygarka aliciae (Ibáñez-Bernal, 2004) comb. nov..
Chave de identificação para machos das espécies de Philosepedon do Brasil
1. Membrana alar com cerdas (figs. 67, 74 e 81) .......................................................... 2
- Membrana alar sem cerdas .......................................................................................... 4
2. Clípeo com cerdas, cinco cerdas conspícuas em cada lado; cerco com duas
tenáculas apicais e com uma cerda preapical conspícua, medindo cerca de ¾ da
tenácula (fig. 77) ...........................................................................................P. sp. nov. j
- Clípeo com cerdas, três cerdas conspícuas em cada lado; cerco com mais de duas
tenáculas apicais, sem cerda preapical conspícua .......................................................... 3
3. Olhos separados por 1 a 1,5 do diâmetro de faceta; sutura interocular sem esporão
mediano; vértice com uma sutura mediana que se inicia no ápice do vértice e termina
próximo da sutura interocular; fronte com algumas cerdas passando por entre os olhos
e alcançando até a sutura interocular; veia CuA não alcançando margem da asa (fig.
67); último tarsômero sem projeção apical; edeago com ápice truncado (fig. 68) ..........
......................................................................................................................P. sp. nov. i
- Olhos contíguos; sutura interocular com esporão mediano; vértice sem uma sutura
mediana; fronte com cerdas na porção central; veia CuA alcançando a margem da asa
(fig. 81); último tarsômero com projeção apical; edeago com ápice bifurcado (fig. 82)
18
......................................................................................................................P. sp. nov. l
4. Cerco com mais de uma tenácula .............................................................................. 5
- Cerco com uma tenácula ............................................................................................. 7
5. Cerco com mais de duas tenáculas ............................................................................ 6
- Cerco com duas tenáculas ......................................................................................... 13
6. Cerco com seis tenáculas (figs. 164 e 165) .............................................. P. sp. nov. v
- Cerco com três tenáculas ........................................................................................... 22
7. Gonocoxitos separados; tenácula menor ou igual a metade do cerco........................ 8
- Gonocoxitos contíguos; tenácula maior ou igual a metade do cerco ........................ 10
8. Tenácula medindo a metade do cerco ...................................................... P. sp. nov. q
- Tenácula menor que a metade do cerco ...................................................................... 9
9. Olhos separados por 0,8 do diâmetro de faceta; sutura interocular com esporão
mediano; hipândrio com ápice arredondado; edeago espatulado ....................................
............................................................................................... P. spathipenis Duckhouse
- Olhos separados por 0,4 do diâmetro de faceta; sutura interocular sem esporão
mediano; hipândrio com ápice truncado; edeago com base larga e afilado apicalmente
com formato de concha ........................................................... P. plaumanni Duckhouse
10. Olhos separados por 0,2 do diâmetro de faceta; asa com forquilha mediana
incompleta (fig. 90) ....................................................................................P. sp. nov. m
- Olhos contíguos; asa com forquilha mediana completa ............................................ 11
11. Fronte com algumas cerdas se estendendo até a base da ponte ocular; apódema
gonocoxal não desenvolvido; edeago não ultrapassando o gonóstilo (fig. 115) .............
..................................................................................................................... P. sp. nov. p
- Fronte com algumas cerdas se estendendo até a metade da ponte ocular; apódema
gonocoxal desenvolvido, alcançando ao nível do gonocoxito, com cerdas no ápice
(figs. 99 e 107); edeago longo, ultrapassando o gonóstilo (figs. 99 e 107) ................. 12
12. Labela com quatro dentículos; parâmero com ápice truncado, menor que o edeago
(fig. 99); apódema edeagal medindo a metade do comprimento do edeago (fig. 99) .....
..................................................................................................................... P. sp. nov. n
- Labela com dois dentículos; parâmeros ausentes (fig. 107); apódema edeagal
medindo menos da metade do comprimento do edeago (fig. 107) .............. P. sp. nov. o
13. Gonocoxitos contíguos .......................................................................................... 14
- Gonocoxitos separados .............................................................................................. 16
14. Asa com forquilha mediana incompleta (fig. 24) .................................. P. sp. nov. c
19
- Asa com forquilha mediana completa ....................................................................... 15
15. Clípeo com cerdas, três cerdas conspícuas em cada lado; edeago com ápice
arredondado (fig. 53); um parâmero com ápice arredondado (fig. 53); apódema
edeagal medindo cerca de 1/3 do comprimento do edeago (fig. 53) ........... P. sp. nov. g
- Clípeo com cerdas, quatro cerdas conspícuas em cada lado; edeago terminando em
ponta (fig. 60); um par de parâmeros terminando em ponta (fig. 60); apódema edeagal
medindo a metade do comprimento do edeago (fig. 60) ............................. P. sp. nov. h
16. Primeiro palpômero com sensilas .......................................................................... 17
- Primeiro palpômero sem sensilas .............................................................................. 19
17. Labela com dentículos; veias sem expansões (fig. 7); hipândrio com placa pós-
hipandrial (fig. 8) ......................................................................................... P. sp. nov. a
- Labela sem dentículos; veias R
2
e M
3
com expansões (fig. 16); hipândrio sem placa
pós-hipandrial (fig. 17) ................................................................................................ 18
18. Labela com lamelas; edeago bifurcado (fig. 17); um par de parâmeros em forma
de S (fig. 17) ................................................................................................ P. sp. nov. b
- Labela sem estruturas sensoriais especializadas; edeago simples, em forma de lança;
um par de parâmeros triangular curvados na porção apical.............................................
......................................................................... P. uncinatum Bravo, Chagas e Cordeiro
19. Veias R
2
e M
3
sem expansões (fig. 45) .................................................. P. sp. nov. f
- Veias R
2
e M
3
com expansões ................................................................................... 20
20. Cerco com uma tenácula apical e outra sub-apical (fig. 41); um par de parâmeros
menores que o edeago (fig. 39); apódema edeagal medindo a metade do comprimento
do edeago (fig. 39) ....................................................................................... P. sp. nov. e
- Cerco com duas tenáculas apicais (fig. 35); um par de parâmeros com o mesmo
tamanho do edeago (fig. 33); apódema edeagal com o comprimento maior ou igual ao
do edeago ..................................................................................................................... 21
21. Sutura interocular sem esporão mediano; labela sem estruturas sensoriais
especializadas; apódema edeagal com o mesmo comprimento do edeago ......................
....................................................................... P. oblongolum Bravo, Chagas e Cordeiro
- Sutura interocular com esporão mediano; labela com quatro dentículos; apódema
edeagal medindo 1,3x o comprimento do edeago........................................ P. sp. nov. d
22. Gonocoxitos separados (fig. 131); edeago com uma projeção na base (fig. 131);
parâmeros ausentes (fig. 131) ...................................................................... P. sp. nov. r
20
- Gonocoxitos contíguos (figs. 139, 146 e 154); edeago sem projeção na base; um par
de parâmeros ................................................................................................................ 23
23. Vértice com uma sutura mediana que se inicia no ápice do vértice e termina
próximo da sutura interocular; fronte com algumas cerdas passando por entre os olhos
alcançando até a sutura interocular; asa com forquilha mediana completa (fig. 153);
último tarsômero sem projeção apical ......................................................... P. sp. nov. u
- Vértice sem sutura mediana; fronte com algumas cerdas se estendendo até a metade
da ponte ocular; asa com forquilha mediana incompleta; último tarsômero com
projeção apical ............................................................................................................. 24
24. Olhos separados por 0,5 a 0,7 do diâmetro de faceta; sutura interocular com
esporão mediano; clípeo com cerdas, três cerdas conspícuas em cada lado; gonóstilo
com ápice em ponta (fig. 139); edeago lanceolado (fig. 139); apódema edeagal
medindo a metade do comprimento do edeago; tenácula medindo cerca da metade do
comprimento do cerco ................................................................................. P. sp. nov. s
- Olhos separados por 0,3 do diâmetro de faceta; sutura interocular sem esporão
mediano; clípeo com cerdas, quatro cerdas conspícuas em cada lado; gonóstilo com
ápice bifurcado (fig. 146); edeago com ápice truncado (fig. 146); apódema edeagal
medindo 1,2x o comprimento do edeago; tenácula medindo mais da metade do
comprimento do cerco ..................................................................................P. sp. nov. t
Philosepedon spathipenis (Duckhouse)
Psychoda spathipenis Duckhouse, 1968: 37, figs 44-48.
Philosepedon (Quatiella) spathipenis Duckhouse, 1973a: 11.
Philosepedon spathipenis Duckhouse, 1974: 144; Bravo et al., 2006: 64.
Feuerborniella spathipenis Vaillant, 1974: 119; Ibáñez-Bernal, 2004: 6; Ibáñez-Bernal
e Cáceres, 2005: 158.
Psycha spathipenis Ježek, 1984: 137; 1985: 77.
Diagnose. Labela com dentículos; antena com 14 flagelômeros, sendo os flagelômeros
12 e 13 fundidos e o 14 separado; ascóide em forma de Y; membrana alar nua;
forquilhas radial e mediana completas; edeago simétrico e espatulado.
Registro geográfico. Brasil: Santa Catarina.
21
Material-tipo examinado. Parátipo , BRASIL, [Santa Catarina, Seara], Nova
Teutônia, 1.vii.1938, [coletor Fritz Plaumann] (NHM).
Philosepedon plaumanni (Duckhouse)
Psychoda plaumanni Duckhouse, 1968: 39, figs 49-53.
Philosepedon (Quatiella) plaumanni Duckhouse, 1973a: 11.
Philosepedon plaumanni Duckhouse, 1974: 144; Bravo et al., 2006: 64.
Feuerborniella plaumanni Vaillant, 1974: 119; Ibáñez-Bernal, 2004: 6; Ibáñez-Bernal e
Cáceres, 2005: 158.
Psychomora plaumanni Ježek, 1984: 138; 1985: 77.
Diagnose. Labela com dentículos; antena com 14 flagelômeros, sendo os flagelômeros
12 e 13 fundidos e o 14 separado; ascóide em forma de Y; membrana alar nua;
forquilhas radial e mediana completas; edeago simétrico, terminando em ponta, com
margem lateral curvada.
Registro geográfico. Brasil: Santa Catarina.
Material-tipo examinado. Holótipo , BRASIL, [Santa Catarina, Seara], Nova
Teutônia, 24.viii.l937, [coletor Fritz Plaumann] (Etiqueta vermelha, retangular, escrita a
mão) (NHM).
Parátipos: 1 , mesmos dados do holótipo, exceto 23.viii. 1937 (NHM); parátipo ,
mesmos dados do holótipo, exceto 14.vi. 1938 (NHM).
Condição do holótipo. Montado em cinco microlâminas permanentes, sendo as
microlâminas alfinetadas junto à etiqueta. Primeira microlâmina com o corpo: tórax
danificado, perna anterior direita perdida, perna anterior esquerda e posterior direita
com tarsômeros perdidos. Segunda microlâmina com asa direita. Terceira microlâmina
com asa esquerda e sem lamínula. Quarta microlâmina com a cabeça: cabeça
machucada na ponte ocular, antena direita com os flagelômeros perdidos, antena
esquerda incompleta. Quinta microlâmina com a terminália: terminália dividida em
vista dorsal e ventral, cerco direito danificado, cerco esquerdo separado do epândrio,
porém presente na microlâmina.
22
Philosepedon oblongolum Bravo, Chagas e Cordeiro
Philosepedon oblongolum Bravo, Chagas e Cordeiro, 2006: 64, figs. 1-9
Diagnose. Labela não plana sem dentículos; antena com 13 flagelômeros, sendo os três
últimos reduzidos, flagelômeros 11 e 12 fusionados e o 13 separado; hipândrio
triangular; cerco do macho com duas tenáculas apicais.
Registro geográfico. Brasil: Bahia.
Material-tipo examinado. Holótipo , BRASIL, Bahia, Porto Seguro (16º23’S
39º10’W), 05.12.2002, F. Bravo col. (Etiqueta branca, retangular, impressa)
(MZUEFS).
Parátipo: 1 , BRASIL, Bahia, Jussarí (Serra do Teimoso, 15º09’S 39º31’W),
27.iv.2001, F. Bravo col. (MZUEFS).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Cabeça rasgada na lateral
esquerda, antena direita somente com escapo e pedicelo, antena esquerda incompleta,
palpo direito com o primeiro palpômero, tarso e metade inferior da tíbia da perna média
esquerda perdidos, pernas anterior esquerda, média direita e posterior esquerda
perdidas, cercos separados do restante da terminália.
Philosepedon uncinatum Bravo, Chagas e Cordeiro
Philosepedon uncinatum Bravo, Chagas e Cordeiro, 2006: 65, figs. 10-19
Diagnose. Primeiro palpômero com sensilas; antena com 13 flagelômeros, sendo os
três últimos reduzidos, flagelômeros 11 e 12 fusionados e o 13 separado; cerco do
macho com duas, uma apical e outra sub-apical; parâmeros triangulares e curvados.
Registro geográfico. Brasil: Bahia.
Material-tipo examinado. Holótipo , BRASIL, Bahia, Santa Terezinha (Serra da
Jibóia, 12º50’S 39º28’W), 27.vii.2000, F. Bravo col. (Etiqueta branca, retangular,
impressa) (MZUEFS)
23
Parátipos: 1 , mesmos dados do holótipo (MZUEFS); 2 , BRASIL, Bahia,
Cachoeira (Fzda [Fazenda] Villa Rial, 15º09’S 39º32’S), 20.v.2004, F. Bravo col.
(MZUEFS); 1 , mesmos dados do parátipo acima, exceto 20.vii.2004 (MZUEFS); 4
, Ituberá (13º42’S 39º11’W), 01.vii.2003, F. Bravo col. (MZUEFS);
Material adicional. 2 , BRASIL, Bahia, Ituberá, 12.vi..2002, Lg. [Legit] F. Bravo
(MZUEFS).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Asa esquerda rasgada na base.
Philosepedon sp. nov. a
(figs. 2-11)
Descrição. Holótipo : Cabeça (fig. 2) subesférica em vista frontal; olhos separados
por 1 diâmetro de faceta; ponte ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura
interocular sem esporão mediano (“median spur”); vértice cerdoso com uma linha de
cerdas conspícuas próxima aos olhos; fronte com algumas cerdas passando por entre os
olhos e alcançando a metade da largura da ponte ocular; clípeo cerdoso com três cerdas
conspícuas em cada lado. Antena (figs. 3, 4) completa, com 13 flagelômeros; escapo
cilíndrico, com o mesmo comprimento do pedicelo (fig. 3); pedicelo subesférico (fig.
3); flagelômeros nodiformes (figs. 3, 4), os três últimos reduzidos, flagelômeros 11 e 12
fusionados (fig. 4); ascóides medindo 1,2x o comprimento do flagelômero (figs. 3, 4).
Labela com três dentículos (fig. 5). Palpo com sensilas no primeiro palpômero (fig. 6),
fórmula do palpo: 1:1,5:1,6:1,7. Tórax com esclerito adicional proximal da pteropleura
quadrangular. Asa (fig. 7): membrana alar sem cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no ápice e forquilhas radial completa e mediana incompleta. Último
tarsômero de todas as pernas com projeção apical. Terminália (figs. 8-11): gonocoxitos,
gonóstilos e cercos com cerdas (figs. 8, 9, 11). Hipândrio 2x mais largo que comprido,
com placa pós-hipândrial (fig. 8). Gonocoxitos separados (fig. 8). Gonóstilos
terminando em ponta (fig. 9). Edeago simétrico (fig. 8); um par de parâmeros, menores
que o edeago (fig. 8); apódema edeagal medindo metade do comprimento do edeago
(fig. 8). Epândrio com cerdas e um forâmen (fig. 10). Cerco (fig. 11) maior que o
comprimento do epândrio, com duas tenáculas apicais medindo mais que a metade do
comprimento do cerco. Epiprocto sub-oval com cerdas (fig. 10); hipoprocto com
formato cônico (fig. 10), região posterior com cerdas.
24
Fêmea: desconhecida.
Variações: parátipos com distância dos olhos variando de 1 a 2 diâmetros de faceta e
fronte com algumas cerdas passando por entre os olhos alcançando da metade da largura
da ponte ocular até a sutura interocular.
Registro geográfico. Brasil: Pará, Bahia e Paraná.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, PR [Paraná], Jundiaí do Sul, Faz.[enda] Monte
Verde, 04.v.[19]87, [armadilha] malaise, Profaupar 2.3 [Projeto “Levantamento da
Fauna Entomológica no Estado do Paraná”, coordenador Renato Marinoni] (Etiqueta
branca, retangular, impressa) (DZUP).
Parátipos: 1 , BRASIL, PA [Pará], Serra do Cachorro, [ponto] 14[, armadilha]
CDC/m[ata], 21.iv.1998, T[oby] V[icent] B[arrett]/R[aul] Q[ueiróz]/F[rancisco] L[ima]
S[ilva] cols [coletores] (INPA); 1 , BA [Bahia], Ituberá, Pacangê, 09.iv.2007-
10.vi.2007 (16:45h – 6:30h), Armadilha luminosa, Lg. [Legit] E. Alvim e Equipe
Ecopol. (MZUEFS); 1 , Santa Terezinha, Serra da Jibóia, 24.viii.2000, Lg. [Legit] F.
Bravo (MZUEFS); 2 , Sauípe, 14.xi.2004, Lg. [Legit] F. Bravo (MZUEFS); 1 ,
Ituberá, 1.vii.2003, Lg. [Legit] Freddy Bravo (MZUEFS).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Antena direita com
flagelômeros perdidos, palpo direito somente com o primeiro palpômero, tórax achatado
lateralmente, pernas anterior direita e posterior direita perdidas, cerco esquerdo partido.
Philosepedon sp. nov. b
(figs. 12-19)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos separados por 0,8 do
diâmetro de faceta; ponte ocular com larguara equivalente a quatro facetas, sutura
interocular com esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas
próxima aos olhos; fronte com algumas cerdas passando por entre os olhos e alcançando
basal da ponte ocular; clípeo cerdoso com quatro cerdas conspícuas em cada lado.
Antena (fig. 12, 13) incompleta; escapo cilíndrico, medindo 1,3x o comprimento do
pedicelo (fig. 12); pedicelo subesférico (fig. 12); flagelômeros nodiformes (figs. 12, 13);
ascóides medindo 1,2x o comprimento do flagelômero (fig. 13). Labela com lamelas
25
(fig. 14). Palpo com sensilas no primeiro palpômero (fig. 15), fórmula do palpo:
1:1,5:1,8:2. Asa (fig. 16): membrana alar sem cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no ápice, veias R
2
e M
3
com expansão sub-apical e forquilhas radial
completa e mediana incompleta. Último tarsômero das pernas anteriores com projeção
apical. Terminália (figs. 17-19): gonocoxitos, gonóstilos e cercos com cerdas (figs. 17,
19). Hipândrio 4x mais largo que comprido (fig. 17). Gonocoxitos separados (fig. 17).
Gonóstilo terminado em ponta, sendo a base 0,3x o comprimento (fig. 17). Edeago
simétrico e bifurcado (fig. 17); um par de parâmeros em forma de S (fig. 17); apódema
edeagal medindo o dobro do comprimento do edeago (fig. 17). Epândrio com cerdas e
um forâmen (fig. 18). Cerco (fig. 19) maior que o comprimento do epândrio, com duas
tenáculas apicais medindo menos que a metade do comprimento do cerco. Epiprocto e
hipoprocto e subesféricos (fig. 18).
Fêmea: desconhecida.
Registro geográfico. Brasil: Pará.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, PA [Pará], Serra do Cachorro, [ponto] 14[,
armadilha] CDC/m[ata], 21.v.1998, T[oby] V[icent] B[arrett]/R[aul]
Q[ueiróz]/F[rancisco] L[ima] S[ilva] cols [coletores] (Etiqueta branca, retangular,
impressa) (INPA).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Antenas incompletas, palpo
com o primeiro palpômero ligado à cabeça e os demais palpômeros soltos no bálsamo,
tórax danificado, asa esquerda danificada, pernas médias e posteriores perdidas, cerco
direito separado do restante da terminália.
Philosepedon sp. nov. c
(figs. 20-27)
Descrição. Holótipo : Ponte ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura
interocular com esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas
próxima aos olhos; clípeo cerdoso com quatro cerdas conspícuas em cada lado. Antena
(figs. 20, 21) completa, com 14 flagelômeros; escapo cilíndrico, medindo 1,2x o
comprimento do pedicelo (fig. 20); pedicelo subesférico (fig. 20); flagelômeros
26
nodiformes (figs. 20, 21), os três últimos reduzidos e separados (fig. 21); ascóides
medindo de 1 a 1,3x o comprimento do flagelômero, tamanho medido do flagelômero
basal para o apical (fig. 20). Palpo sem sensilas (fig. 23), fórmula do palpo:
1:1,7:1,9:2,1. Asa (fig. 24): membrana alar sem cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no ápice e forquilhas radial completa e mediana incompleta. Último
tarsômero das pernas mediana e posterior sem projeção apical. Terminália (figs. 25-27):
gonocoxitos, gonóstilos e cercos com cerdas (fig. 25, 27). Gonocoxitos contíguos (fig.
25). Gonóstilos com o comprimento 4x maior que a base (fig. 25). Edeago simétrico
com ápice bifurcado (fig. 25); um par de parâmeros, quase tão longos quanto o edeago,
alcançando até a metade da bifurcação do edeago (fig. 25); apódema edeagal medindo
menos da metade do comprimento do edeago (fig. 25). Epândrio com cerdas e um
forâmen (fig. 26). Cerco (fig. 27) com o mesmo comprimento do epândrio, com duas
tenáculas apicais medindo a metade do comprimento do cerco. Epiprocto sub-oval e
cerdoso (fig. 26); hipoprocto com formato de cogumelo (fig. 26), cerdas na região
posterior, região ântero-mediana estriada.
Fêmea: desconhecida.
Observação: Devido à posição da cabeça do holótipo na lâmina, não foi possível
observar algumas características. A seguir as características que foram observadas nos
parátipos: cabeça subesférica em vista frontal; olhos separados por 0,2 a 1 diâmetro de
faceta; fronte com algumas cerdas alcançando a base da ponte ocular ou passando por
entre os olhos e alcançando até a metade da ponte ocular; labela com quatro dentículos
(fig. 22). Tórax com esclerito adicional proximal da pteropleura quadrangular. Último
tarsômero de todas as pernas sem projeção apical.
Registro geográfico. Brasil: Paraná.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, PR [Paraná], São José dos Pinhais, Serra do
Mar, BR 277, Km 54, 4.v.1987, Profaupar 2.2 [Projeto “Levantamento da Fauna
Entomológica no Estado do Paraná”, coordenador Renato Marinoni] (Etiqueta branca,
retangular, impressa) (DZUP).
Parátipos: 15 , mesmos dados do holótipo (DZUP); 7 , mesmos dados do holótipo,
exceto 08.xii.1986, [armadilha] Malaise, Profaupar 1.2 (DZUP); 10 , mesmos dados
27
do holótipo, exceto 01.xii.1986, Profaupar 1.3 (DZUP); 5 , mesmos dados do
holótipo, exceto 15.xii.1986 (DZUP).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Cabeça mal posicionada,
antena direita incompleta, tórax danificado, asa direita partida ao meio, asa esquerda
com base dobrada, pernas anteriores, média direita e posterior esquerda perdidas.
Philosepedon sp. nov. d
(figs. 28-35)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos separados por 1
diâmetro de faceta; ponte ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura
interocular com esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas
próxima aos olhos; fronte com algumas cerdas alcançando a base da ponte ocular;
clípeo com cerdas, três cerdas conspícuas em cada lado. Antena (figs. 28, 29) completa,
com 13 flagelômeros; escapo cilíndrico, medindo 1,2x o comprimento do pedicelo (fig.
28); pedicelo subesférico (fig. 28); flagelômeros nodiformes (figs. 28, 29), os três
últimos reduzidos, flagelômeros 11 e 12 fusionados (fig. 29); ascóides medindo 1,3x o
comprimento do flagelômero (fig. 28). Labela com quatro dentículos (fig. 30). Palpo
incompleto (fig. 31), estando presente apenas os dois primeiros palpômeros, sensilas
ausentes nos dois primeiros palpômeros. Tórax com esclerito adicional proximal da
pteropleura quadrangular. Asa (fig. 32): membrana alar sem cerdas, veia Sc curta e
grossa, veia R
5
terminando no ápice, veias R
2
e M
3
com expansão sub-apical e
forquilhas radial completa e mediana incompleta. Último tarsômero de todas as pernas
com projeção apical. Terminália: gonocoxitos, gonóstilos e cercos com cerdas (figs. 33,
35). Hipândrio sub-retangular, 3x mais largo que comprido (fig. 33). Gonocoxitos
separados (fig. 33). Gonóstilos com formato de cone, base medindo 0,3x do
comprimento (fig. 33). Edeago simétrico (fig. 33); um par de parâmeros do mesmo
comprimento do edeago (fig. 33); apódema edeagal medindo 1,3x o comprimento do
edeago (fig. 33). Epândrio com cerdas e um forâmen (fig. 34). Cerco (fig. 35) maior que
o comprimento do epândrio, com duas tenáculas apicais medindo mais que a metade do
comprimento do cerco. Epiprocto com cerdas na região apical (fig. 34); hipoprocto
subtriangular (fig. 34), com cerdas na região apical.
Fêmea: desconhecida.
28
Registro geográfico. Brasil: Bahia.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, BA [Bahia], Ituberá, Res.[erva] Michel[in],
Corte Alto, 09.vi.[20]07-10.vi.[20]07 (16:45h – 6:10h), Armadilha luminosa, Lg.
[Legit] Alvim, E e Equipe Ecopol (Etiqueta branca, retangular, impressa) (MZUEFS).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Antena esquerda incompleta,
palpo direito com os dois primeiros palpômeros, palpo esquerdo com o primeiro
palpômero, asa esquerda com base dobrada, pernas anterior esquerda e média direita
perdidas, cercos separados do restante de terminália e tenáculas separadas do cerco.
Philosepedon sp. nov. e
(figs. 36-41)
Descrição. Holótipo : Ponte ocular com largura euivalente a quatro facetas; clípeo
com cerdas, três cerdas conspícuas em cada lado. Antena (fig. 36) incompleta; escapo
cilíndrico, medindo 1,2x o comprimento do pedicelo; pedicelo subesférico;
flagelômeros nodiformes; ascóides com o mesmo comprimento do flagelômero. Labela
bulbosa. Palpo sem sensilas (fig. 37), fórmula do palpo: 1:1,6:1,9:2,4. Asa (fig. 38):
membrana alar sem cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no ápice, veias R
2
e M
3
com expansão sub-apical e forquilhas radial completa e mediana incompleta.
Último tarsômero das pernas posteriores sem projeção apical. Terminália (figs. 39-41):
gonocoxitos, gonóstilos e cercos com cerdas (figs. 39, 41). Hipândrio fino (fig. 39).
Gonocoxitos separados (fig. 39). Gonóstilos simples (fig. 39). Edeago simétrico com
formato de lança (fig. 39); um par de parâmeros menores que o edeago (fig. 39);
apódema edeagal medindo menos da metade do comprimento do edeago (fig. 39).
Epândrio com cerdas e um forâmen (fig. 40). Cerco (fig. 41) medindo o mesmo
comprimento do epândrio, com duas tenáculas, uma apical e outra sub-apical; tenácula
medindo mais da metade do comprimento do cerco. Epiprocto com cerdas na margem
apical (fig. 40); hipoprocto cônico (fig. 40) com cerdas na região médio-apical.
Fêmea: desconhecida.
Registro geográfico. Brasil: Bahia.
29
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, BA (Bahia), Ituberá, 13.vi.2002, Lg. [Legit] F.
Bravo (Etiqueta branca, retangular, manuscrita) (MZUEFS).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Cabeça amassada, antenas
incompletas, palpo esquerdo perdido, labela montada em uma posição ruim, tórax
danificado, asa esquerda rasgada, pernas perdidas, exceto a perna posterior esquerda.
Philosepedon sp. nov. f
(figs. 42-48)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos separados por 3
diâmetros de faceta; ponte ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura
interocular com esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas
próxima aos olhos; fronte com algumas cerdas passando por entre os olhos e alcançando
basal da ponte ocular; clípeo com cerdas, três cerdas conspícuas em cada lado.
Antena (fig. 42) incompleta; escapo cilíndrico, medindo 1,2x o comprimento do
pedicelo; pedicelo subesférico; flagelômeros nodiformes; ascóides medindo de 0,8 a 1x
o comprimento do flagelômero. Labela com três dentículos (fig. 43). Palpo sem sensilas
(fig. 44), fórmula do palpo: 1:1,5:1,5:1,8. Asa (fig. 45): membrana alar sem cerdas, veia
Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no ápice e forquilhas radial completa e mediana
incompleta. Último tarsômero de todas as pernas com projeção apical. Terminália (figs.
46-48): gonocoxitos, gonóstilos e cercos com cerdas (figs. 46, 48). Hipândrio 3x mais
largo que comprido (fig. 46). Gonocoxitos separados (fig. 46). Gonóstilos simples (fig.
46). Edeago simétrico (fig. 46); um par de parâmeros menores que o edeago, com ápice
curvado para fora (fig. 46); apódema edeagal medindo 0,7x o comprimento do edeago
(fig. 46). Epândrio com cerdas e um forâmen (fig. 47). Cerco (fig. 48) menor que o
comprimento do epândrio, com duas tenáculas apicais medindo 0,8x o comprimento do
cerco. Epiprocto com cerdas (fig. 47); hipoprocto com cerdas no ápice.
Fêmea: desconhecida.
Registro geográfico. Brasil: Paraná.
30
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, PR [Paraná], Jundiaí do Sul, Faz.[enda] Monte
Verde, 04.v.[19]87, [armadilha] malaise, Profaupar 2.3 [Projeto “Levantamento da
Fauna Entomológica no Estado do Paraná”, coordenador Renato Marinoni] (Etiqueta
branca, retangular, impressa) (DZUP).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Antenas incompletas, tórax
danificado, asa esquerda dobrada, tórax com pernas média esquerda e posteriores,
demais pernas separadas do corpo.
Philosepedon sp. nov. g
(figs. 49-55)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos separados por 1
diâmetro de faceta; ponte ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura
interocular com esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas
próxima aos olhos; fronte com algumas cerdas passando por entre os olhos e alcançando
a metade da ponte ocular; clípeo com cerdas, três cerdas conspícuas em cada lado.
Antena (fig. 49) incompleta; escapo cilíndrico, medindo 1,2x o comprimento do
pedicelo; pedicelo subesférico; flagelômeros nodiformes; ascóides perdidos. Labela
com três dentículos (fig. 50). Palpo incompleto, estando presente apenas o primeiro
palpômero, sendo que não há sensilas neste palpômero (fig. 51). Asa (fig. 52):
membrana alar sem cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no ápice e
forquilhas radial e mediana completas. Terminália (figs. 53-55): gonocoxitos, gonóstilos
e cercos com cerdas (fig. 53, 55). Gonocoxitos contíguos (fig. 53). Gonóstilos simples
(fig. 53). Edeago simétrico (fig. 53); um parâmero, menor que o edeago (fig. 53);
apódema edeagal com formato de raquete, medindo menos da metade do comprimento
do edeago (fig. 53). Epândrio com cerdas e um forâmen (fig. 54). Cerco (fig. 55) com,
aproximadamente, mesmo comprimento do epândrio, duas tenáculas apicais medindo
mais que a metade do comprimento do cerco. Epiprocto sub-oval com cerdas (fig. 54);
hipoprocto com cerdas.
Fêmea: desconhecida.
Registro geográfico. Brasil: Amazonas.
31
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, AM [Amazonas], Manacapuru, Cajatuba,
[ponto] 4[, armadilha] cdc. Copa, 21.iv.1998, Lote: 01 14, [coletor] R[aul]
Q[ueiróz]/R[aimundo] N[onato]/PE (Etiqueta branca, retangular, impressa) (INPA).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Antenas incompletas, palpos
somente com o primeiro palpômero, tórax danificado, pernas perdidas.
Philosepedon sp. nov. h
(Figs. 56-62)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos separados por 1
diâmetro de faceta; ponte ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura
interocular com esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas
próxima aos olhos; fronte com algumas cerdas passando por entre os olhos e alcançando
basal da ponte ocular; clípeo com cerdas, quatro cerdas conspícuas em cada lado.
Antena (fig. 56) incompleta; escapo cilíndrico, medindo 1,2x o comprimento do
pedicelo; pedicelo subesférico; flagelômeros nodiformes; ascóides medindo 1,2x o
comprimento do flagelômero. Labela com três ou quatro dentículos (fig. 57). Palpo sem
sensilas (fig. 58), fórmula do palpo: 1:1,6:1,9:2,2. Asa (fig. 59): membrana alar sem
cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no ápice e forquilhas radial e mediana
completas. Último tarsômero de todas as pernas sem projeção apical. Terminália (figs.
60-62): gonocoxitos, gonóstilos e cercos com cerdas (figs. 60, 62). Gonocoxitos
contíguos (fig. 60). Gonóstilos terminando em ponta (fig. 60). Edeago simétrico (fig.
60); um par de parâmeros, menores que o edeago (fig. 60); apódema edeagal medindo a
metade do comprimento do edeago (fig. 60). Epândrio com cerdas e um forâmen (fig.
61). Cerco (fig. 62) com o comprimento semelhante ao do epândrio, com duas tenáculas
apicais. Epiprocto com cerdas na região apical (fig. 61); hipoprocto longo com cerdas
apicais.
Fêmea: desconhecida.
Obsevação: Não foi possível observar o tórax do holótipo, a seguir a característica
observada no parátipo: tórax com esclerito adicional proximal da pteropleura
quadrangular.
32
Registro geográfico. Brasil: Paraná.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, PR [Paraná], São José dos Pinhais, Serra do
Mar, BR 277, Km 54, 4.v.1987, Profaupar 2.2 [Projeto “Levantamento da Fauna
Entomológica no Estado do Paraná”, coordenador Renato Marinoni] (Etiqueta branca,
retangular, impressa) (DZUP).
Parátipo: 1 , mesmos dados do holótipo (DZUP).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Antenas incompletas, palpo
esquerdo com o quarto palpômero perdido, tórax montado em vista dorsal, tórax com as
pernas anteriores e média direita, demais pernas separadas do corpo.
Philosepedon sp. nov. i
(figs. 63-70)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos separados por 1
diâmetro de faceta; ponte ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura
interocular sem esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas
próxima aos olhos e uma sutura mediana que inicia no ápice do vértice e termina
próximo da sutura interocular; fronte com algumas cerdas passando por entre os olhos e
alcançando a sutura interocular; clípeo com cerdas, três cerdas conspícuas em cada lado.
Antena (figs. 63, 64) completa, com 13 flagelômeros; escapo cilíndrico, medindo 1,2x o
comprimento do pedicelo (fig. 63); pedicelo subesférico (fig. 63); flagelômeros
nodiformes (figs. 63, 64), os três últimos reduzidos e separados, um espinho na região
internodal dos flagelômeros 11 e 12 e no ápice do flagelômero 13 (fig. 64); ascóides
medindo 1,2x o comprimento do flagelômero (fig. 63). Labela com três dentículos no
lado direito e quatro no lado esquerdo (fig. 65). Palpo sem sensilas (fig. 66), fórmula do
palpo: 1:1,8:2,3:2,3. Tórax com esclerito adicional proximal da pteropleura
quadrangular. Asa (fig. 67): membrana alar com cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no ápice, veia CuA não alcançando a tocar a margem da asa e forquilhas
radial e mediana completas. Último tarsômero das pernas medianas e posteriores sem
projeção apical. Terminália (figs. 68-70): gonocoxitos, gonóstilos e cercos com cerdas
(figs. 68, 70). Gonocoxitos contíguos, com um agrupamento de cerda na região baso-
lateral (fig. 68). Gonóstilos com uma fileira de cerdas na margem interna (fig. 68).
33
Edeago simétrico com ápice truncado (fig. 68); um par de parâmeros menores que o
edeago (fig. 68); apódema edeagal quase do mesmo comprimento do edeago (fig. 68).
Epândrio com cerdas e um forâmen (fig. 69). Cerco (fig. 70) maior que o epândrio, com
três tenáculas apicais medindo menos que a metade do comprimento do cerco.
Epiprocto com cerdas (fig. 69); hipoprocto com região apical dividida em três partes
(fig. 69), com cerdas nas partes laterais do ápice e na parte mediana.
Fêmea: desconhecida.
Variações: parátipos com distância dos olhos variando de 1 a 1,5 do diâmetro de faceta.
Seis parátipos com labela com três dentículos.
Observação: A depender do grau de clarificação do exemplar a base da forquilha
mediana pode ficar muito hialina, dificultando sua visualização. Último tarsômero de
todas as pernas sem projeção apical. A parte mediana do hipoprocto pode ter o ápice
dobrado dando a impressão de ser truncado em vista dorsal.
Registro geográfico. Brasil: Amazonas, Pará, Mato Grosso, Bahia, Espírito Santo e
Paraná.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, Bahia, Sauípe, 14.xi.2004, Lg. [Legit] F. Bravo
(Etiqueta branca, retangular, manuscrita) (MZUEFS).
Parátipos: 2 , BRASIL, AM [Amazonas], Manacapuru, Cajatuba, [ponto] 4[,
armadilha] cdc. Copa [da árvore], 21.iv.1998, Lote: 01 14, [coletor] R[aul]
Q[ueiróz]/R[aimundo] N[onato]/PE (1 INPA, 1 MZUEFS); 1 , PA [Pará], Serra
do Cachorro, [ponto] 14[, armadilha] cdc/m[ata], 21.v.1998, T[oby] V[icent]
B[arrett]/R[aul] Q[ueiróz]/F[rancisco] L[ima] S[ilva] cols [coletores] (INPA); 2 , MT
[Mato Grosso], Barão do Melgaço, baia de Bracoururé, [ponto] 20[, armadilha]
cdc/m[ata], 7.iv.1998, col. RF/FLS/RDN (1 INPA, 1 MZUEFS); 1 , mesmos
dados do holótipo (MZUEFS); 1 , Bahia, Ituberá, 1.vii.2003, Lg. [Legit] Freddy
Bravo (MZUEFS); 1 , Porto Seguro, 5.xii.2002, Lg. [Legit] F. Bravo (MZUEFS); 2
, ES [Espírito Santo], Pancas, Faz.[enda] Juliberto Stur – Área I, 31.i-8.ii.2003,
19º13'10.5"S 40º46'23.8"O, Tavares, M.; Azevedo, C. e eq.[uipe] col. (MZUEFS); 1 ,
mesmos dados do parátipo acima, exceto 31.i-7.ii.2003, [ponto] T
2
-T
4
(MZUEFS); 1 ,
mesmos dados do parátipo aciama, exceto 12º13'10.5"S 40º46'23.8"O, (ponto) B2-B4
(MZUEFS); 6 , PR [Paraná], Antonina, Res.[erva] Sapitanduva, 02.iii.1987,
34
[armadilha] Malaise, Profaupar 4.5 [Projeto “Levantamento da Fauna Entomológica no
Estado do Paraná”, coordenador Renato Marinoni] (DZUP).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Tórax amassado lateralmente, asa
direita danificada e esquerda rasgada na base, perna posterior esquerda perdida, tarsos anteriores
perdidos, tenáculas do cerco esquerdo perdidas durante o processo de montagem.
Philosepedon sp. nov. j
(Figs. 71-77)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos separados por 0,5 do
diâmetro de faceta; ponte ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura
interocular com esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas
próxima aos olhos; fronte com cerdas na porção central; clípeo com cerdas, cinco cerdas
conspícuas em cada lado. Antena (fig. 71) incompleta; escapo cilíndrico, medindo 1,5x
o comprimento do pedicelo; pedicelo subesférico; flagelômeros nodiformes; ascóides
medindo 1,3x o comprimento do flagelômero. Labela com três dentículos (fig. 72).
Palpo sem sensilas (fig. 73), fórmula do palpo: 1:2:2,2:2,1. Tórax com esclerito
adicional proximal da pteropleura quadrangular. Asa (fig. 74): membrana alar com
cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no ápice e forquilhas radial e mediana
completas. Último tarsômero das pernas posteriores sem projeção apical. Terminália
(figs. 75-77): gonocoxitos, gonóstilos e cercos com cerdas (figs. 75, 77). Gonocoxitos
contíguos (fig. 75). Gonóstilo com ápice curvado (fig. 75). Edeago simétrico (fig. 75);
um par de parâmeros menores que o edeago, com ápices curvados (fig. 75); apódema
edeagal com o mesmo comprimento do edeago (fig. 75). Epândrio com cerdas e um
forâmen (fig. 76). Cerco (fig. 77) maior que o comprimento do epândrio, com duas
tenáculas apicais e uma cerda sub-ápical conspícua medindo cerca de ¾ da tenácula;
tenácula medindo a metade do comprimento do cerco. Epiprocto com formato de
semicircunferência e cerdoso (fig. 76); hipoprocto com elevação no médio-ápice (fig.
76), com cerdas nas regiões laterais do ápice e no ápice da elevação.
Fêmea: desconhecida.
Variações: parátipos com distância dos olhos variando de 0,5 a 0,7 do diâmetro de
faceta. Último tarsômero de todas as pernas sem projeção apical.
35
Observação: A depender do grau de clarificação do exemplar as bases das forquilhas
radiais e medianas podem ficar muito hialinas, dificultando sua visualização.
Registro geográfico. Brasil: Pará, Espírito Santo e Paraná.
Material tipo. Holótipo: , Brasil (BRASIL), ES [Espírito Santo], Pancas, Faz.[enda]
Juliberto Stur – Área I, 19º13'10.5"S 40º46'23.8"O, B1-B4, 24-31.i.2003, M. T.
Tavares, C. O. Azevedo, eq.[uipe] col. (Etiqueta branca, retangular, impressa)
(MZUEFS).
Parátipos: 1 , BRASIL, PA [Pará], Serra do Cachorro, [ponto] 14[, armadilha]
CDC/m[ata], 21.v.1998, T[oby] V[icent] B[arrett]/R[aul] Q[ueiróz]/F[rancisco] L[ima]
S[ilva] cols [coletores] (INPA); 2 , mesmos dados do holótipo (MZUEFS); 1 , ES
[Espírito Santo], Pancas, Faz.[enda] Juliberto Stur – Área I, 12º31'10.5"S
40º46'23.8"O, B2-B4, 31.i-7.ii.2003, M. T. Tavares, C. Azevedo, eq.[uipe] col[etor]
(MZUEFS); 2 , PR [Paraná], Antonina, Res.[erva] Sapitanduva, 02.iii.1987,
[armadilha] Malaise, Profaupar 4.5 [Projeto “Levantamento da Fauna Entomológica no
Estado do Paraná”, coordenador Renato Marinoni] (DZUP).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Antenas incompletas, palpo
esquerdo com o quarto palpômero perdido, tórax amassado lateralmente, pernas
anteriores e médias perdidas.
Philosepedon sp. nov. l
(figs. 78-85)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos contíguos; ponte
ocular com largura equivalente quatro facetas, sutura interocular com esporão mediano;
vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas próxima aos olhos; fronte com
cerdas na porção central; clípeo com cerdas, três cerdas conspícuas em cada lado.
Antena (fig. 78) incompleta; escapo cilíndrico, medindo 1,3x o comprimento do
pedicelo; pedicelo subesférico; flagelômeros nodiformes; ascóides perdidos. Labela
com três dentículos (fig. 79). Palpo sem sensilas (fig. 80), fórmula do palpo: 1:1,8:2:2.
Tórax com esclerito adicional proximal da pteropleura quadrangular. Asa (fig. 81):
membrana alar com cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no ápice e
36
forquilhas radial completa e mediana completa. Último tarsômero de todas as pernas
com projeção apical. Terminália (figs. 82-85): gonocoxitos, gonóstilos e cercos com
cerdas (figs. 82, 84). Gonocoxitos contíguos (fig. 82). Gonóstilos simples (fig. 82).
Edeago simétrico, com ápice bifurcado (fig. 82); um par de parâmeros fusionados da
base até a região mediana (fig. 82); apódema edeagal medindo a metade do
comprimento do edeago (fig. 82). Epândrio com cerdas e um forâmen (fig. 83). Cerco
maior que o comprimento do epândrio, cerco esquerdo com seis tenáculas (fig. 84) e
direito com sete tenáculas (fig. 85), sendo que três tenáculas são apicais e as demais
subapicais; tenácula medindo menos que a metade do comprimento do cerco (fig. 84).
Epiprocto com formato de tenda e com cerdas (fig. 83); hipoprocto com cerdas.
Fêmea: desconhecida.
Registro geográfico. Brasil: Pará.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, PA [Pará], Serra do Cachorro, Topo do Morro,
[ponto] 3[, armadilha] cdc/m[ata], 23.v.1998, T[oby] V[icent] B[arrett]/R[aul]
Q[ueiróz]/F[rancisco] L[ima] S[ilva] cols [coletores] (Etiqueta branca, retangular,
impressa) (INPA).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Antenas incompletas, ascóides
perdidos; tórax rasgado na região dorsal.
Philosepedon sp. nov. m
(figs. 86-93)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos separados por 0,2 do
diâmetro de faceta; ponte ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura
interocular com esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas
próxima aos olhos; fronte com algumas cerdas alcançando a base da ponte ocular;
clípeo com cerdas, quatro cerdas conspícuas em cada lado. Antena (figs. 86, 87)
completa, com 14 flagelômeros; escapo cilíndrico, medindo 1,5x o comprimento do
pedicelo (fig. 86); pedicelo subesférico (fig. 86); flagelômeros nodiformes (figs. 86, 87),
os três últimos reduzidos e separados (fig. 87); ascóides medindo 1,2x o comprimento
do flagelômero (fig. 86). Labela com quatro dentículos (fig. 88). Palpo sem sensilas
37
(fig. 89), fórmula do palpo: 1:1,7:2:2,8. Tórax com esclerito adicional proximal da
pteropleura quadrangular. Asa (fig. 90): membrana alar sem cerdas, veia Sc curta e
grossa, veia R
5
terminando no ápice e forquilhas radial e mediana completas. Último
tarsômero de todas as pernas sem projeção apical. Terminália (figs. 91-93):
gonocoxitos, gonóstilos e cercos com cerdas (figs. 91, 93). Gonocoxitos contíguos (fig.
91). Gonóstilos com mesmo tamanho do gonocoxito (fig. 91). Edeago simétrico, com
ápice truncado (fig. 91); um parâmero com ápice truncado (fig. 91); apódema edeagal
medindo 0,8x do comprimento do edeago (fig. 91). Epândrio com cerdas e um forâmen
(fig. 92). Cerco (fig. 93) maior que o comprimento do epândrio, com uma tenácula
apical medindo mais que a metade do comprimento do cerco. Epiprocto sub-oval com
cerdas (fig. 92); hipoprocto com cerdas nas regiões laterais.
Fêmea: desconhecida.
Observação: A depender do grau de clarificação do exemplar a base da forquilha
mediana pode ficar muito hialina, dificultando sua visualização.
Registro geográfico. Brasil: Amazonas e Pará.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, PA [Pará], Santarém, Chac.[ara] N.[ossa]
S.[enhora de] Nazaré, Km 13-8, [armadilha] CDC – mata, 27.xi.1998, Col. R[uy]
F[reitas]/R[oberto] D. N[aiff]/F[rancisco] L[ima] S[ilva] (Etiqueta branca, retangular,
impressa) (INPA).
Parátipos: 41 , mesmos dados do holótipo (20 INPA, 21 MZUEFS); 1 ,
mesmos dados do holótipo, exceto Est.[ação] do Aeroporto, Km 13, Comunidade Santa
Maria, Chácara N.[ossa] Sr. [Senhora] [de] Nazaré, [ponto] 8, Mata Alterada,
25.xi.1998 (INPA); 2 , BRASIL, AM [Amazonas], Manacapuru, Cajatuba, [ponto]
4[, armadilha] cdc, 21.iv.1998, Lote: 01 04, [coletores] R[aul] Q[ueiróz]/R[aimundo]
N[onato]/PE (1 INPA, 1 MZUEFS).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Asa direita dobrada na
margem anterior, pernas anterior direita, média direita e posterior esquerda perdidas.
38
Philosepedon sp. nov. n
(figs. 94-101)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos contíguos; ponte
ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura interocular com esporão
mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas próxima aos olhos; fronte
com algumas cerdas alcançando a base da ponte ocular; clípeo com cerdas, quatro
cerdas conspícuas em cada lado. Antena (figs. 94, 95) completa, com 14 flagelômeros;
escapo cilíndrico, com o mesmo comprimento do pedicelo (fig. 94); pedicelo
subesférico (fig. 94); flagelômeros nodiformes (figs. 94, 95), os três últimos reduzidos e
separados (fig. 95); ascóides com o mesmo comprimento do flagelômero (fig. 94).
Labela com quatro dentículos (fig. 96). Palpo sem sensilas (fig. 97), fórmula do palpo:
1:1,7:2,1:2,2. Tórax com esclerito adicional proximal da pteropleura quadrangular. Asa
(fig. 98): membrana alar sem cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no ápice
e forquilhas radial e mediana completa. Terminália (figs. 99-101): gonocoxitos,
gonóstilos e cercos com cerdas (figs. 99, 101). Gonocoxitos contíguos (fig. 99), com
apódema gonocoxal desenvolvido, alcançando ao nível do gonocoxito, com cerdas no
ápice (fig. 99). Gonóstilo terminando em ponta (fig. 99). Edeago simétrico, longo,
ultrapassando o gonóstilo (fig. 99); um parâmero menor que o edeago, com ápice
truncado (fig. 99); apódema edeagal medindo a metade do comprimento do edeago (fig.
99). Epândrio com cerdas e um forâmen (fig. 100). Cerco (fig. 101) maior que o
comprimento do epândrio, com uma tenácula apical medindo mais que a metade do
comprimento cerco. Epiprocto oval, com cerdas (fig. 100); hipoprocto com cerdas.
Fêmea: desconhecida.
Observação: A depender do grau de clarificação do exemplar a base da forquilha
mediana pode ficar muito hialina, dificultando sua visualização. Não foi possível
observar as pernas do holótipo, a seguir a característica observada nos parátipos: último
tarsômero de todas as pernas sem projeção apical.
Registro geográfico. Brasil: Amazonas, Pará, Bahia e Espírito Santo.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, PA [Pará], Santarém, Chac.[ara] N.[ossa]
S.[enhora] [de] Nazaré, Km 13-8, [armadilha] CDC-mata, 27.xi.1998, Col. R[uy]
39
F[reitas]/R[oberto] D. N[aiff]/F[rancisco] L[ima] S[ilva] (Etiqueta branca, retangular,
impressa) (INPA).
Parátipos: 3 , BRASIL, AM [Amazonas], Manacapuru, Cajatuba, [ponto] 4[,
armadilha] cdc-Copa, 21.iv.1998, Lote: 01 14, [coletores] R[aul] Q[ueiróz]/R[aimundo]
N[onato]/PE (2 INPA, 1 MZUEFS); 1 , Bahia, Santa Terezinha, Serra da
Jibóia, 24.viii.2000, Lg. [Legit] F. Bravo (MZUEFS); 1 , Ituberá, 12.vi.2002,
[coletor] F. Bravo (MZUEFS); 1 , ES [Espírito Santo], Pancas, Faz.[enda] Juliberto
Stur – Área I, 19º13'10.5"S 40º46'23.8"O, [ponto] B1-B4, 24-31.i.2003, M. T. Tavares,
C. O. Azevedo, eq[uipe] col. (MZUEFS).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Antenas incompletas e sem
ascóide, palpos somente com o primeiro palpômero, pernas perdidas.
Philosepedon sp. nov. o
(figs. 102-117)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos contíguos; ponte
ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura interocular com esporão
mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas próxima aos olhos; fronte
algumas cerdas alcançando a base da ponte ocular; clípeo com cerdas, quatro cerdas
conspícuas em cada lado. Antena (figs. 102, 103) completa, com 14 flagelômeros;
escapo cilíndrico, com o mesmo comprimento do pedicelo (fig. 102); pedicelo
subesférico (fig. 102); flagelômeros nodiformes (figs. 102, 103), os três últimos
reduzidos e separados (fig. 103); ascóides medindo 0,8x o comprimento do flagelômero
(fig. 102). Labela com dois dentículos (fig. 104). Palpo sem sensilas (fig. 105), fórmula
do palpo: 1:2:2,2:2,4. Asa (fig. 106): membrana alar sem cerdas, veia Sc curta e grossa,
veia R
5
terminando no ápice e forquilhas radial e mediana completas. Terminália (figs.
107-109): gonocoxitos, gonóstilos e cercos com cerdas (figs. 107, 109). Gonocoxitos
contíguos, com apódema gonocoxal desenvolvido, alcançando ao nível do gonocoxito,
com cerdas no ápice (fig. 107). Gonóstilos com base 2x mais larga que o ápice (fig.
107). Edeago simétrico, longo, ultrapassando o gonóstilo (fig. 107); parâmeros ausentes
(fig. 107); apódema edeagal medindo menos da metade do edeago (fig. 107). Epândrio
com cerdas e um forâmen (fig. 108). Cerco (fig. 109) maior que o comprimento do
40
epândrio, com uma tenácula apical medindo 0,7x o comprimento do cerco. Epiprocto
sub-oval, com cerdas (fig. 108); hipoprocto com cerdas no ápice.
Fêmea: desconhecida.
Observação: Não foi possível observar o tórax e as pernas do holótipo. A seguir as
características observadas nos parátipos: tórax com esclerito adicional proximal da
pteropleura quadrangular e último tarsômero de todas as pernas sem projeção apical.
Registro geográfico. Brasil: Bahia e Espírito Santo.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, ES [Espírito Santo], Pancas, Faz.[enda]
Juliberto Stur – Área I, 12º31'10.5"S 40º46'23.8"O, (ponto) B2-B4, 31.i-7.ii.2003, M. T.
Tavares, C. Azevedo, eq.[uipe] col[etor] (Etiqueta branca, retangular, impressa)
(MZUEFS).
Parátipos: 1 , BRASIL, Bahia, Serra da Jibóia, 27.vii.2000, Lg. [Legit] F. Bravo
(MZUEFS); 2 , mesma localidade do parátipo acima, 15.x.2002, Lg. [Legit] I. Castro
(MZUEFS); 1 , mesmos dados do holótipo (MZUEFS).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Antena esquerda incompleta,
tórax danificado, asa direita dobrada na base, pernas perdidas, terminália separada em
duas partes: dorsal e ventral.
Philosepedon sp. nov. p
(figs. 110-117)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos separados por 0,5 do
diâmetro de faceta; ponte ocular com largura equivalente quatro facetas, sutura
interocular com esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas
próxima aos olhos; fronte com algumas cerdas passando por entre os olhos e alcançando
¼ basal da ponte ocular; clípeo com cerdas, três cerdas conspícuas em cada lado.
Antena (figs. 110, 111) completa, com 14 flagelômeros; escapo cilíndrico, medindo
1,2x o comprimento do pedicelo (fig. 110); pedicelo subesférico (fig. 110);
flagelômeros nodiformes (figs. 110, 111), os três últimos reduzidos e separados (fig.
111); ascóides medindo 1 a 1,2x o comprimento do flagelômero (figs. 110, 111). Labela
41
com quatro dentículos (fig. 112). Palpo sem sensilas (fig. 113), fórmula do palpo:
1:2,1:2,6:3. Tórax com esclerito adicional proximal da pteropleura quadrangular. Asa
(fig. 114): membrana alar sem cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no
ápice e forquilhas radial e mediana completas, sendo que a base forquilha mediana é
fina podendo em alguns espécimes parecer incompleta devido ao grau de clarificação da
asa. Último tarsômero de todas as pernas sem projeção apical. Terminália (figs. 115-
117): gonocoxitos, gonóstilos e cercos com cerdas (figs. 115, 117). Gonocoxitos
contíguos (fig. 115). Gonóstilos simples (fig. 115). Edeago simétrico com ápice
bifurcado (fig. 115); um par de parâmeros menores que o edeago, alcançando até
próximo a bifurcação do edeago (fig. 115); apódema edeagal com o mesmo
comprimento do edeago (fig. 115). Epândrio com cerdas e um forâmen (fig. 116). Cerco
(fig. 117) medindo 1,4x o comprimento do epândrio, com uma tenácula apical medindo
mais que a metade do comprimento do cerco. Epiprocto subtriangular, com cerdas (fig.
116); hipoprocto sub-retangular, com cerdas em toda a superfície, principalmente nas
extremidades (fig. 116).
Fêmea: desconhecida.
Variações: parátipos com distância dos olhos variando de 0,5 a 0,7 do diâmetro de
faceta; fronte com algumas cerdas alcançando a base da ponte ocular ou cerdas
passando por entre os olhos e alcançando ¼ basal da ponte ocular.
Registro geográfico. Brasil: Bahia.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, Bahia, Santa Terezinha, Serra da Jibóia, 16-
17.vi.2000, Lg. [Legit] F. Bravo (Etiqueta branca, retangular, manuscrita) (MZUEFS).
Parátipo: 1 , mesmos dados do holótipo, exceto 27.vii.2003 (MZUEFS); 2 ,
BRASIL, Bahia, Ituberá, 01.vii.[20]03, Lg. [Legit] Freddy Bravo (MZUEFS).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permamente. Antena direita separada da
cabeça.
42
Philosepedon sp. nov. q
(figs. 118-125)
Descrição. Holótipo : Cabeça danificada; olhos separados por 0,8 do diâmetro de
faceta; ponte ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura interocular sem
esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas próxima aos
olhos; fronte com algumas cerdas passando entre os olhos e alcançando a metade da
ponte ocular; clípeo com cerdas, três cerdas conspícuas em cada lado. Antena (figs. 118,
119) completa, com 14 flagelômeros; escapo cilíndrico, com o mesmo comprimento do
pedicelo (fig. 118); pedicelo subesférico (fig. 118); flagelômeros nodiformes (figs. 118,
119), os três últimos reduzidos, os flagelômeros 12 e 13 fusionados, um espinho na
região internodal dos flagelômeros 11 e 13 e no ápice do flagelômero 14 (fig. 119);
ascóides perdidos. Labela com três dentículos (fig. 120). Palpo com sensilas no primeiro
palpômero (fig. 121), fórmula do palpo: 1:1.2:1,2:1,3. Asa (fig. 122): membrana alar
sem cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no ápice e forquilhas radial
completa e mediana incompleta. Último tarsômero de todas as pernas com projeção
apical. Terminália (figs. 123-125): gonocoxitos, gonóstilos e cercos com cerdas (figs.
123, 124). Hipândrio fino (fig. 123). Gonocoxitos separados (fig. 123). Gonóstilos com
o comprimento 4x maior que a base (fig. 123). Edeago simétrico, longo, ultrapassando o
gonóstilo (fig. 123); um par de parâmeros, menores que o edeago, no entanto, longos,
ultrapassando o gonóstilo (fig. 123); apódema edeagal medindo 0,3x o comprimento do
edeago (fig. 123). Epândrio com cerdas e um forâmen (fig. 124). Cerco (fig. 125) maior
que o comprimento do epândrio, com uma tenácula apical medindo menos que a metade
do comprimento do cerco. Epiprocto triangular, com ápice cerdoso (fig. 124);
hipoprocto com margem anterior arredondada e margem posterior triangular (fig. 124),
cerdas em toda a superfície.
Fêmea: desconhecida.
Registro geográfico. Brasil: Pará.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, PA [Pará], Serra do Cachorro, [ponto] 14[,
armadilha] CDC/m[ata], 21.v.1998, T[oby] V[icent] B[arrett]/R[aul]
Q[ueiróz]/F[rancisco] L[ima] S[ilva] cols [coletores] (Etiqueta branca, retangular,
impressa) (INPA).
43
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Cabeça rasgada no ápice do
vértice, antena sem ascóides, tórax danificado, pernas separadas do tórax, cerco direito
separado do restante da terminália.
Philosepedon sp. nov. r
(figs. 126-133)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos separados por 0,3 do
diâmetro de faceta; ponte ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura
interocular com esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas
próxima aos olhos; fronte com cerdas na porção central; clípeo com cerdas, quatro
cerdas conspícuas em cada lado. Antena (fig. 126, 127) incompleta; escapo cilíndrico,
medindo 1,2x o comprimento do pedicelo (fig. 126); pedicelo subesférico (fig. 126);
flagelômeros nodiformes (fig. 126); ascóides medindo 0,6x o comprimento do
flagelômero (fig. 127). Labela com quatro dentículos (fig. 128). Palpo sem sensilas (fig.
129), fórmula do palpo: 1:2:2,5:2,7. Tórax com esclerito adicional proximal da
pteropleura quadrangular. Asa (fig. 130): membrana alar sem cerdas, veia Sc curta e
grossa, veia R
5
terminando no ápice e forquilhas radial completa e mediana incompleta.
Último tarsômero das pernas anteriores e posteriores sem projeção apical. Terminália
(figs. 131-133): gonocoxitos, gonóstilos e cercos com cerdas (figs. 131, 133). Hipândrio
fino (fig. 131). Gonocoxitos separados (fig. 131). Gonóstilos com ápice truncado (fig.
131). Edeago simétrico bifurcado, com uma projeção na base do edeago (fig. 131);
parâmeros ausentes (fig. 131); apódema edeagal medindo mais da metade do
comprimento do edeago (fig. 131). Epândrio com cerdas e um forâmen (fig. 132). Cerco
(fig. 133) medindo 1,5x o comprimento do epândrio, com três tenáculas apicais
medindo menos que a metade do comprimento do cerco. Epiprocto sub-retangular,
cerdas na região médio-apical (fig. 132); hipoprocto subtriangular (fig. 132), com cerdas
na margem.
Fêmea: desconhecida.
Registro geográfico. Brasil: Bahia.
44
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, BA [Bahia], Ituberá, Pacangê, 09.iv.2007-
10.vi.2007 (16:45h – 6:30h), Armadilha luminosa, Lg. [Legit] E. Alvim e Equipe
Ecopol. (Etiqueta branca, retangular, impressa) (MZUEFS).
Parátipo: 1 , mesma localidade do holótipo, 12.vi.2002, Lg. [Legit] F. Bravo
(MZUEFS).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Antenas incompletas sem
ascóides, palpos com somente o primeiro palpômero, perna posterior esquerda ligada ao
tórax, pernas anteriores separadas do corpo e demais pernas perdidas.
Philosepedon sp. nov. s
(figs. 134-141)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos separados por 0,7 do
diâmetro de faceta; ponte ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura
interocular com esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas
próxima aos olhos; fronte com algumas cerdas passando entre os olhos e alcançando a
metade da ponte ocular; clípeo com cerdas, três cerdas conspícuas em cada lado. Antena
(figs. 134, 135) completa, com 14 flagelômeros; escapo cilíndrico, medindo 1,2x o
comprimento do pedicelo (fig. 134); pedicelo subesférico (fig. 134); flagelômeros
nodiformes (figs. 134, 135), os três últimos reduzidos e separados (fig. 135); ascóides
medindo 1,2x o comprimento do flagelômero (fig. 134). Labela com três dentículos (fig.
136). Palpo sem sensilas (fig. 137), fórmula do palpo: 1:2,1:2,2:2,3. Asa (fig. 138):
membrana alar sem cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no ápice e
forquilhas radial completa e mediana incompleta. Último tarsômero de todas as pernas
com projeção apical. Terminália (figs. 139-141): gonocoxitos, gonóstilos e cercos com
cerdas (figs. 139, 141). Gonocoxitos contíguos (fig. 139). Gonóstilos simples (fig. 139).
Edeago simétrico lanceolado (fig. 139); um par de parâmeros menores que o edeago,
curvados para fora (fig. 139); apódema edeagal medindo a metade do comprimento do
edeago (fig. 139). Epândrio com cerdas e um forâmen (fig. 140). Cerco (fig. 141)
medindo 1,5x o comprimento do epândrio, com três tenáculas apicais medindo cerca da
metade do comprimento do cerco. Epiprocto sub-oval, com cerdas (fig. 140);
hipoprocto estreito na região anterior e largo na posterior (fig. 140), com cerdas na
região posterior.
45
Fêmea: desconhecida.
Variações: Parátipos com distância entre os olhos com 0,5 do diâmetro de faceta; fronte
com algumas cerdas passando por entre os olhos e alcançando de à ½ da ponte ocular.
Observação: Não foi possível observar os caracters do tórax do holótipo. A seguir os
caracteres observados nos parátipos: tórax com esclerito adicional proximal da
pteropleura quadrangular.
Registro geográfico. Brasil: Bahia e Paraná.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, PR [Paraná], São José dos Pinhais, Serra do
Mar, BR 277, Km 54, 01.xii.1986, Profaupar 1.3 [Projeto “Levantamento da Fauna
Entomológica no Estado do Paraná”, coordenador Renato Marinoni] (Etiqueta branca,
retangular, impressa) (DZUP).
Parátipos: 2 , BRASIL, Bahia, Santa Terezinha, Serra da Jibóia, 27.vii.2000, Lg.
[Legit] Freddy Bravo (MZUEFS); 2 , mesmos dados do holótipo (DZUP).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Cabeça amassada na lateral
direita, antena direita incompleta, palpo esquerdo com quarto palpômero perdido, tórax
danificado, perna anterior esquerda perdida.
Philosepedon sp. nov. t
(figs. 142-148)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos separados por 0,3
diâmetro de faceta; ponte ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura
interocular sem esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas
próxima aos olhos; fronte com algumas cerdas passando entre os olhos e alcançando ¼
basal da ponte ocular; clípeo com cerdas, quatro cerdas conspícuas em cada lado.
Antena (fig. 142) incompleta; escapo cilíndrico, com o mesmo comprimento do
pedicelo; pedicelo subesférico; flagelômeros nodiformes; ascóides perdidos. Labela
com três dentículos (fig. 143). Palpo sem sensilas (fig. 144), fórmula do palpo:
1:1,4:1,2:1,4. Tórax com esclerito adicional proximal da pteropleura quadrangular. Asa
(fig. 145): membrana alar sem cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no
46
ápice e forquilhas radial completa e mediana incompleta. Terminália (figs. 146-148):
gonocoxitos, gonóstilos e cercos com cerdas (figs. 146, 148). Gonocoxitos contíguos
(fig. 146). Gonóstilos com ápice bifurcado (fig. 146). Edeago simétrico com ápice
truncado (fig. 146); um par de parâmeros, menores que o edeago (fig. 146); apódema
edeagal medindo 1,2x o comprimento do edeago (fig. 146). Epândrio com cerdas e um
forâmen (fig. 147). Cerco (fig. 148) com, aproximadamente, o mesmo comprimento do
epândrio, com três tenáculas apicais medindo mais da metade do comprimento do cerco
(fig. 148). Epiprocto ovalar, completamente coberto com cerdas (fig. 147); hipoprocto
com cerdas somente na região apical.
Fêmea: desconhecida.
Variações: parátipos com cerdas da fronte passando por entre os olhos e alcançando de
¼ à ½ da ponte ocular.
Observação: Não foi possível observar os caracteres das pernas do holótipo. A seguir
os caracteres observados nos parátipos: último tarsômero de todas as pernas com
projeção apical.
Registro geográfico. Brasil: Amazonas.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, AM [Amazonas], Manacapuru, Cajatuba,
[ponto] 4[, armadilha] cdc. Copa, 21.iv.1998, Lote: 01 14, [coletores] R[aul]
Q[ueiróz]/R[aimundo] N[onato]/PE (Etiqueta branca, retangular, impressa) (INPA).
Parátipos: 1 , mesmos dados do holótipo (MZUEFS); 1 , mesmos dados do
holótipo, exceto Km 69/3, [ponto] 3[, armadilha] cdc copa, 13.x.1998, coletor
desconhecido (INPA).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Antenas incompletas sem
ascóides, palpo direito com o quarto palpômero perdido, tórax rasgado na região dorsal, pernas
perdidas.
47
Philosepedon sp. nov. u
(figs. 149-156)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos separados por 0,5 do
diâmetro de faceta; ponte ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura
interocular sem esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas
próxima aos olhos e uma sutura mediana que se inicia no ápice do vértice e termina
próximo da sutura interocular; fronte com algumas cerdas passando entre os olhos e
alcançando a sutura interocular; clípeo com cerdas, quatro cerdas conspícuas em cada
lado. Antena (figs. 149, 150) completa, com 13 flagelômeros; escapo cilíndrico,
medindo de 1,2 a 1,5x o comprimento do pedicelo (fig. 149); pedicelo subesférico (fig.
149); flagelômeros nodiformes (figs. 149, 150), os três últimos reduzidos e separados,
um espinho na região internodal no flagelômero 12 e no ápice do flagelômero 13 (fig.
150); comprimento do ascóide variando de 1,2x o comprimento do flagelômero (base)
(fig. 149) até 2x o comprimento do flagelômero (ápice) (fig. 150). Labela com três
dentículos (fig. 151). Palpo sem sensilas (fig. 152), fórmula do palpo: 1:2,2:2,7:3,1. Asa
(fig. 153): membrana alar sem cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no
ápice e forquilhas radial e mediana completas. Último tarsômero de todas as pernas sem
projeção apical. Terminália (figs. 154-156): gonocoxitos, gonóstilos e cercos com
cerdas (figs. 154, 156). Gonocoxitos contíguos (fig. 154). Gonóstilos com margem
interna com uma fileira de cerdas (fig. 154). Edeago simétrico (fig. 154); um par de
parâmeros, com o mesmo comprimento do edeago (fig. 154); apódema edeagal com
formato de raquete, medindo 1,3x o comprimento do edeago (fig. 154). Epândrio com
cerdas e um forâmen (fig. 155). Cerco (fig. 156) medindo 1,5x o comprimento do
epândrio, com três tenáculas apicais medindo mais da metade do comprimento do cerco.
Epiprocto com projeção apical e completamente coberto com cerdas (fig. 155);
hipoprocto com região apical esclerotizada, dividida em três partes (fig. 155), com
cerdas nas laterais e na região mediana.
Fêmea: desconhecida.
Variações: parátipos com distância entre os olhos variando de com 0,5 a 1 diâmetro de
faceta.
Observação: A depender do grau de clarificação do exemplar a base da forquilha
mediana pode ficar muito hialina, dificultando sua visualização. Não foi possível
48
observar os caracteres do tórax do holótipo. A seguir os caracteres observados nos
parátipos: tórax com esclerito adicional proximal da pteropleura quadrangular.
Registro geográfico. Brasil: Espírito Santo e Paraná.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, PR [Paraná], Antonina, Res.[erva] Sapitanduva,
02.iii.1987, (armadilha) Malaise, Profaupar 4.5 [Projeto “Levantamento da Fauna
Entomológica no Estado do Paraná”, coordenador Renato Marinoni] (Etiqueta branca,
retangular, impressa) (DZUP).
Parátipos: 2 , BRASIL, ES [Espírito Santo], Pancas, Faz.[enda] Juliberto Stur – Área
I, 19º13'10.5"S 40º46'23.8"O, (ponto) B1-B4, 24-31.i.2003, M. T. Tavares, C. O.
Azevedo, eq.[uipe] col. (MZUEFS); 2 , Santa Maria de Zetiba, Faz.[enda] Clarindo
Kruger, 29.xi-06.xii.2002, (armadilha) Malaise, 20º04'22.5"S 40º44'51.5"O, M. T.
Tavares e equipe, col. (MZUEFS); 11 , mesmos dados do holótipo (DZUP).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Antena esquerda incompleta,
palpos com o quarto palpômero perdidos, tórax danificado, terminália separada em duas
partes: dorsal e ventral.
Philosepedon sp. nov. v
(figs. 157-165)
Descrição. Holótipo : Cabeça subesférica em vista frontal; olhos separados por 0,5 do
diâmetro de faceta; ponte ocular com largura equivalente a quatro facetas, sutura
interocular com esporão mediano; vértice cerdoso com uma linha de cerdas conspícuas
próxima aos olhos; fronte com algumas cerdas passando entre os olhos e alcançando
basal da ponte ocular; clípeo com cerdas, três cerdas conspícuas em cada lado. Antena
(figs. 157, 158) completa, com 14 flagelômeros; escapo cilíndrico, com o mesmo
comprimento do pedicelo (fig. 157); pedicelo subesférico (fig. 157); flagelômeros
nodiformes (figs. 157, 158), os três últimos reduzidos e separados (fig. 158); ascóides
medindo de 0,8 a 1x o comprimento do flagelômero (fig. 157). Labela com três
dentículos (fig. 159). Palpo sem sensilas (fig. 160), fórmula do palpo: 1:2:2,2:2,5. Asa
(fig. 161): membrana alar sem cerdas, veia Sc curta e grossa, veia R
5
terminando no
ápice, veia Rs com expansão sub-basal e forquilhas radial completa e mediana
49
incompleta. Último tarsômero das pernas anterior e posterior com projeção apical.
Terminália (figs. 162-166): gonocoxitos, gonóstilos e cercos com cerdas (figs. 162,
164). Gonocoxitos contíguos (fig. 162). Gonóstilos com dois espinhos subapicais (fig.
162). Edeago simétrico, lanceolado (fig. 162); um par de parâmeros, maiores que o
edeago (fig. 162); apódema edeagal com, aproximadamente, o mesmo comprimento do
edeago (fig. 162). Epândrio com cerdas e um forâmen (fig. 163). Cerco (fig. 164)
medindo 1,2x o comprimento do epândrio, com seis tenáculas apicais medindo menos
que a metade do comprimento do cerco. Epiprocto sub-oval, com cerdas no centro do
epiprocto (fig. 163); hipoprocto com formato de tenda, com cerdas da metade até o
ápice e (fig. 163).
Fêmea: desconhecida.
Variações: parátipos com distância entre os olhos variando de 0,5 a 0,8 do diâmetro de
faceta.
Observação: Não foi possível observar os caracteres do tórax e perna média do
holótipo. A seguir os caracteres observados nos parátipos: tórax com esclerito adicional
proximal da pteropleura quadrangular e pernas médias com último tarsômero com
projeção apical.
Registro geográfico. Brasil: Bahia e Paraná.
Material tipo. Holótipo: , BRASIL, PR [Paraná], Antonina, Res.[erva] Sapitanduva,
02.iii.1987, [armadilha] Malaise, Profaupar 4.5 [Projeto “Levantamento da Fauna
Entomológica no Estado do Paraná”, coordenador Renato Marinoni] (Etiqueta branca,
retangular, impressa) (DZUP).
Parátipos: 1 , BRASIL, Bahia, Santa Terezinha, Serra da Jibóia, 1.iv.2001, Lg. [Legit]
F. Bravo (MZUEFS); 2 , Sauípe, 14.xi.2004, Lg. [Legit] I. Castro (MZUEFS); 1 ,
mesmos dados do holótipo (DZUP).
Condição do holótipo. Montado em lâmina permanente. Antena esquerda incompleta,
palpos somente com o primeiro palpômero, tórax danificado, asa esquerda com base
dobrada, pernas anterior direita e médias perdidas, cercos separados do restante de
terminália, sendo que um cerco está partido ao meio.
50
Comentários sobre as espécies de Philosepedon
De acordo com a definição adotada neste trabalho para Philosepedon, o gênero
contém duas espécies fósseis (do México) e 81 espécies recentes no mundo (Apêndice
I), sendo 26 espécies da região Neotropical (Duckhouse 1973a, 1974; Quate 1996,
1999; Wagner e Masteller 1996; Collantes e Martínez-Ortega 1999; Ibañez-Bernal
2004; Bravo et al. 2006).
Ao analisar os exemplares das 21 espécies novas, além das quatro espécies
brasileiras de Philosepedon, pôde-se observar uma grande variação morfológica quanto
à presença ou ausência de dentículos na labela, gonocoxitos separados ou contíguos,
tamanho da tenácula em relação ao cerco, dentre outras características. Os caracteres
utilizados na identificação das espécies neste trabalho já tinham sido destacados por
Quate (1959a) quando re-estabaleceu o status genérico de Philosepedon.
As 21 espécies novas de Philosepedon encontradas aumentaram o número de
espécies conhecidas para o Brasil, de quatro para 25 espécies (incremento de 525%).
Como foram examinados somente espécimes provenientes de quatro museus (INPA,
MZUEFS, DZUP e NHM) o número de espécies de Philosepedon no Brasil pode ser
ainda maior do que o encontrado neste trabalho. Além disso, as espécies encontradas
podem ter uma distribuição maior do que a apontada neste trabalho, sendo necessária
uma análise dos espéciemes de outros museus e coletas em locais pouco amostrados.
51
5. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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Wagner, R. 2004. Fauna Europaea: Diptera, Psychodidae, Psychodinae. Fauna
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de Novembro de 2008.
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Catálogo de los Diptera de España, Portugal y Andorra (Insecta). Monografias
SEA, 8: 66-68.
Williams, P. 1993. Relationships of Phlebotomine sand flies (Diptera). Memórias do
Instituto Oswald Cruz, 88: 177-183.
59
6. FONTES FINANCIADORAS
As fontes financiadoras foram: CNPq. Proc. Nº 155674/2004-4 e CNPq. Proc.
Nº 4725922/2006-8.
60
APÊNDICE I
Lista mundial das espécies de Philosepedon
Gênero Philosepedon Eaton
Philosepedon Eaton, 1904: 57. (espécie tipo: Psychoda humeralis Meigen, 1818,
designação original).
africanum Wagner, 1979: 62. Localidade-tipo: Congo, Zaire.
amblytes Quate, 1999: 437. Localidade-tipo: Panamá, Barro Colorado Island.
arabicum Ježek, 2002: 230-233. Localidade-tipo: Yemen.
atopos Quate, 1996: 50. Localidade-tipo: Costa Rica, Heredia (Estação Biológica La
Selva).
atschitaricum Vaillant e Joost, 1983: 101. Localidade-tipo: Caucasus.
austriacum Vaillant, 1974: 114. Localidade-tipo: Europa (Áustria), Ásia (Sibéria).
balinsasayae Quate, 1965: 869. Localidade-tipo: Filipinas, Lake Balinsasayao (Negro).
balkanicum Krek, 1971: 27. Localidade-tipo: Europa, Iugoslavia, Balcans.
banski (del Rosario, 1936): 563. Localidade-tipo: Filipinas, Palawan, Mindanao (Mount
Maquling – Laguna Provice).
beaucournui Vaillant, 1974: 116. Localidade-tipo: Argeria.
bicalcaratus Quate, 1996: 58. Localidade-tipo: Costa Rica, Heredia (Estação Biológica
La Selva).
bicuspis Quate, 1996: 53. Localidade-tipo: Costa Rica, Limon (perto do vilarejo de
Talamanca).
bishoppi (del Rosario, 1936): 141. Localidade-tipo: Estados Unidos da América,
Maryland, Virginia e Alabama.
carpaticum Vaillant, 1974: 115. Localidade-tipo: Romênia.
61
clouensis Ježek, 1994:78. Localidade-tipo: Russia, West Siberia, Pasjolok (Novosibirsk
distr.).
cubana (Botosaneanu e Vaillant, 1970): 174-176. Localdade-tipo: Cuba (Province de
las Villas, Sierra Escambray).
deceptrix Quate, 1996: 58. Localidade-tipo: Costa Rica, Heredia (San Rafael de Vara
Blanca).
decipiens Quate, 1965: 870. Localidade-tipo: Filipinas, Mount Katanglad, Bukidnon
(Mindanao).
decora (Brunetti, 1911): 99. Localidade-tipo: Índia, Tenmalai (oeste de Ghats – Kerala).
dimorphus Quate, 1996: 58. Localidade-tipo: Costa Rica, Heredia (Estação Biológica
La Selva).
distans (Brunetti, 1911): 296. Localidade-tipo: Índia, Maddathorai (oeste de Ghats –
Kerala).
distylum (Quate, 1957): 259. Localidade-tipo: Madagascar.
duacopis Quate, 1999: 437-438. Localidade-tipo: Panamá, San Blas (Reserva
Nusagandi).
ensiger Quate, 1996: 53. Localidade-tipo: Costa Rica, Guanacaste (Parque Nacional
Santa Rosa).
esakii (Tokunaga, 1958): 375. Localidade-tipo: Japão (MT. Hiro, Kyusyu).
flavithorax (Satchell, 1955): 52. Localidade-tipo: Malaya, Pahang.
forcipata Quate e Quate, 1967: 1. Localidade-tipo: Indonésia (Irian Jaya).
fratruelis Quate, 1962: 44. Localiadade-tipo: Borneo.
fumata (Knab, 1914): 104-105. Localidade-tipo: México, Córdoba.
hamatus Quate, 1996: 55. Localidade-tipo: Costa Rica, Limon (perto do vilarejo de
Talamanca).
hrudkai Ježek, 1999: 46. Localidade-tipo: Republica Tcheca, Bohemia, Sokolov,
Lomnicky potok brook.
humerale (Meigen, 1818): 106. Localidade-tipo: Europa, Alemanha.
62
ibericum Vaillant, 1974: 116. Localidade-tipo: Espanha.
interdicta (Dyar, 1928): 88. Localidade-tipo: Estados Unidos da América. (=leonhardti
Vaillant, 1968).
kalehnum Vaillant, 1974: 117. Localidade-tipo: Ioguslavia e Romênia.
katangladensis Quate, 1965: 870. Localidade-tipo: Filipinas, Mount Katanglad,
Bukidnon, (Mindanao).
kowarzi Ježek, 1997: 137. Localidade-tipo: República Tcheca.
majorinus Quate, 1996: 60. Localidade-tipo: Costa Rica, Heredia (Rio Santo Domingo,
próximo à San Rafael de Vara Blanca).
malayensis (Satchell, 1955): 55. Localidade-tipo: Malaya, Pahang.
mauroae Wagner e Masteller, 1996: 460-461. Localidade-tipo: Porto Rico (El Verde,
Quebrada Prieta).
mayeri (Satchell, 1955): 54. Localidade-tipo: Europa, Áustria.
monstruosum Ježek e Mogi, 1995: 64. Localidade-tipo: Japão.
nickerli Ježek, 1997: 140. Localidade-tipo: República Tcheca, Praga.
nocturnalis Quate, 1965: 866. Localiadade-tipo: Filipinas (Mindanao).
oblongolum Bravo, Chagas e Cordeiro, 2006: 64. Localidade-tipo: Brasil, Bahia (Porto
Seguro).
obscura (Tonnoir, 1919): 140. Localidade-tipo: Bélgica.
operosa Quate, 1962: 45. Localiade-tipo: Borneo.
oppositum (Banks, 1901): 274. Localidade-tipo: Estados Unidos da América, de Iowa à
Maryland, além do Texas e a Geórgia.
orientale Wagner, 1981: 54. Localidade-tipo: Caucasus.
parciproma Quate, 1962: 42. Localiade-tipo: Borneo.
parifucus Quate, 1996: 51-52. Localidade-tipo: Costa Rica, Heredia (Rio Santo
Domingo, perto de San Rafael de Vara Blanca).
pectinata Quate e Quate, 1967: 140. Localidade-tipo: Indonésia (Irian Jaya).
63
plaumanni (Duckhouse, 1968): 39. Localidade-tipo: Brasil, Santa Catarina (Nova
Teutônia).
pollicaris Quate, 1996: 56. Localidade-tipo: Costa Rica, Guanacaste (La Pacifica, 40
km ao suldeste de Libéria).
pragense Ježek, 1997: 145. Localidade-tipo: República Tcheca, Praga.
primoryanum Wagner, 1994: 89. Localidade-tipo: Rússia, Reserva de Ussuri.
provinciale Vaillant, 1974: 116. Localidade-tipo: França.
pudica Quate, 1962: 45-47. Localidade-tipo: Borneo.
pyrenaicum Vaillant, 1974: 116. Localidade-tipo: Espanha.
quatei Vaillant, 1973: 357. Localidade-tipo: Estados Unidos da América, Carolina do
Norte.
retusus Quate, 1996: 53. Localidade-tipo: Costa Rica, Heredia (Estação Biológica La
Selva).
sakhalinum Wagner, 1994: 88. Localidade-tipo: Rússia, Sakhalin.
sandalioticum Salamanna, 1982: 189. Localidade-tipo: Sardenha.
scutigerus Vaillant, 1963: 224. Localidade-tipo: Romênia.
sessilis Quate e Quate, 1967: 142. Localidade-tipo: Indonésia (Irian Jaya), Papua Nova
Guiné.
setosa Quate e Quate, 1967: 144. Localidade-tipo: Indonésia (Irian Jaya).
spathipenis (Duckhouse, 1968): 37. Localidade-tipo: Brasil, Santa Catarina (Nova
Teutônia).
symmetricus Wagner, 1986: 88. Localidade-tipo: Turquia.
tesca (Quate, 1955): 229. Localidade-tipo: Estados Unidos da América, Califórnia.
tetartos Quate, 1996: 50. Localidade-tipo: Costa Rica, Guanacaste (Estação Pitilla, 9 km
ao sul de Santa Cecília).
tineiforme (Edwards, 1928): 72. Localidade-tipo: Borneo, Fiji, Nova Guiné, Samoa,
Indonésia, Malásia, Caroline Islands (=squamalatus (Quate, 1959)).
64
torosum Quate e Quate, 1967. Pac. Ins. Mon., 1967: 140. Localidade-tipo: Papua Nova
Guiné.
triastyla (Quate, 1957): 259. Localidade-tipo: Madagascar.
tridactila (Kincaid, 1899): 32. Localidade-tipo: Washington.
trimicra (Edwards, 1927): 364. Localidade-tipo: Indonésia, Java (Tjibodas).
tripetalis Quate, 1996: 60. Localidade-tipo: Costa Rica, Heredia (San Rafael de Vara
Blanca).
tritaxis Quate, 1996: 49-50. Localidade-tipo: Costa Rica, Heredia (Rio Santo Domingo,
perto de San Rafael de Vara Blanca).
tritenaculus Quate, 1996: 58. Localidade-tipo: Costa Rica, Guanacaste (Estação Pitilla,
9 km ao sul de Santa Cecília).
triungulata Eaton, 1913: 429. Localidade-tipo: África, Seychelles.
uncinatum Bravo, Chagas e Cordeiro, 2006: 65. Localidade-tipo: Brasil, Bahia (Santa
Terezinha, Serra da Jibóia).
veracruzana (Ibáñez-Bernal, 2004): 2. Localidade-tipo: México, Veracruz (Tlilapan,
Cueva Matzinga). comb. nov.
65
FIGURAS
Figura 1: Tórax de Philosepedon. Abreviaturas: as = inserção da asa; es = esclerito
adicional proximal da pteropleura quadrangular; ha = inserção do halter; se =
sensila da mesopleura.
66
Figuras 2-11: Philosepedon sp. nov. a, holótipo (figuras 3-7, 9, 11) , parátipo do Pará
(figura 2) , parátipo da Bahia (figuras 8, 10) : 2. Cabeça; 3. Base da antena;
4. Ápice da antena; 5. Labela; 6. Palpo; 7. Asa; 8. Terminália, vista dorsal; 9.
Gonóstilo; 10. Terminália, vista ventral; 11. Cerco. Abreviaturas: ap = apódema
edeagal; asc = ascóide; ce = cerco; ed = edeago; ep = epândrio; epi = epiprocto;
esc = escapo; fl = flagelômero; fm = forquilha mediana; fr = forquilha radial; gs
= gonóstilo; gx = gonocoxito; hi = hipândrio; hip = hipoprocto; la = labela; pa =
parâmero; pe = pedicelo; ph = placa pós-hipandrial; pl = palpo; pt = ponte
ocular; sc = veia sub costal; si = sutura interocular; sp = sensilas do palpo; te =
tenácula.
67
Figuras 12-19: Philosepedon sp. nov. b, holótipo : 12. Base da antena; 13.
Flagelômero com ascóide; 14. Labela; 15. Palpo; 16. Asa; 17. Terminália, vista
dorsal; 18. Terminália, vista ventral; 19. Cerco.
68
Figuras 20-27: Philosepedon sp. nov. c, holótipo (figuras 20, 21, 23, 25, 26) ,
parátipo do Paraná (figuras 22, 24) , parátipo do Paraná (figura 27) : 20. Base
da antena; 21. Ápice da antena; 22. Labela; 23. Palpo; 24. Asa; 25. Terminália,
vista dorsal; 26. Terminália, vista ventral; 27. Cerco.
69
Figuras 28-35: Philosepedon sp. nov. d, holótipo : 28. Base da antena; 29. Ápice da
antena; 30. Labela; 31. Dois primeiros palpômeros; 32. Asa; 33. Terminália,
vista dorsal; 34. Terminália, vista ventral; 35. Cerco.
70
Figuras 36-41: Philosepedon sp. nov. e, holótipo : 36. Base da antena; 37. Palpo; 38.
Asa; 39. Terminália, vista dorsal; 40. Terminália, vista ventral; 41. Cerco.
71
Figuras 42-48: Philosepedon sp. nov. f, holótipo : 42. Base da antena; 43. Labela; 44.
Palpo; 45. Asa; 46. Terminália, vista dorsal; 47. Terminália, vista ventral; 48.
Cerco.
72
Figuras 49-55: Philosepedon sp. nov. g, holótipo : 49. Base da antena; 50. Labela; 51.
Primeiro palpômero; 52. Asa; 53. Terminália, vista dorsal; 54. Terminália, vista
ventral; 55. Cerco.
73
Figuras 56-62: Philosepedon sp. nov. h, holótipo (figuras 56-61) , parátipo do Paraná
(figura 62) : 56. Base da antena; 57. Labela; 58. Palpo; 59. Asa; 60.
Terminália, vista dorsal; 61. Terminália, vista ventral; 62. Ápice do cerco com
duas tenáculas.
74
Figuras 63-70: Philosepedon sp. nov. i, holótipo (figuras 63-66, 68-70) , parátipo do
Espírito Santo (figura 67) : 63. Base da antena; 64. Ápice da antena; 65.
Labela; 66. Palpo; 67. Asa; 68. Terminália, vista dorsal; 69. Terminália, vista
ventral; 70. Cerco.
75
Figuras 71-77: Philosepedon sp. nov. j, holótipo (figuras 71-75) , parátipo do Pará
(figuras 76, 77) : 71. Base da antena; 72. Labela; 73. Palpo; 74. Asa; 75.
Terminália, vista dorsal; 76. Terminália, vista ventral; 77. Cerco.
76
Figuras 78-85: Philosepedon sp. nov. l, holótipo : 78. Base da antena; 79. Labela; 80.
Palpo; 81. Asa; 82. Terminália, vista dorsal; 83. Terminália, vista ventral; 84.
Cerco esquerdo com seis tenáculas; 85. Ápice do cerco direito com sete
tenáculas.
77
Figuras 86-93: Philosepedon sp. nov. m, holótipo : 86. Base da antena; 87. Ápice da
antena; 88. Labela; 89. Palpo; 90. Asa; 91. Terminália, vista dorsal; 92.
Terminália, vista ventral; 93. Cerco.
78
Figuras 94-101: Philosepedon sp. nov. n, holótipo (figuras 96, 98, 99, 101) , parátipo
do Espírito Santo (figuras 94, 97) , parátipo da Bahia (figura 95) , parátipo
do Amazonas (figuras 100) : 94. Base da antena; 95. Ápice da antena; 96.
Labela; 97. Palpo; 98. Asa; 99. Terminália, vista dorsal; 100. Terminália, vista
ventral; 101. Cerco.
79
Figuras 102-109: Philosepedon sp. nov. o, holótipo (figuras 102-107, 109) , parátipo
da Bahia (figura 108) : 102. Base da antena; 103. Ápice da antena; 104.
Labela; 105. Palpo; 106. Asa; 107. Terminália, vista dorsal; 108. Terminália,
vista ventral; 109. Cerco.
80
Figuras 110-117: Philosepedon sp. nov. p, holótipo (figuras 110-116) , parátipo da
Bahia (figura 117) : 110. Base da antena; 111. Ápice da antena; 112. Labela;
113. Palpo; 114. Asa; 115. Terminália, vista dorsal; 116. Terminália, vista
ventral; 117. Cerco.
81
Figuras 118-125: Philosepedon sp. nov. q, holótipo : 118. Base da antena; 119. Ápice
da antena; 120. Labela; 121. Palpo; 122. Asa; 123. Terminália, vista dorsal; 124.
Terminália, vista ventral; 125. Cerco.
82
Figuras 126-133: Philosepedon sp. nov. r, holótipo (figuras 126-128, 130-133) ,
parátipo da Bahia (figura 129) : 126. Base da antena; 127. Flagelômero com
ascóide; 128. Labela; 129. Palpo; 130. Asa; 131. Terminália, vista dorsal; 132.
Terminália, vista ventral; 133. Cerco.
83
Figuras 134-141: Philosepedon sp. nov. s, holótipo : 134. Base da antena; 135. Ápice
da antena; 136. Labela; 137. Palpo; 138. Asa; 139. Terminália, vista dorsal; 140.
Terminália, vista ventral; 141. Cerco.
84
Figuras 142-148: Philosepedon sp. nov. t, holótipo (figuras 142-147) , parátipo do
Amazonas (figura 148) : 142. Base da antena; 143. Labela; 144. Palpo; 145.
Asa; 146. Terminália, vista dorsal; 147. Terminália, vista ventral; 148. Cerco.
85
Figuras 149-156: Philosepedon sp. nov. u, holótipo (figuras 149-152, 154, 155) ,
parátipo do Espírito Santo (figura 153) , parátipo do Espírito Santo (figura
156) : 149. Base da antena; 150. Ápice da antena; 151. Labela; 152. Palpo;
153. Asa; 154. Terminália, vista dorsal; 155. Terminália, vista ventral; 156.
Cerco.
86
Figuras 157-165: Philosepedon sp. nov. v, holótipo (figuras 157-159, 161-165) ,
parátipo da Bahia (figura 160) : 157. Base da antena; 158. Ápice da antena;
159. Labela; 160. Palpo; 161. Asa; 162. Terminália, vista dorsal; 163.
Terminália, vista ventral; 164. Cerco; 165. Ápice do cerco com tenácula.
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