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UNIVERSIDADEDESÃOPAULO
FFCLRP‐DEPARTAMENTODEBIOLOGIA
PROGRAMADEPÓSGRADUAÇÃOEMENTOMOLOGIA
RevisãotaxonômicadeThraulodesUlmer1919
(Ephemeroptera:Leptophlebiidae:Atalophlebiinae)
RodolfoMarianoLopesdaSilva
Tese apresentada à Faculdade de Filosofia, Ciências e
Letras de Ribeirão Preto da USP, como parte das
exigências para a obtenção do título de Doutor em
Ciências,Área:Entomologia
RIBEIRÃOPRETO‐SP
2009
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UNIVERSIDADE DE SÃO PAULO
FFCLRP - DEPARTAMENTO DE BIOLOGIA
PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM ENTOMOLOGIA
“Revisão taxonômica de Thraulodes Ulmer 1919
(Ephemeroptera: Leptophlebiidae: Atalophlebiinae)”.
Rodolfo Mariano Lopes da Silva
Tese apresentada à Faculdade de Filosofia, Ciências e
Letras de Ribeirão Preto da USP, como parte das
exigências para a obtenção do título de Doutor em
Ciências, Área: Entomologia
RIBEIRÃO PRETO - SP
2009
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UNIVERSIDADE DE SÃO PAULO
FFCLRP - DEPARTAMENTO DE BIOLOGIA
PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM ENTOMOLOGIA
“Revisão taxonômica de Thraulodes Ulmer 1919
(Ephemeroptera: Leptophlebiidae: Atalophlebiinae)”.
Rodolfo Mariano Lopes da Silva
Orientador: Dr. Claudio Gilberto Froehlich
Tese apresentada à Faculdade de Filosofia, Ciências e
Letras de Ribeirão Preto da USP, como parte das
exigências para a obtenção do título de Doutor em
Ciências, Área: Entomologia
RIBEIRÃO PRETO - SP
2009
FICHACATALOGRÁFICA
Mariano,RodolfoLopesdaSilva
Revisão taxonômica de Thraulodes Ulmer 1919 (Ephemeroptera: Leptophlebiidae:
Atalophlebiinae).RibeirãoPreto,2009.97p.
TesedeDoutorado,apresentadaàFaculdadedeFilosofia,CiênciaseLetrasdeRibeirão
PretoUSP,Áreadeconcentração:Entomologia
Orientador:Froehlich,ClaudioGilberto
1. Ephemeroptera. 2. Leptophlebiidae. 3. Atalophlebiinae. 4. Thraulodes. 5. Filogenia.
6.Taxonomia.
Agradecimentoespecial
Ao Prof. Claudio que sempre foi e será um exemplo para mim, não como
pesquisador,masprincipalmentepelapessoaqueé,porserumexemplodededicação
einteligência.Portodasasconversasnashorasdecafé,pelaconfiançaeensinamentos
que levareiportoda avida,tambémpormeacolhercomo orientando,meensinando
coisasqueserãoimportantesparaminhavida.
...andifyou'vegotgoodfriends,lovethemwhilethey'rehere...
EddieVedder‐PJ
“HappinessOnlyRealWhenShared.”
ChristopherJ.McCandless
Agradecimentos
À FAPESP e CNPq pela bolsa e apoio concedidos para o desenvolvimento do
trabalho.
Àminha“Neguinha”,porserograndeamordaminhavidaeterproporcionado
maisumavezosmomentosmaisalegresdaminhavida,eprincipalmenteporestarao
meu lado nos momentos difíceis e felizes..‐"...And wherever you've gone and
whereverwemightgo.Itdon'tseemfair.Todayjustdisappeared.Yourlight'sreflected
now.Reflectedfromapart.Wewerebutstones.Yourlightmadeusstars..."Teamo.
À minha irmã, Dã, que sempre me inspirou e me deu apoio em todos os
momentos
da minha formação, e também aos momentos de briga (que diminuíram
muito) que me fizeram crescer. Ao Paulinho, principalmente por ter diminuindo o
stressdela(hehe),etersetornadoumgrandeamigo.
À muié, minha mãe, que sempre esteve ao meu lado, me apoiando,
incentivando, dando bronca, me escutando e
me ensinando a importância das
pequenasgrandescoisasda vida,nasaltasdiscussõesnacompanhiadeumbomvinho.
E sempre me mostrando a importância da literatura na cultura e formação de uma
pessoa.
Ao“seuzé”,meupai,minhaavóeavô(emmemória),pois,mesmonosvendo
poucas vezes ao ano, sempre me apoiaram edemonstraram interesse no meu
trabalho.Àspoucasfériasnaqualfuivisitálos,proporcionandoótimosmomentosde
carinhoededescanso.
AosmeusfilhosBryeAl,quesempremeproporcionarammomentosdealegria
eamor,sempredebemcomavida.
Àminha
irmãde coraçãoFê,pelos momentos dealegriae principalmentepor
tercolocadonaminhavidaduasjóiasraras,PeeRafinha,estesdoismulequesacabam
comqualquerstress,principalmenteosqueestatesemetrouxe.
AosmeustiosdeRibeirãoPreto,Magda,Márcia,Eliseue Lois,pelosmomentos
de
descontração,jogosdecartaeporcuidardaVienquantoestivefora.
Minha gatinha, Ana, por nos fazer companhia nestes anos em que esteve em
Ribeirão,masmesmolongeestamosdeolho!Saudades.Bjão.
ÀCris,MoretoePam,pelaafetoecarinhonestesanosdeconvivência.
À família Rodrigues, em especial Pedro (em memória) pelo carinho e
acolhimento.
Ao amigo Eduardo Domínguez pelos ensinamentos e simplicidade. Sem sua
ajuda minha ida a Tallahassee não seria possível, vi, como você disse, que apesar da
saudadedecasarealmentenofinalvaleapena.
ÀJanPeters,minhamãeamericana,agradeçoportermeacolhidoemsuacasa
como se eu fosse da família e, principalmente, pelos ensinamentos nos efêmeros.
Agradeçotambémao Manny pela amizade,companheirismoe a todas as risadasnos
momentosdeconvívio.AtodosdaFAMU,WillFlower,MikeHubbardeaoBartporme
receberemedaremtodoapoionecessárionaminhaestadianaUniversidade.
Aosirmãosdelaboratório,coleta,cervejaefutebol(naTVéclaro),Saci,Lecci,
Astolfo, Gui (mesmo que em Rondônia), ò Sid ò (Little champion), Quitanda e Miojo
(escraviários), os momentos de descontração e muita risada nos momentos de café;
pelas coletas que ficaram na memória, impossível saber qual foi a melhor de todas.
Esperoquenãopareporaí,equepossamoscoletarmuitopeloBrasilafora!Abçpta
todos!
Ao meu irmão jamaicano, Kevin Lewis (DUDE), que fez os meses passarem
rápidograçasàamizade,jogosdetênis,finaisdesemanaechurrascosjamaicanos.
À Amanda Gimeno (em memória) pela amizade e simplicidade sincera, que
passou pelo laboratório. Hoje, devido ao ocorrido, vejo e considero minhas amizades
diferentedoqueasviaantes,vivocadadiatentandoaproveitálasaomáximo.
Em especial ao Saci Pererê Albino Bípede Trepadeira Myagui Hickman
BaryshnikovChinêsdeEspelhodaNovaCaledôniaportermeesquecidodeagradecer
nomeumestrado,desculpa,bem.
Ao Igor MAX pela amizade, por estes anos no qual se tornou um irmão para
mim,“...maseutinhaqcontinuar...”.
ÀGaleraFaculDani,Rosane,Gu´s,Barrinha,prego(Ivon),Japa(Sérgio)pela
amizadeduranteagraduaçãoeatéagora.
ÀPósgraduaçãoemEntomologiaportodosuporteduranteodoutorado.
Aos amigos do Laboratório, pelos sorrisos nos dias alegres e pelo apoio nas
horasdifíceis.
EaoClebeta,quedesde2000me ensinoumuito,nãosobreosefêmerosmas
sobretudosobrea“BiologiaGeral”.
Ao Fred e Lucimar pela amizade e principalmente por serem ótimos
pesquisadorescomquemseiquepodereicontarnapesquisacomosefêmeros.
AoElytro,GieDr.Bistecapela amizadeepelosmomentosdedescontraçãoem
váriosBandex.
AoPiteVerapelaamizadeeincentivodesdeainiciação.
Ao Humberto pela amizade durante todos estes anos de Laboratório, assim
comoasconversassobrecriaçãodeinsetos.
Ao Kapilé pelos momentos de discussão e conversas na salinha do lab, que
forammuitoimportantesnaminhaformaçãocomopesquisador.
ÀSuzana,AlaídeeamigosdeSãoCarlos(Ufscar)duranteoprojetoBiota.
Aos amigos de Mococa: Gordo, Tuinha, Kbça, KK, Zini e Gonzo, pelas ótimas
lembrançasdaadolescênciaeprincipalmentedoschurrascos.
À melhor secretária da USP, Renata, pela amizade, apoio, bolos, broncas,
quebraçãodegalhoserisadasnosmomentosdedescontração.
ÀtodagaleradaEntomologiapeloconvívio.
E a todos aqueles que eu possa ter esquecido nessa lista e que passaram por
acaso(ounão)pelaminhavida,ficaaquimeuMUITOOBRIGADO!!!!
Sumário
1.Resumo................................................................................................................................................1
Abstract....................................................................................................................................................2
2.Introdução............................................................................................................................................3
2.1.Morfologia...................................................................................................................................................4
2.1.1.Ninfas................................................................................................................................................4
2.1.2.Imagos...............................................................................................................................................5
2.2.SituaçãoatualdoestudodosEphemeropteranoBrasil.............................................................................6
2.3.HistóricodaOrdem.....................................................................................................................................8
2.4.Leptophlebiidae.........................................................................................................................................11
2.5.ThraulodesUlmer
1919.............................................................................................................................13
3.Objetivos............................................................................................................................................19
4.Materiaisemétodos...........................................................................................................................20
4.1.Coletasdeninfas........................................................................................................................................20
4.2.ColetadeAdultos......................................................................................................................................20
4.3.Identificaçãoedepósitodomaterial.........................................................................................................20
4.4.Listaondeosespécimesestãodepositados..............................................................................................21
4.5.Metodologiacladística..............................................................................................................................22
5.Resultados...............................................................................................................................
...........24
5.1.ChecklistdeLeptophlebiidaeparaoEstadodeSãoPaulo........................................................................24
5.2.ChavepreliminarparaosgênerosdeLeptophlebiidaequeocorremnoBrasil........................................26
5.3.Taxonomia...................................................................................................................................................32
5.3.1.EspéciesdeThraulodesnãoincluidasnaanálise............................................................................32
5.3.2.Espécies...........................................................................................................................................33
5.3.3.Sinonimias.......................................................................................................................................52
5.3.4.
Descriçõesdenovasespécies..........................................................................................................52
5.4.AnáliseCladística.......................................................................................................................................60
5.4.1.MatrizeListadecaracteres............................................................................................................60
5.5.Cladogramas..............................................................................................................................................65
5.5.1.Pesagemigualdoscaracteres.........................................................................................................65
5.5.2.Pesagemimplícitadoscaracteres...................................................................................................79
6.Hipótesesdeparentesco.....................................................................................................................85
7.Consideraçõesfinais...........................................................................................................................88
8.ReferênciasBibliográficas...................................................................................................................89
9.Anexos................................................................................................................................................98
1
1.Resumo
OgêneroThraulodesUlmer1920apresenta52espéciesneotropicais,sendoquedestas
apenas20espéciespossuemaninfadescrita.Estaéumaproblemáticaencontradaem
váriosgrupos,oque levadoàescolhade apenasosmachosadultosseremanalisados.
NoBrasilocorremseteespécies:T.daidaleusThew1960(SantaCatarina),T.itatiajanus
Traver & Edmunds 1967 (Rio de Janeiro), T. limbatus Navás 1936 (Santa Catarina), T.
subfasciatus Navás 1924 (Rio de Janeiro), T. traverae Thew 1960 (Santa Catarina), T.
ulmeri Edmunds 1950 (Santa Catarina) and T. schlingeri Traver & Edmunds 1967 (São
Paulo). O presente estudo gerou a revisão taxonômica do nero, uma chave de
identificação dos gêneros de Leptophlebiidae que ocorrem no Brasil e uma check list
atualizadaparaafamília.Foipossívelobservarumaumentosignificativononúmerode
espécies para o Estado, 18, quando anteriormente apenas 5 espécies de
Leptophlebiidae eram conhecidas. Dentro do trabalho de revio foram descritas 4
novas espécies, três em material colecionado no Brasil e uma colecionada na Costa
Rica,efoipropostaumatopologiaparaasespéciesdeThraulodes.
2
Abstra ct
There are 52 known species of Neotropical Thraulodes Ulmer (1920), but only 20 of
these species have the nymph described. This is a problem found in many groups,
leadingtoonlyadultmalesbeingselectedforanalysis.SevenspeciesoccurinBrazil:T.
daidaleus Thew 1960 (Santa Catarina), T. itatiajanus Traver & Edmunds 1967 (Rio de
Janeiro), T. limbatus Navás 1936 (Santa Catarina), T. subfasciatus Navás 1924 (Rio de
Janeiro), T. traverae Thew 1960 (Santa Catarina), T. edmundsi Ulmer 1950 (Santa
Catarina)andT. schlingeriTraver&Edmunds1967(SãoPaulo).Theaimofthisstudyis
the revision of the genus Thraulodes, the presentation of a key for genera of
Leptophlebiidae from Brazil and of an updated check list for the family. By the latter,
it´spossibletoobserveasignificantincreaseinthenumberofspeciesfortheStateof
São Paulo, 18 species, in contrast to the previously only 5 species known of
Leptophlebiidae. Here we describe 4 new species, three from Brazil and one from
CostaRica,andatopologyofthespeciesofThraulodesisproposed.
3
2.Introdução
Os Ephemeroptera constituem um dos mais importantes grupos da
entomofauna aquática, ao lado de Plecoptera e Trichoptera (EPT), além dos
Chironomidae (Diptera). Ocorrem em ambientes aquáticos lênticos e lóticos, sendo a
maiordiversidadeencontradaemriosdecabeceira,desegundaeterceiraordens,com
fundo rochoso e água oligotrófica a mesotrófica (Edmunds et al. 1976; Merritt &
Cummins1996;Roldánrez 1988).OsEphemeropterasãoencontradosemtodos os
continentes, exceto na Antártida, no extremo Ártico e em algumas ilhas oceânicas
(Edmundsetal.1976).
A maior parte das ninfas de Ephemeroptera se alimenta basicamente de
materialvegetal(algasunicelularesecoloniaisdobiofilme),alémde detritos,incluindo
material vegetal alóctone (Edmunds et al. 1976; Needham et al. 1935; Williams &
Feltmate 1992). Também fazem parte da dieta, fungos, bactérias e restos animais. As
espécies verdadeiramente carnívoras são raras (Brittain 1982; Campbell 1985;
McCafferty&Provonsha1986).Muitasespéciesnãosealimentamnoprimeiroestágio
ninfal, sobrevivendo a partir das células intestinais vitelínicas (Brittain 1982) e,
freqüentemente,ohábitoalimentarvariaduranteodesenvolvimentodaninfa(Merritt
&Cummins1996).
rios fatores influenciam o ciclo de vida e a distribuição temporal e espacial
dos estágios imaturos e adultos de EPT. A influência de fatores bióticos e abióticos
sobre os organismos aquáticos sejam eles físicos ou químicos, tem sido bastante
estudada nas últimas décadas (cf. Anderson & Cummins 1979; Cummins et al. 1984;
Petersen&Eeckhaute1992).
4
2.1.Morfologia
2.1.1.Ninfas
Figura1.Esquemageraldeninfa(modificadodeTravereEdmunds,1967)

5
2.1.2.Imagos
Figura2.Esquemageraldaimago.
Figura3.Esquemageraldasasasdaimago.
6
Figura4.Esquemageraldagenitáliacompênisemdestaque(Imago).
2.2.SituaçãoatualdoestudodosEphemeropteranoBrasil
AordemEphemeropteraestácompostaatualmenteporcercade4000espécies
em37famílias.NaAméricadoSulsãoconhecidas14famíliaseaproximadamente450
espécies de Ephemeroptera (Domínguez et al. 2006). Para o Brasil um total de 63
gêneros e
166 espécies representando 10 famílias: Leptophlebiidae, Baetidae,
Leptohyphidae, Polymitarcyidae, Euthyplociidae, Ephemeridae, Caenidae,
Oligoneuriidae,CoryphoridaeeMelanemerellidae.Dentreasfamíliasmaisnumerosas,
Baetidae e Leptophlebiidae se destacam, comportando ao todo mais de 60% dos
gêneros e 50% das espécies brasileiras. Das cerca de 70 espécies de Ephemeroptera
registradasparaoBrasil
apartirdadécadade80,45pertencemaessasduasfamílias
(Sallesetal.2004,Domínguezetal.2006).
No Brasil, estudos com Ephemeroptera em rios de ordem pequena e média
foramdesenvolvidosemriasreges(Oliveiraetal.1997;Moulton1999;Dinizetal.
1998, Bispo & Oliveira 2007). No sudeste brasileiro, incluindo regiões serranas,
trabalhosforaminiciados,principalmenteemMinasGeraiseSãoPaulo(Ferreira1990;
Oliveira1988;Silvaetal.2001;Silva&Froehlich2004;Bispoetal2006;CrisciBispoet
7
al.2007a,b).Descriçõesebiologiadealgumasespéciesforamrecentementefeitasnos
últimos anos (Ferreira & Domínguez 1992; DaSilva & Pereira 1993; LugoOrtiz &
McCafferty 1995, 1996a, 1996b, 1996c, 1997, 1998; Salles & LugoOrtiz 2002, 2003;
Sallesetal.2003a;Lopesetal.2003a,2003b;Polegatto&Batista2007;Mariano2009;
Molineri1999;Sieglochetal.2006;entreoutros).
A taxonomia dos efemerópteros no Brasil ainda é pouco estudada. Um bom
exemplo disto é a quantidade de novas espécies e associações entre ninfas e imagos
quevêmsendodescritas.AfamíliaLeptophlebiidaeobtevegrandeavançoemestudos
taxonômicos no Brasil. Alguns pesquisadores como Dias, Domínguez, Mariano,
Polegatto e Salles vem concentrando esfoos no estudo da ordem nos últimos anos.
Um exemplo disto são dois novos gêneros, um para o Mato Grosso, Hydromastodon
sallesi (Polegatto & Batista 2007), e outro para o Rio Grande do Sul, Segesta
riograndense (Siegloch, Polegatto & Froehlich, 2006); duas novas espécies de
SimothraulopsisparaaBahiaeseisnovasespéciesdeLeptophlebiidaedípteros,Askola
e Hagenulopsis (Domínguez, Molineri & Mariano, 2009), assim como a descrição da
ninfadeUlmeritoidesuruguayensis(Mariano&Froehlich2007).Outrosexemplos,em
outrasfamílias,são as deduasespécies deBaetodes(Baetidae)dointeriordoEstado
deSãoPauloeproximidades(Salles&Polegatto2008).Alémdisso,éimportantenotar
que no projeto “Levantamento e biologia de Insecta e Oligochaeta aquáticos de
sistema lóticos do Estado de São Paulo BIOTAFAPESP (n
o
2003/105179) outros
gêneros e espécies foram registrados pela primeira vez em São Paulo, tais como
Farrodescarioca,Hermanellasp.,Hylisterplaumanni,Miroculismourei,edoisneros
paraoBrasil,HydrosmilodongillesaeeHagenulopsisminuta(Mariano&Polegatto,em
preparação,tabela1.).
Na fase preliminar do Programa BIOTA/FAPESP uma lista das espécies de
Ephemeropterado Estado de São Paulo foi apresentada por Hubbard e Pescador
(1999), onde havia apenas 8 espécies de Ephemeroptera, sendo destas 5 da falia
Leptophlebiidae.Apósaconclusãodoprojetoalgunsresultadosimportantespodem
ser observados, como na família Baetidae onde 14 espécies são reportadas, contra
apenas 3 registradas anteriormente(Salles et al. 2003). Em outro artigo publicadona
8
BiotaNeotropica,“NovosregistrosdeEphemerelloidea(Insecta:Ephemeroptera)para
o estado de São Paulo (Dias et al. 2007) uma lista das espécies de Leptohyphidae e
Melanemerellidae foi apresentada, com 10 espécies registradas. Atualmente uma
checklist (Tabela 1.) para Leptophlebiidae foi realizado nesta tese juntamente com o
Prof.Dr.ClaudioG.FroehlicheProf.Dr.CleberM.Polegatto.Nestetrabalhosepode
observarumaumentosignificativononúmerodeespéciesparaoEstado,18espécies,
quandoanteriormenteeramapenas8espécies,comoreferidoacima.
2.3.HistóricodaOrdem
A filogenia da ordem ainda é um “campo aberto” para estudos futuros, pois
ainda existem divergências em relação às atuais propostas de classificação do grupo
(Ogden&Whiting2005;Sunetal.2006).
Em 1979 McCafferty e Edmunds, com base em um trabalho anterior
(McCaffertyeEdmunds,1976),propuseramumafilogeniadividindoosefemerópteros
em dois grupos, Pannota e Schistonota (Figura 5.). Os Pannota compreendem as
superfamílias Ephemerelloidea e Caenoidea, enquanto que os Schistonota
compreendem os Baetoidea, Heptagenioidea, Ephemeroidea e Leptophlebioidea. O
principal caráter usado para distinguir as duas subordens é a exteno da fusão das
pterotecas no rax, em Pannota fusionado e em Schistonota não fusionado. Os
Schistonota compreende as seguintes famílias:
Ametropodidae, Baetidae,
Behningiidae, Ephemeridae, Euthyplociidae, Heptageniidae, Leptophlebiidae,
Metropodidae,Oligoneuriidae,Palingeniidae,Polymitarcydae,Siphlonuridae,enquanto
que os Pannota são: Baetiscidae, Caenidae, Ephemerellidae, Leptohyphidae,
Neoephemeridae,ProsopistomatidaeeTricorythidae.
9
Figura 5. Cladograma segundo McCafferty e Edmunds (1979), retirado de Odgen & Whiting
2005
Estafilogeniafoimuitoutilizadaporanos,atéqueem1991McCafferty
utilizandoestafilogeniacomobase,sugeriuumafilogeniaondeosSchistonotaforam
consideradosparafiléticosehipotetizououtratopologiaondeasfamíliasforam
classificadasem3subordens:Retracheata,SetisuraePisciforma(Figura6).
10
Figura6.CladogramasegundoMcCafferty(1991),retiradodeOdgen&Whiting2005
Atualmente a ordem é dividida em4subordens (McCarfferty 2001) (Figura 7):
Carapacea, Furcatergalia, Setisura, Pisciforma. Após estudos moleculares feitos por
Odgenetal.(2005), restouapenasFurcatergaliacomooúnicogrupomonofilético,com
afamíliaLeptophlebiidaemaisbasal.
11
Figura7.CladogramasegundoMcCafferty(2001),retiradodeOdgen&Whiting2005
2.4.Leptophlebiidae
Peters & Edmunds (1970), baseados na morfologia de ninfas e adultos,
colocaram o nero Paraleptophlebia como grupo basal dos Leptophlebiidae. Mais
tarde, Peters (1980) dividiu a família Leptophlebiidae (Leptophlebioidea) nas
12
subfamílias Leptophlebiinae e Atalophlebiinae (Figura 8.). Naquela ocasião
Leptophlebiinaeeracompostaporoitoneros, enquantoque orestante,incluindoo
gêneroThraulodes,faziapartedeAtalophlebiinae.
Figura8.ModificadodePeters,W.1980
A maior parte dos gêneros de Leptophlebiidae está contida na subfamília
Atalophlebiinae (Peters & Edmunds 1970, Peters 1980, Savage 1987, Flowers &
Domínguez 1991), que ocupa principalmente o Hemisfério Sul, enquanto que
Leptophlebiinae é mais comumente encontrada na América do Norte e Central e na
rego Paleártica (Edmunds et al. 1976). Segundo Peters (1980) as apomorfias dos
Atalophlebiinaesão:1placasubgenitaldomachofusionada,2escovasdamargem
anteriordasmaxilascompêlosouespinhos uniformementeorganizadosemfileiras,3
margemlateraldalínguahipofaringianacomprojeçõeslaterais,4parteventralda
língua hipofaringiana desde com pelos dispersos até sem eles, 5 margem
anterolateral da cavidade anteromedianadolabro sem modificação na setamarginal.
OscarateresquedefinemosLeptophlebiinaesão:1placasubgenitalcomumafenda
profunda, 2 escovas da margem anterior das maxilas com pêlos ou espinhos
dispersos,3margemlateraldalínguahipofaringianasemprojeçõeslaterais,4parte
ventral da língua hipofaringianacom pocotesdepêlossubapicaisesubmedianos,5
13
margem anterolateral da cavidade anteromediana do labro com espinhos ou setas
laminares, 6 cavidade anteromediana do labro plana e sem dentículos, de pouca
profundidademoderadamentecurva.
2.5.ThraulodesUlmer1919
O gênero Thraulodes foi estabelecidopor Ulmer em 1919 a partir de Thraulus
laetus descrito a partir de
imagos da Colômbia por Eaton (1884), originalmente
descrito como Calliarcys (Eaton 1883). A taxonomia de Thraulodes é baseada
principalmentenosadultoseaninfadaespécietiponuncafoidescrita.
A partir daí rias espécies foram descritas e sinonimizadas além de algumas
outras transferidas para Thraulodes nas décadas seguintes (Blanchard 1851,
Ulmer
1921,NeedhameMurphy1924,Needhametal.1935,Traver1946,Thew1960).
Entre as décadas de 20 e 30, Navás descreveu 4 espécies: T. humeralis Navás,
1935doMéxico;T. irretitusNavás,1924daCostaRica;T. subfasciatusNavás,1934eT.
limbatusNavás1936paraoBrasil.Estassãodescriçõesimcompletasenamaioriadas
espécieseleapenasdesenhouasasas,oupedaçosdela,eagenitáliadenenhumadas
espécieséconhecida.TravereEdmunds(1967)fazemcriticasàsdescriçõesecitamque
asespéciesdoxicoeCostaRicaparecemsermaispróximasaUlmeritus.
Em 1967, Traver e Edmunds descreveram 11 espécies: T. ephippiatus, T.
gonzalesi, T. itatiajanus, T. lunatus, T. osiris, T. packeri, T. papilionis, T. regulus, T.
schlingeri, T. spangleri e T. zonalis. Nove imagos não nomeadas são descritas, porém
sem ilustrações. T. pedregoso Traver, 1946 foi sinonimizado com T. lepidus Eaton. Os
autores estabeleceram dois grupos baseados em caracteres da genilia, porém
deixaram fora rias espécies impossíveis de serem agrupadas por este método. Um
totalde34espéciesfoianalisadoeumachavedeidentificaçãoproposta.
Dubey (1970) descreveu uma mea do Himalaia, T. marhieus, porém esta
espéciefoi colocada comodeposição duvidosa porKluge(2004).Naverdade a partir
da descrição original esta espécie será tirada do gênero, pertencendo à familia
14
Ephemeridae.
Allen&Brusca(1978) discutem aimportância das diferençasmorfológicasnas
brânquiasde ninfas de Thraulodes. rios autores(Needham e Murphy, 1924; Traver,
1944; Traver e Edmunds, 1967, Mayo, 1969) descrevem as ninfas, porém sem dar a
importância citada por Allen e Brusca para os diferentes tipos branquiais.
Estas
diferenças nas brânquias seriam principalmente na forma, tamanho e traquéias
laterais. Com base nestas diferenças dois grupos distintos poderiam ser formados:
grupobrunneusegrupogonzalesi.Oprimeirocomasbrânquiasestreitas,simétricas,
afilando gradualmente da base ao ápice e sem traquéias laterais e o outro com
brânquias largas,
assimétricas, afilandose abruptamente no ápice e usualmente com
traquéiaslaterais.NinfasdesignadascomoThraulodesspp.A,B,C,D,E,FeGtamm
foramdescritas.
Domínguez publicou importantes trabalhos sobre a taxonomia de Thraulodes
(Domínguez 1986, Domínguez 1987, Chacon et al. 1999, Nieto & Domínguez 2001,
Giordano&Domínguez2005);comumtotalde10espéciesdescritas:T. bolivianus,T.
conchuanensis, T. consortis, T. flinti, T. liminaris, T. marreroi, T. mucuy, T. guanare, T.
cryptodrilus, T. basimaculatus. O trabalho de Domínguez 1987 foi o mais importante
poisforamdescritas4espéciesepropostaaprimeirachaveargentinadogênero.
Em 1996, algumas espécies foram sinonimizadas por LugoOrtiz e McCafferty,
quetambémdescreveramninfasde3espécies,T.eccentricus,T.grandiseT. tenulineus,
umadaGuatemalaeoutrasduasdoMéxico.Emumtrabalhoanterior,(1995),algumas
espécies foram sinonimizadas, como T. arizonicus McDunnough (1942) sinonimizado
paraT. speciosus Traver(1934)eT. salinus Kilgoree Allen(1973)sinonimizadoparaT.
gonzalesiTraver&Edmunds(1967).
Thraulodes é um dos gêneros mais comuns na América Central e do Sul com
distribuiçãoNeotropicalextendendoseaté o sul dosEstadosUnidos,sendo o nero
mais abundante dentro dos Leptophlebiidae, com 51 espécies descritas até o
momento. Como na maioria dos Leptophlebiidae, em Thraulodes as descrições são
feitas em sua grande maioria somente com imagos, possuindo apenas 20 ninfas
15
descritasedestas4nãopossuemaimagodescrita.
Assinapomorfiasdasninfassão:1)labrocomumânguloagudolateralmente;2)
brânquias lanceoladas; 3) espinhos posterolaterais presentes nos segmentos
abdominaisIIIIX;4)dentículosdasunhastarsaisdetamanhosemelhante.
Assinapomorfiasdasimagos são: 1) olhos do machounidosacimadametade
dacabeça;2)pênisdivididodesdeabase,comumaespinhasubapicalemcadalóbulo
dirigidadetrásedireçãoaocorpo;3)veiaRsdaasaanteriornãoformandotriângulos;
4) veia MP da asa posterior dividida; 5) projeção costal da asa posterior geralmente
arredondada, situada no ponto médio da borda anterior; 6) nono esternito feminino
amplamentedividido; 7) unhastarsaisdecada pardiferentesentresi, umaemforma
deganchoeaoutrarombuda.
AsespéciesNeotropicaisdeThaulodesEatonsão:
1. ThraulodesbasimaculatusGiordano&Domínguez,2005
2. ThraulodesbolivianusDomínguez,1986
3. ThraulodesbomplandiEsbenPetersen,1912
4. ThraulodesbrunneusKoss,1966
=Thraulodessp.AAllen&Brusca,1978
5. ThraulodescentralisTraver,1946
6. ThraulodescochunaensisDomínguez,1987
7. ThraulodescolombiaeWalker ,1853
8. ThraulodesconsortisDomínguez,1987
9. ThraulodescryptodrilusNieto&Domínguez,2001
10. ThraulodesdaidaleusThew,1960
11. ThraulodeseccentricusLugoOrtiz&McCafferty,1996
=Thraulodessp.BAllen&Brusca,1978
12. ThraulodesephippiatusTraver&Edmunds,1967
13. ThraulodesflintiDomínguez,1987
16
14. ThraulodesfurficulusTraver,1946
15. ThraulodesgonzalesiTraver&Edmunds,1967
=ThraulodessalinusKilgore&Allen,1973
16. ThraulodesgrandisLugoOrtiz&McCafferty,1996
17. ThraulodesguanareChacon,Segnini&Domínguez,1999
18. ThraulodeshilarisEaton,1892
19. ThraulodeshilaroidesTraver,1946
20. ThraulodeshumeralisNavás,1935
21. ThraulodesirretitusNavás,1924
22. ThraulodesitatiajanusTraver&Edmunds,1967
23. ThraulodeslaetusEaton,1883
24. ThraulodeslepidusEaton,1884
=ThraulodespedregosoTraver,1946
25. ThraulodeslimbatusNavás,1936
26. ThraulodesliminarisDomínguez,1987
27. ThraulodeslunatusTraver&Edmunds,1967
28. ThraulodesmarreroiChacon,Segnini&Domínguez,1999
29. ThraulodesmexicanusEaton,1884
30. ThraulodesmucuyChacon,Segnini&Domínguez,1999
31. ThraulodesosirisTraver&Edmunds,1967
32. ThraulodespacayaMcCafferty,Baumgardner&Guenther,2004
=Thraulodessp.CAllen&Brusca,1978
33. ThraulodespackeriTraver&Edmunds,1967
34. ThraulodespapilionisTraver&Edmunds,1967
35. ThraulodespaysandensisTraver,1964
36. ThraulodesprolongatusTraver,1946
37. ThraulodesquevedoensisFlowers,2009
38. ThraulodesregulusTraver&Edmunds,1967
17
39. ThraulodesschlingeriTraver&Edmunds,1967
40. ThraulodesspangleriTraver&Edmunds,1967
41. ThraulodesspeciosusTraver,1934
=ThraulodesarizonicusMcDunnough,1942
42. ThraulodessubfasciataNav ás,1934
43. ThraulodestelegraphicusNeedham&Murphy,1924
44. ThraulodestenulineusLugoOrtiz&McCafferty,1996
=Thraulodessp.DAllen&Brusca,1978
45. ThraulodestraveraeThew,1960
46. ThraulodestrijunctaBanks,1918
47. ThraulodesulmeriEdmunds,1950
48. ThraulodesvalensEaton,1892
49. ThraulodesvenezuelanaUlmer,1943
50. ThraulodesvitripennisBlanchardinGay,1851
51. ThraulodeszonalisTraver&Edmunds,1967
Apenas 20 espécies possuem a ninfa descrita: Thraulodes speciosus Traver,
1934; T. traverae, Thew 1960; T. daidaleus, Thew 1960; T. brunneus Koss, 1966; T.
ephippiatus, Traver & Edmunds 1967; T. gonzalesi Traver & Edmunds, 1967; T.
itatiajanus Traver & Edmunds, 1967; T. lunatus, Traver & Edmunds 1967; T. packeri
Traver & Edmunds, 1967; T. schlingeri, Traver & Edmunds
1967; T. zonalis Traver &
Edmunds, 1967; T. bolivianus, Domínguez 1986; T. consortis, Domínguez 1987; T.
liminaris,Domínguez1987;T.cochunaensis,Domínguez1987;T.eccentricusLugoOrtiz
&McCafferty,1996;T.grandisLugoOrtiz&McCafferty,1996;T.tenulineusLugoOrtiz
& McCafferty, 1996, T. pacaya McCafferty, Baumgardner & Guenther, 2004
e T.
quevedoensisFlowers,2009
Asespéciessulamericanassão:T.basimaculatusGiordano&Domínguez,2005;
T. bolivianus Domínguez, 1986; T. bomplandi EsbenPetersen, 1912; T. cochunaensis
Domínguez,1987;T. colombia,Walker1853;T.consorti,Domínguez,1987;T.daidaleus,
18
Thew 1960; T. flinti, Domínguez1987; T. furficulus Traver, 1946; T. guanare Chacon &
Domínguez, 1999; T. itatiajanus Traver & Edmunds, 1967; T. laetus Eaton, 1883; T.
limbatusNavás,1936;T. liminarisDomínguez,1987;T.marreroiChacon&Domínguez,
1999; T. mucuy Chacon & Domínguez 1999; T. osiri Traver & Edmunds, 1967; T.
papilionis Traver & Edmunds, 1967; T. paysandensis Traver 1964; T. quevedoensis
Flowers, 2009; T. regulus Traver & Edmunds, 1967; T. schlingeri Traver & Edmunds,
1967; T. subfasciatus Navás, 1934 apenas asas desenhadas; T. telegraphicus
Needham &Murphy, 1924;T. traverae Thew, 1960; T. trijuncta Banks,1918; T. ulmeri
Edmunds,1950;T.venezuelanaUlmer,1943;T. vitripennisBlanchardinGay,1851.
NoBrasilapenassete espéciessão registradas: T. daidaleus Thew, 1960 (Santa
Catarina), T. itatiajanus Traver & Edmunds, 1967 (Rio de Janeiro), T. limbatus Navás,
1936 (Santa Catarina), T. subfasciatus Navás, 1924 (Rio de Janeiro), T. traverae Thew,
1960(SantaCatarina),T.ulmeriEdmunds,1950(SantaCatarina)andT.schlingeriTraver
&Edmunds,1967(SãoPaulo)(Domínguezetal.,2006).
19
3.Objetivos
z Ampliar o conhecimento sobre o nero Thraulodes na região neotropical e
principalmentenoBrasil;
z Desenvolver uma análise filogenética, tentando também definir grupos
monofiléticosdentrodogênero;
z FazerumachecklistdafamíliaLeptophlebiidaeparaoEstadodeSãoPaulo;
z ElaborarumachavedeidentificaçãodeadultosdeLeptophlebiidae.
20
4.Materiaisemétodos
4.1.Coletasdeninfas
Ascoletasforamdiferenciadasemcoletasquantitativas,comauxíliodecoletor
tipo Surber, e qualitativas com o uso de redes de arrasto e de deriva (Merrit &
Cummins 1996). Coletas esporádicas foram realizadas com o auxilio de Rede em “D”
(malha de 0,25mm), em diferentes mesohabitats, desde remanso a corredeiras. O
material colecionado foi fixado diretamente em álcool 80%. Algumas ninfas foram
mantidasvivase levadasparalaboratórioparacriação,parapossíveisassociaçõesdas
ninfascomosrespectivosadultos.
4.2.ColetadeAdultos
Osadultosforamcoletadoscompuçáearmadilhaluminosa,onde
éusadoum
tecido branco como anteparo, com uma lâmpada de luz mista e outra de luz
ultravioleta,paraaatraçãodosinsetos,etambémarmadilhadeMalaise.Afixaçãodas
imagos foi feita diretamente em álcool a 80%, enquanto que as subimagos coletados
forammantidasvivasatéamudae
posteriormentefixadosemálcool80%.
4.3.Identificaçãoedepósitodomaterial
O material coletado foi levado ao Laboratório de Entomologia Aquática, e
identificado até o nível de espécie. A triagem detalhada das ninfas foi feita sob
estereomicrospioeasespéciesconfirmadasatravésdetrabalhosdeváriosautores.
O material examinado foi montado em Euparal
®
ou Bálsamo do Canadá
(genitália, pernas e peças bucais) e a seco (asas), o restante fixado em alcool 80%. A
partirdeilustraçõesalápis,feitasemcâmaraclaraacopladaemmicroscópioNikon
®
,as
ilustraçõesfinaisforamfeitascomosoftwareAdobeIllustratorCS3
®
.
Os tipos de todas as novas espécies descritas serãodepositadas no Museu de
ZoologiadaUSPeparátiposnoInstitutoNacional dePesquisadaAmazônia(INPA),na
Florida Agricultural & Mechanical University (FAMU) em Tallahassee, FL, EUA e na
FundaciónMiguelLillo(IML)emTucuman,Argentina.
MaterialtipodasespéciesdeThraulodes foiexaminadonaFlorida Agricultural
& Mechanical University (FAMU, Tallahassee, Florida, EUA), National Museum of
NaturalHistory,SmithsonianInstitution(WasingtonD.C.,EUA)ematerialdaFundación
21
MiguelLilloemTucuman,Argentina.
4.4.Listaondeosespécimesesodepositados
Tabela01.
FAMU
USA
TUCUMAN
ARG
California
USA
WashingtonD.C
USA
Müncheberg
GER
Outras
(part.)
1. T.basimaculatusGiordano&Domínguez,2005 *
2. T.bolivianusDomínguez,1986 *
3. T.bompland
i
EsbenPetersen,1912 *
4. T.brunneusKoss,1966*
5. T.centralisTraver,1946 *
6. T.cochunaensisDomínguez,1987 * *
7. T.colombiaeWalker ,1853 *
8. T.consortisDomínguez,1987 * *
9. T.cryptodrilusNieto&Domínguez,2001 * *
10. T.daidaleusThew,1960
11. T.eccentricusLugoOrtiz&McCafferty,1996 *
12. T.ephippiatusTraver&Edmunds,1967 *
13. T.flintiDomínguez,1987 *
14. T.furficulusTraver,1946 *
15. T.gonzales
i
Traver&Edmunds,1967 *
16. T.grandisLugoOrtiz&McCafferty,1996*
17. T.guanareChacon&Domínguez,1999 *
18. T.hilarisEaton,1892
19. T.hilaroidesTraver,1946 *
20. T.humeralisNavás,1935 *
21. T.irretitusNavás,1924 *
22. T.itatiajanusTraver&Edmunds,1967 *
23. T.laetusEaton,1883
24. T.lepidusEaton,1884 *
25. T.limbatusNavás,1936 *
26. T.liminarisDomínguez,1987 *
27. T.lunatusTraver&Edmunds,1967 *
28. T.marhieusDubey,1970 *
29. T.marrero
i
Chacon&Domínguez,1999 *
30. T.mexicanusEaton,1884*
31. T.mucuyChacon&Domínguez,1999 *
22
32. T.osirisTraver&Edmunds,1967 *
33. T.pacayaMcCafferty etal.,2004 *
34. T.packer
i
Traver&Edmunds,1967 *
35. T.papilionisTraver&Edmunds,1967 *
36. T.paysandensisTraver,1964 *
37. T.prolongatus,Traver1946 *
38. T.quevedoensisFlowers,2009 *
39. T.regulusTraver&Edmunds,1967 *
40. T.schlingeriTraver&Edmunds,1967 *
41. T.spangler
i
Traver&Edmunds,1967 *
42. T.speciosusTraver,1934 *
43. T.subfasciatusNavás,1934 *
44. T.telegraphicusNeedham&Murphy,1924 *
45. T.tenulineusLugoOrtiz&McCafferty,1996 *
46. T.traveraeThew,1960 *
47. T.trijunctus(trijuncta)Banks,1918 *
48. T.ulmeriEdmunds,1950 *
49. T.valensEaton,1892 *
50. T.venezuelanaUlmer,1943*
51. T.vitripennisBlanchard,1851 *
52. T.zonalisTraver&Edmunds,1967 *
4.5.Metodologiacladística
Asanálisescladísticas,combasenométodopropostoporHennig(1966),foram
realizadas por intermédio do software TNT (Tree Analysis Using New Tecnology), em
processador Intel
®
Corel
tm
2 Duo 1,66GHz, 4 GB Memoria RAM, com matriz de
caracteres elaboradas em CSIRO Delta for Windows versão 1.04 e NDE (Nexus Data
Editor),versão0.5.0(Page,2001).
A metodologia de análise cladística seguiu os princípios de Hennig (1966),
posteriormente modificados e sintetizadosem manuais como: Amorim (1997), Sc huh
(2000) e Scotland&Pennington(2000).Estaabordagemfoi empregadapara obter os
cladogramasrepresentativosdasrelaçõesdeparentescodasespéciesdeThraulodes.
Oprincípiodeparcimôniafoiescolhidopararesolverosconflitosnadistribuição
dos caracteres.Estaopção metodológica objetivaencontrar a topologia que requer o
23
menor número de hipóteses ad hoc, em termos práticos, menor número de passos
(Farris, 1983). A evolução dos caracteres foi analisada em ACCTRAN, opção que
preservamaishipótesesdehomologiaprimáriatratandohomoplasiascomoreversões
(dePinna,1991).
Oscaracteresforamtratadoscomonãoordenados.Osdadosausentes(missing
data) e os dados inaplicáveis (inapplicable data) foram codificados como (?) e (),
respectivamente. Apesar do TNT (Goloboff et al., 2003) tratálos da mesma forma,
estaopçãopermitequeamatriz seja considerada umabasededadosmaisfidedigna
das descrições dos taxa e, conseqüentemente, ser
utilizada mais facilmente em
trabalhosfuturos.
A polarização dos caracteres foi feita através do critério de enraizamento por
grupos externos (Nixon & Carpenter, 1993). Para um dado caráter com dois ou mais
estados no grupo interno, o estado que ocorre em grupos relacionados (externos) é
assumido como estado plesiomórfico. Não houve,
portanto, delimitação do grupo
interno e do grupoexterno a priori, pois além de desnecessária par a o método de
polarizaçãoutilizado,impossibilitaotestedemonofiliadoprovávelgrupointerno.Para
confecção da matriz dedadosfoi utilizadoo programaNexusData Editor 0.5.0(Page,
2001).
Os índices foram
apresentados seguindo a ordem dada pelos softwares de
análises cladística, sendo que as abreviações CI, HI, CI exclud., HI exclud., RI e RC
significam índice de consistência, índice de homoplasias, índice de consistência
excluindo os caracteres não informativos, índice de homoplasias excluindo os
caracteresoinformativos,índicederetençãoeíndice
deconsistênciareescalonado,
respectivamente.
AnálisescompesagemigualforamfeitascomoTNTversão1.1(Goloboffetal.,
2008),utilizadandoo métodoheurísticoTBR (treebisectionreconnection).Comodito,
as análises iniciais foram feitas com pesagem igual dos caracteres para verificar a
distribuiçãodosmesmosnatopologia.
A pesagem implícita (Goloboff, 1993, 1995), por sua vez, atribui pesos aos
caracteres simultaneamente com a reconstrução da topologia e, conseqüentemente,
24
não tem relação de dependência com uma análise prévia de pesagem igual dos
caracteres.Valoresdepesossãoestimadospelo‘encaixeou‘ajuste(fit)docaráterem
cada árvore obtida, não sendo influenciado por qualquer outra topologia, como
acontece com o método de pesagem sucessiva. O ‘ajuste do caráter varia segundo
valores previamente estabelecidos por meio da constante de concavidade k. Assim,
diferentes valores de k terão impacto na pesagem diferencial dos caracteres
homoplásticos,poisquantomenor ovalordekempregado,maiorseráareduçãodos
pesosrelativosdoscaracteresmaishomoplásticos(paramaisdetalhesdométodoveja
Goloboff 1993 e para discussão veja Goloboff, 1995; Turner & Zandee, 1995).
Entretanto,nãoummelhorvalor(oumelhor,intervalodevalores)dekestabelecido,
o que para Goloboff (1993) deveria ser estabelecido empiricamente, assim aqui foi
utilizadovaloresdekentre1e1000,comvariaçãode1em1até20,de5em5até50,
de10em10até100,de50em50até500e,finalmente,de100em100até1000.
As análises heurísticas com pesagem implícita foram implementadas com tree
bisectionreconnection(TBR)branchswapping,100randomizações,500réplicase100
árvoressalvasporreplicaçãocomusodoTNTversão1.1(Goloboffetal.,2008).Como
supracitado,diversosvaloresdek(1–20,25,30,35,40,45,50,55,60,70,80,90,100,
150,200,250, 300, 350,400,450,500, 600, 700,800,900e 1000)foram utilizadosa
fimdeobservarquaistopologiaspoderiamresultare,conseqüentemente,quaisclados
eramredescobertoscomasdiferentesabordagensdepesagem.
5.Resultados
5.1.ChecklistdeLeptophlebiidaeparaoEstadodeSãoPaulo
Aproveitando o levantamento de material para a tese, uma checklist foi
elaborada para o estado atual da familia Leptophlebiidae no Estado de São Paulo. A
primeiralistaparaoEstadofoiafeitaporHubbardePescadorem1999,ondehaviam
apenas 8 espécies de Ephemeroptera, sendo que destas, 5 pertencem a família
Leptophlebiidae.Em2004umanovalistafoicompiladaporSallesetal.ondehouveo
aumentodeumaespécieparaoEstado.
Na lista abaixo não constam as espécies novas de Thraulodes, que serão inclusas
25
apósterminodaTese.
Askolafroehlich
i
Peters,1969
FarrodescariocaDomínguez,Molineri&Peters,1996*
HagenulopsisdipteraUlmer,1919
HagenulopsisminutaSpieth,1943**
Hermanellafroehlich
i
Ferreira&Domínguez,1992
Hydrosmilodong
i
l
liesae Thomas&Peru,2004 **
Hylisterplaumann
i
Domínguez&Flowers,1989*
Massartellabrien
i
Lestage,1924
MiroculisfroehlichiSavage&Peters,1983
Miroculismoure
i
Savage&Peters,1983*
Needhamellaehrhardt
i
Ulmer,1919*
PerissophlebiodesflintiSavage,1982
SimothraulopsisdemeraraTraver,1947*
ThraulodesschlingeriTraver&Edmunds,1967
UlmeritoidesuruguayensisTraver,1959*
Ulmeritussaopaulensis Traver,1946
*NovosregistrosparaoEstadodeSãoPaulo
**NovosregistrosparaoBrasil
26
5.2.ChavepreliminarparaosgênerosdeLeptophlebiidaequeocorremnoBrasil
(Imagomacho)
1.Asasposterioresausentes.............................................................................................2
1´.Asasposteriorespresentes...........................................................................................3
2(1).VeiaICu1dasasasanterioresunidasaCuApelabase;pênissemespinhos(Fig.A)
..................................................................................................................................Askola
2´.Veia ICu1 das asas anteriores unidas a CuP pela base, pênis com espinhos ventrais
(Fig.B);.........................................................................................................Hagenulopsis
3(1).ForquilhadaveiaMAdaasaanteriorvisivelmentesimétrica(Fig.C).....................4
3´.ForquilhadaveiaMAdaasaanteriorvisivelmenteassimétrica(Fig.D)......................6
4 (3). Placa subgenital com uma projeção mediana; cavidades onde se articulam os
forcepsfundidas,formandoumaúnicacavidade(Fig.Q)................................Thraulodes
4´.Placasubgenitalsemprojeções...................................................................................5
5(4´).VeiaScdasasasposteriorescom8/10oumenosdocomprimentodaasa(Fig.E);
ápicedopênisretocomumoumaisespinhos; .............................................Ulmeritoides
5´. Veia Sc das asas posteriores com 9/10 do comprimento da asa (Fig. F); ápice dos
pênisarredondado,cadalobocomumaprojeçãodigitiformepresente...........Ulmeritus
6(3´).Pardeunhastarsaisiguaisentresi,ambasemformadegancho(Fig.H)..............7
6´. Par de unhas tarsais diferentes entre si, uma em forma de gancho e a outra
rombuda(Fig.I).................................................................................................................8
27
7(6).Forcepsbisegmentado(Fig.N)..................................................................Fittkaulus
7´.Forcepstrisegmentado(Fig.O)..................................................................Massartella
8 (7´). Placa subgenital do macho com projeções (podendo ser variadas em número,
formaeposição)(Figs.QY)..............................................................................................9
8´.Placasubgenitalsemprojeções.................................................................................18
9(8).Apenasumaprojeção
mediananaplacasubgenital(Figs.RU)............................10
9´.Maisdeumaprojeçãonaplacasubgenital(Figs.VZ)...............................................12
10(9).Projeçãodaplacasubgenitalexpandida,podendoounãorecobriropênis......11
10. Projeção da placa subgenital não como no caso anterior, projeção mediana e
simples(Fig.ReS).............................................................................................Paramaka
11(10).Projeçãorecobrindomaisdametadeoutotalmenteopênis(Fig.T);espinhodo
pênisretoedirigidoventralmentecomápicecurvo(Fig.M)......................Leentvaaria*
11´.Projeçãonãorecobrindoopênis;espinhodopêniscurvo(Fig.U).................Hylister
12(9´).Projeçõesprojetandoseposteriormente,lobodecadapêniscomumapêndice
ventraldirigidolateralmente(Fig.Y)....................................................................Farrodes
12´.Projeçõesnãocomonocasoanterior;pêniscomprojeçõesventraisnãoprojetadas
lateralmente...................................................................................................................13
13(12´).Segundosegmentodo forceps genital alongado(Fig. V);olhosturbinadosdo
machosobreumpedúnculo(Fig.L)...........................................................Hermanellopsis
13´. Segundo segmento do forceps genital curto, o mais do que 1,5 vezes o
28
comprido quanto largo (Figs. O, QU, WZ); olhos turbinados do macho grandes não
possuindopedúnculo,comonocasoanterior(Fig.J).....................................................14
14(13´).Projeçõesnaplacasubgenitalemformadeespinhos(Figs.W).......................15
14´.Projeçõesnaplacasubgenitallongasdetamanhovariado(Figs.XeZ)..................16
15(14).Projeçõesventraisdospênisdelgados,emformadeespinhosdivergentes(Fig.
W)..................................................................................................................Needhamella
15´.Nãocomonocasoanterior.......................................................................Hermanella
16(14´).Projeçõesdaplacaestilígerapequenas................................................Traverella
16´.Projeçõesdaplacaestilígeragrandes,cobrindoquaseinteramenteopênis..........17
17 (16´). Projeções curvas lateralmente, espinhos apicais do pênis retos e projetados
ventralmentecomápicecurvo(Fig.Z)..................................................................Hylister
17´.Projeçõesretas,espinhosapicaisdopênisnãocomonocasoanterior.(Fig.X).........
..................................................................................................................Hydrosmilodon*
18(8´).Basedoprimeirosegmentodoforcepslarga,expandida(Fig.P)
...........Miroculis
18´.Basedoprimeirosegmentodoforcepsnormal.......................................................19
19 (18´). Segundo segmento do forceps genital alongado, pelo menos 3 vezes mais
longodoquesualargura(mesmopadrãodafig.V)....................................Microphlebia
19´. Segundo segmento do forceps genital curto, o mais do que 1,5 vezes
tão
compridoquantolargo(Figs.O,QU,WZ).....................................................................20
29
20(19´).Projeçãocostaldasasasposterioresfortementedesenvolvidas;regiãodaárea
costalfortementetingida(Fig.G)..............................................................Simothraulopsis
20´.Projeçãocostal das asasposteriores nãotão desenvolvidas; asasposteriores sem
pigmentação...............................................................................................Homothraulus
*‐Adescriçãodaimagodasespéciesestãoempreparão:Domínguez,Salles
eMariano.
30
Fig. AP.AAskola froehlichi; Bbase da asa de Hagenulopsisdemerara; CDasaanterior;Easa
posteriordeUlmeritoides missionensis;FasaanteriorUlmeritussp; GasaposteriordeSimothraulopsis
janaea; Hunhas tarsais iguais entre si; Iunhas tarsais diferentes entre si; Jolhos turbinados
sem
pedúnculo; Lolhos turbinados pedunculados; Mdetalhe do pênis de Leentvaaria palpalis; NPplacas
subgenitais:NFittkaulusmaculatus;OMassartellaalegrettae;PMiroculisfroehlichi.
31
Fig.QY. Genitáliascomdestaquenasprojeçõesdaplacasubgenital;QThraulodes;RParamaka
convex a; SParamaka sp.n. (em preparação); TLeentvaaria palpalis (em preparação); UHylister
plaumanni; VHermanellopsis incertans; XNeedhamella ehrhardti; ZHydrosmilodon gilliesae (em
preparação);WFarrodescarioca;Y‐Hylisterchimaera.
32
5.3.Taxonomia
Os principais caracteres diagnósticos que diferenciam as especies são: 1)
Presençaounãodeveiasintercalaresnaáreacostaldabaseatéabulla;2)áreaCostal
e Subcostal tingidas ou não; 3) número de manchas no mur da perna anterior; 4)
coloração abdominal; 5)estrutura geral do pênis, como: presença de uma estrutura
chamadade“orelhaepresençadeoutrachamadade“bolsalateral”.
Não foi possivel examinar algumas espécies portanto as descrições originais e o
livro de Domínguez et al. (2006), foram utilizadas para a consulta dos caracteres das
espécies:
1. ThraulodesbomplandiEsbenPetersen1912
2. ThraulodesbrunneusKoss1966
3. ThraulodesdaidaleusThew1960
4. ThraulodeshilarisEaton1982
5. ThraulodeslaetusEaton1983
6. ThraulodesmexicanusEaton1884
7. ThraulodesquevedoensisFlowers2009
8. ThraulodesvalensEaton1892
9. ThraulodesvenezuelaUlmer1943
5.3.1.EspéciesdeThraulodesnãoincluidasnaanálise
Atualmente existem 51
espécies descritas para o gênero, porém apenas 41
espéciesdeThraulodesforaminclusasnotrabalho.Para aanálise finalfoi optadopor
nãoincluiroscaracteresdeninfas,poisapenas20espéciesaspossuemdescritasoque
iriacausarmuitosruídosnatopologiafinal.
Dezespéciesforamretiradasdamatriz
dedados:4espéciespossuemapenasa
ninfadescrita:T.eccentricus,T. grandis,T.pacayaeT. tenulineus.Umaespéciepossue
apenasafêmea descrita(T. columbiae)eT. vitripennispossueasubimagodescrita.As
espécies descritas por Navás tamm foram excluídas da análise: T. irretitus , T.
subfasciatus, T. humeralis e T. limbatus; um dos principais problemas que surgiram
durante a revio do gênero foram as descrições imcompletas feitas por Navás.
33
Nenhuma das quatro espécies descritas possue a genitália descrita ou ilustrada. A
descriçãode T. subfasciatusfeita apartir domachosubimago eapenas umaparteda
asaanterioreaasaposteriorforamdesenhadas.OtipoestádepositadonoDeutsches
EntomologischesInstitut(Müncheberg,Alemanha),algumasfotosforamfeitas,porém
o espécime está alfinetado e as estruturas não estão em bom estado. Traver e
Edmunds(1967)acreditamqueesta espécieprovavelmentepertençaaoutro gênero,
Ulmeritoides ou Ulmeritus; T. humeralis tem apenas as asas desenhadas, e não foi
possivelconseguirempréstimodoholótipo;emT. irretitusoúltimoesternitodamea,
aasaposteriorearegiãoestigmáticadaasaanteriorestãoilustradaseadescriçãoestá
incompleta.T.limbatusteveseutipoperdidoeéimpossívelcaracterizaraespéciepela
descriçãooriginal,quepossuiaasaanteriordesenhada.SegundoTravereEdmunds
(1967)estaespécieprovavelmentetambém pertenceaoutronero,Ulmeritoidesou
Ulmeritus.
5.3.2.Espécies
GêneroThraulodesUlmer1919
Thraulodes Ulmer 1919: 33; Ulmer 1920: 116; Ulmer 1921: 263; Needham & Murphy
1924: 40; Traver 1935: 551; Traver 1944: 11; Traver 1946: 428; Demoulin 1955: 16;
Traver1964:33;Traver&Edmunds1967:352;Allen&Brusca
1978:413;Domínguez&
Savage 1987: 44; Domínguez 1987: 47; Savage 1987: 207; Domínguez, Hubbard &
Pescador1994:71;Domínguez,Molineri,Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
Espécietipo:Thraulodeslaetus(Eaton)designaçãooriginal.
Diagnose: 1) Olhos do macho encontrandose medianamente; 2) veias com a Rs das
asas anteriores não
formando dois triangulos; 3) veia MP das asas posteriores
bifurcada;4)projeçãocostaldasasasposterioresusualmentearredondadaelocalizada
próximadametade anterior daborda; 5) pênisdivididodesde a base, cada lobo com
um espinho subapical direcionado medianamente; 6) “sockets” dos forceps fundidos;
7) esternito IX da femea com uma fenda larga apicalmente; 8) garras tarsais
34
dissimilares,umaemformadeganchoeoutrarombuda.
Macho imago:olhos turbinados do macho adultograndes; podendo seremcirculares
ouovaisdorsalmente.Pronotobemdesenvolvido.Garrastarsaisdiferentesentresiem
todos os segmentos em ambos os sexos.TarsoIdomacho mais curto do que a tíbia,
que, por sua vez, é mais longo que ofêmur. Terceira perna do macho é sempre mais
curta do que a primeira, embora o mur III exceda o mur I em comprimento.
Segmento5dotarsomaislongonaspernasIIe IIIdomacho,eemtodasaspernasda
mea.TíbiaIIIdomachopodeserpoucomaiscurta,igualoupoucomaislongadoque
omur.Pernasanterioresdamea0,5vezesdocomprimentodaasaposterior,sendo
mais longa do que nos machos. Na fêmea, a perna III excede a perna I em tamanho.
Veias intercalares basais à Costal nas asas anteriores presentes ou ausentes. Veias
entre R
2+3
e R
4+5
terminando livremente na membrana, não formando triângulos.
Forquilha da veia MA levemente assimétrica. MP2 frequentemente terminando livre,
sustentadaporveiastranversais,usualmenteapicalnoníveldaforquilhadaRsebasal
àforquilhadeMA; empoucasespéciesaMP
2curvaseemdireçãoaMP1.Aprimeira
intercalaratrásdeCuAnamaioria dasvezesprojetaseemdireçãoaCuAmaspodendo
ser conectada por uma veia transversal; na rego do terço apical da asa anterior, a
partirdaR
1
próximoaMP2,asveiastranversaispodemsermuitonumerosasfazendo
comqueascélulassejamtãolargasquantolongas.Em algumasespécies,commenos
veias transversais, estas células são distintamente mais longas do que largas. Ainda
nestas espécies, células quadrangulares e células alongadas podem ocorrer em igual
número. Angulação
costal presente nas asas posteriores, raramente aguda; Sc
continuando além desta angulação. Apenas 3 veias transversais fortes nas asas
posteriores:¾basaldeSc,1/3basaldeR
1
,eveiatransversalcur vaouveiasvindasda
angulação costal no qual se encontram nas principais. Se 2 destas veias curvas
presentes, como na maioria das espécies, a mais basal é a mais forte. MP da asa
posterior bifurcada, origem da bifurcação variável. Região do setor radial
moderadamente desenvolvida. Forceps do macho trisegmentado, segmento basal
mais longo. Cada pênis com um espinho delgado surgindo dorsalmente da margem
distal, as pontas dos espinhos encontrandose medianamente. Na maioria das
espécies, placa subanal da mea levemente escavada apicalmente em sua metade.
Filamentos terminais do macho aproximadamente 3 vezes o comprimento do corpo;
35
nas meas duas vezes mais longo que o corpo. Em ambos os sexos, o filamento
terminallevementemaislongodoqueocerco.
Diagnose ninfa: 1) labro lateralmente angulado; 2) mandíbulas angularmente
curvadas,comsetas;3)submentosemsetaslaterais;4)margemlateraldopronotoliso;
5) unhas tarsais com dentículos subiguais progressivamente maiores no ápice; 6)
brânquias abdominais presentes nos segmentos IVII, similares, lanceoladas, em
algumasespéciesestreitas,eemoutraslargas;7)projeçõesabdominaisposterolaterais
nossegmentosIIIIX.
Ninfa: corpo um tanto plano, especialmente a cabeça, torax e mur , semelhantesàs
ninfasdeHeptageniidae.Cabeçaaparentementequadradaemvistadorsal,mais larga
doquelonga,geralmentelevementemaislargaqueorax;mandíbulasformamparte
dasuperfíciedacabeça,extremidadesdospalposmaxilaressãousualmentevisíveisem
vista dorsal da cabeça. Labro um pouco mais largo do que o clípeo; margem apical
pode ser levemente emarginada, mas nunca com uma fenda profunda em forma de
“V” medianamente nem com dentículos medianos. Mandíbulas com uma fileira de
longospelosaolongodamargemexterna,dabasedosincisivosatéaregiãomediana.
Nunca com um tufo de longos pelos na região mediana. Segmento distal do palpo
maxilarmaiscurtodoquerobusto,sustentandolongospelos.Abaixodapontadalea
uma fileira de largos espinhos pectinados, mais proeminentes do que os do ápice.
Segmentosdistaisdo palpolabial muitocurtos,cônicos, combasemais finadoque a
margem. Pronoto largo e longo, bem desenvolvido. mur completamente plano,
possuindo espinhos largos e curtos dorsalmente e longos pelos intercalados com
espinhos na margem posterior. Tíbia e tarso delgados; margem externa franjada com
pelos, entre eles espinhos de variado tamanho. Garras tarsais com dentículos bem
desenvolvidos e poucos dentículos pequenos em direção à base. Abdômen achatado
ventralmente, convexo dorsalmente. Espinhos diminutos presentes ao longo da
margem posterior do tergo. Espinhos posterolaterais presentes nos segmentos
abdominais 29; pequenos nos segmentos 23 ou 24, tornandose progressivamente
maislongosapartir do4ou5segmento,oúltimogeralmenteumpoucomaislongoe
emdireçãoaocorpo.Brânquiaspresentesnossegmentos17,maioresnossegmentos
3e4,emenoresno7;bilameladas,similaresnaformaemtodossegmentos;variaveis
36
em espessura em diferentes espécies. Placa subanal da mea um pouco escavada
apicalmente.Nasninfasmacho,apenasoápicedoforcepsapareceexternamente;cada
lobopenianopossuindoumalongaefinaprojeção.Cercoscaudaisefilamentoterminal
bemdesenvolvidos,ofilamentolevementemaislongodoqueoscercos.
ThraulodesbasimaculatusGiordano&Domínguez2005(Imago)(Bolivia)
Thraulodes basimaculatus Giordano & Domínguez 2005; Domínguez, Molineri,
Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
ThraulodesbolivianusDomínguez1986(Imagoe,ninfa)(Bolivia)
Thraulodes bolivianus Domínguez 1986; Domínguez, Molineri, Pescador, Hubbard &
Nieto,2006.
ThraulodesbomplandiEsbenPetersen,1912(Imagoe)(Argentina)
ThraulusbomplandiEsbenPetersen,1912;Navas,1917
Thraulusbonplandi(sic);Navás,1917
Thraulodesbomplandi;Ulmer,1920a;Ulmer,1920c;Ulmer1921;Needham&Mur phy,
1924; Ulmer, 1943; Traver, 1946; Traver, 1959b; Traver & Edmunds, 1967; Hubbard,
1982b; Domínguez, 1987a; Hubbard, Domínguez & Pescador, 1992; Hubbard,
Domínguez&Pescador,
1994;Domínguez,Molineri,Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
Thraulodes brunneus Koss, 1966 (Imago e ninfa) (México, Honduras e
Guatemala)
ThraulodesbrunneusKoss,1966;Traver&Edmunds,1967;Kilgore&Allen1973(ninfa);
Edmunds,Jensen&Berner,1976;Allen&Brusca,1978;Allen&Murvosh,1983a;Allen
& Murvosh, 1983a; Lugo
Ortiz & McCafferty 1995; McCafferty & LugoOrtiz 1996;
McCafferty,Baumgardner&Guenther,2004.
Thraulodessp.AAllen&Brusca,1978(sin.),McCafferty&LugoOrtiz1996
ThraulodescentralisTraver ,1946(Imago) (Costa Rica e América Central)
ThraulodescentralisTraver,1946;Traver&Edmunds,1967;Edmunds,Jensen&Berner,
37
1976;McCafferty&LugoOrtiz,1996.
Thraulodes cochunaensis Domínguez, 1987 (Imago e , ninfa) (Argentina e
Bolívia)
Thraulodes cochunaensis Domínguez 1987; Hubbard, Domínguez & Pescador, 1992;
Domínguez, Hubbard & Pescador, 1994; Domínguez, Molineri, Pescador, Hubbard &
Nieto,2006.
ThraulodescolombiaeWalker ,1853(Imago)(Colombia)
EphemeracolombiaeWalker ,1853
PalingeniacolombiaeHagen,1861
LeptophlebiacolombiaeEaton,1971;Eaton,1873
AdenophlebiacolombiaeEaton,1881
ThrauluscolombiaeEaton,1884
Thraulodes colombiaeUlmer,1920; Ulmer, 1920; Lestage,1924;Needham&Murphy,
1924; Traver, 1946; Kimmins, 1960; Traver & Edmunds, 1967; Hubbard, 1982; Zuñiga,
Molineri&Domínguez,2004;Domínguez,Molineri,Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
Thraulodes consortis Domínguez, 1987 (Imago e , ninfa) (Argenina e
Bolívia)
Thraulodes consortis Domínguez 1987; Domínguez, Bellesteros & Valdez, 1992;
Hubbard, Domínguez & Pescador, 1992; Domínguez, Hubbard & Pescador, 1994;
Domínguez,Molineri,Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
ThraulodescryptodrilusNieto&Domínguez,2001(Imago)(México)
Thraulodes cryptodrilus Nieto & Domínguez 2001; Domínguez, Molineri, Pescador,
Hubbard&Nieto,2006.
ThraulodesdaidaleusThew,1960(Imagoe,ninfa)(BrasileUruguai)
Thraulodesbomplandi;Traver,1959
Thraulodes daidaleus Thew 1960; Traver & Edmunds, 1967; Webb, 1980; Hubbard,
1982; Hubbard,Domínguez & Pescador 1992; Domínguez,Hubbard&Pescador 1994;
38
Salles, DaSilva, Hubbard & Serrão, 2004; Domínguez, Molineri, Pescador, Hubbard &
Nieto,2006.
Thraulodes eccentricus LugoOrtiz & McCafferty, 1996 (ninfa) (México,
GuatemalaeNicaragua)
ThraulodeseccentricusLugoOrtiz&McCafferty,1996;McCafferty&Baumgardner&
Guenther,2004;Meyer&Baumgardner&McCafferty,2008.
Thraulodessp.BAllen&Brusca,1978(sin.)
ThraulodesephippiatusTraver&Edmunds,1967(Imagoeninfa)(México)
Thraulodes ephippiatus Traver & Edmunds,1967; Edmunds & Jensen & Berner, 1976;
Allen,1985.
ThraulodesflintiDomínguez,1987(Imago)(Argentina)
Thraulodes flinti Domínguez, 1987; Hubbard, Domínguez & Pescador, 1992;
Domínguez, Hubbard & Pescador, 1994; Domínguez, Molineri, Pescador, Hubbard &
Nieto,2006.
ThraulodesfurficulusTraver,1946(Imago)(Guiana)
Thraulodes furficulus Traver 1946; Thew, 1960; Traver & Edmunds, 1967; Hubbard,
1982;Domínguez,Molineri,Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
Thraulodes gonzalesi Traver & Edmunds, 1967 (Imago e ninfa) (EUA,
GuatemalaeNicaragua)
Thraulodes gonzalesi Traver & Edmunds, 1967; Edmunds & Jensen & Berner, 1976;
Allen & Brusca, 1978; Henry, 1986; LugoOrtiz & McCafferty, 1995; McCafferty &
Baumgardner&Guenther,2004;Meyer&Baumgardner&McCafferty,2008
ThraulodessalinusKilgore&Allen,1973(sin.);LugoOrtiz&McCafferty,1995
Thraulodes grandis LugoOrtiz & McCafferty, 1996 (ninfa) (América Central,
GuatemalaeNicaragua)
Thraulodes grandis LugoOrtiz & McCafferty, 1996; McCarfferty & LugoOrtiz, 1996;
39
McCafferty & Baumgardner & Guenther, 2004; Meyer & Baumgardner& McCafferty,
2008
ThraulodesguanareChacon&Domínguez,1999(Imagoe)(Venezuela)
ThraulodesguanareChacon&Domínguez,1999;Segnini,Chacon&Domínguez,2003;
Domínguez,Molineri,Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
ThraulodeshilarisEaton,1892(Imagoe)(AméricaCentralexico)
ThraulushilarisEaton,1892;
Thaulodes hilaris Ulmer, 1920; Kimmins, 1934; Ulmer, 1943; Kimmins, 1960; Traver &
Edmunds,1967;Edmunds,Jensen&Berner,1976;McCafferty&LugoOrtiz,1996.
Thraulodes hilaroides Traver , 1946 (Imago ) (América Central, Costa Rica e
Guatemala)
Thraulodes hilaroides Traver, 1946; Traver & Edmunds, 1967; Edmunds, Jensen &
Berner,1976;McCafferty&LugoOrtiz,1996;McCafferty &Baumgardner&Guenther,
2004.
Thraulodes humeralis Navás, 1935 (Imago ) (América Central, Guatemala e
México)
Thraulodes humeralis Navás, 1935; Traver & Edmunds, 1967; Edmunds, Jensen &
Berner,1976;McCafferty&LugoOrtiz,1996;McCafferty &Baumgardner&Guenther,
2004.
ThraulodesirretitusNavás,1924(Imagoe)(AméricaCentraleCostaRica)
ThraulodesirretitusNavás,1924;Traver&Edmunds,1967;Edmunds,Jensen&Berner,
1976;McCafferty&LugoOrtiz,1996.
ThraulodesitatiajanusTraver&Edmunds,1967(Imagoeninfa)(Brasil)
ThraulodesitatiajanusTraver&Edmunds,1967;Hubbard,1982;DaSilva,2003;Salles,
DaSilva, Hubbard & Serrão, 2004; Domínguez, Molineri, Pescador, Hubbard & Nieto,
2006.
40
ThraulodeslaetusEaton,1883(Imago)(Colombia)
CalliarcyslaetusEaton,1883
ThrauluslaetusEaton,1884
Thraulodes laetus Ulmer, 1920; Ulmer, 1921; Needham & Murphy, 1924; Kimmins,
1960; Traver& Edmunds,1967;Hubbard,1982;Zuñiga,Moli neri & Domínguez,2004;
Domínguez,Molineri,Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
ThraulodesloetusLestage,1924
ThraulodeslaetaUlmer,1943
ThraulodeslepidusEaton,1884(Imagoe)(Panamá)
ThrauluslepidusEaton,1884;Eaton,1892
Thraulodes lepidus Ulmer, 1920; Needham & Murphy, 1924; Kimmins, 1934; Traver,
1946; Kimmins, 1960; Traver & Edmunds, 1967; Edmunds, Jensen & Berner, 1976;
McCafferty&LugoOrtiz,1996.
ThraulodeslepidaUlmer,1943.
=ThraulodespedregosoTraver,1946;Traver&Edmunds,1967(sin).
ThraulodeslimbatusNavás,1936(Imago)(Brasil)
ThraulodeslimbatusNavás,1936;Traver&Edmunds,1967;Hubbard,1982;Salles,Da
Silva,Hubbard&Serrão,2004;Domínguez,Molineri,Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
ThraulodesliminarisDomínguez,1987(Imagoe,ninfa)(Argentina)
Thraulodes liminaris Domínguez, 1987; Hubbard, Domínguez & Pescador, 1992;
Domínguez, Hubbard & Pescador, 1994; Domínguez, Molineri, Pescador, Hubbard &
Nieto,2006.
ThraulodeslunatusTraver&Edmunds,1967(Imagoeninfa)(México)
ThraulodeslunatusTraver&Edmunds,1967;Edmunds,Jensen&Berner,1976;Allen&
Brusca,1978;Allen1985
ThraulodesmarreroiChacon&Domínguez1999(Imago)(Venezuela)
41
ThraulodesmarreroiChacon&Domínguez1999;Segnini,Chacon & Domínguez2003;
Domínguez,Molineri,Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
ThraulodesmexicanusEaton,1884(Imagoe)(AméricaCentraleMéxico)
CalliarcysmexicanusEaton,1883
ThraulusmexicanusEaton,1884;Eaton,1892.
Thraulodes mexicanus Ulmer, 1920; Needham & Murphy, 1924; Kimmins, 1960;
Demoulin, 1963; Traver & Edmunds, 1967; Edmunds, Jensen & Berner 1976;
McCafferty&LugoOrtiz1996.
ThraulodesmucuyChacon&Domínguez1999(Imago)(Venezuela)
Thraulodes mucuy Chacon & Domínguez 1999; Segnini, Chacon & Domínguez, 2003;
Domínguez,Molineri,Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
ThraulodesosirisTraver&Edmunds1967(Imagoe)(Equador)
Thraulodes osiris Traver & Edmunds 1967; Hubbard, 1982; Domínguez, Molineri,
Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
Thraulodes pacaya McCafferty, Baumgardner & Guenther, 2004 (ninfa)
(MéxicoeNicaragua)
Thraulodessp.CAllen&Brusca,1978
Thraulodes pacayaMcCafferty, Baumgardner& Guenther, 2004; Meyer, Baumgardner
&McCafferty,2008.
ThraulodespackeriTraver&Edmunds,1967(Imago e,ninfa)(CostaRica,
Honduras,GuatemalaeNicaragua)
ThraulodespackeriTraver&Edmunds,1967;Edmunds,Jensen&Berner,1976;Allen&
Brusca, 1978; McCafferty, 1985; LugoOrtiz, 1996; McCafferty, Baumgardner &
Guenther,2004;Meyer,Baumgardner&McCafferty,2008
ThraulodespapilionisTraver&Edmunds1967(Imago)(Colombia)
ThraulodespapilionisTraver &Edmunds1967; Hubbard,1982; Domínguez& Molineri
42
&Pescador&Hubbard&Nieto2006.
ThraulodespapilionesZuñiga,Molineri&Domínguez,2004
ThraulodespaysandensisTraver1964(Imagoe)(ArgentinaeUruguai)
Thraulodes paysandensis Traver 1964; Traver & Edmunds, 1967; Domínguez, 1987;
Hubbard, Domínguez & Pescador, 1992; Domínguez, Hubbard & Pescador, 1994;
Domínguez&Molineri&Pescador&Hubbard&Nieto2006.
ThraulodesprolongatusTraver ,1946(Imagoe)(CostaRicaeNicara gua)
Thraulodes prolongatus Traver, 1946; Traver & Edmunds, 1967; Edmunds, Jensen &
Berner,1976;McCafferty&LugoOrtiz,1996;Meyer,Baumgardner,2008.
ThraulodesquevedoensisFlowers,2009(Imagoe,ninfa)(Equador)
ThraulodesquevedoensisFlowers,2009.
ThraulodesregulusTraver&Edmunds1967(Imago)(Peru)
ThraulodesregulusTraver &Edmunds 1967;Hubbard,1982;Domínguez&Molineri&
Pescador&Hubbard&Nieto2006.

Thraulodes schlingeri Traver & Edmunds 1967 (Imago e , ninfa) (Brasil e
Peru)
Thraulodes schlingeri Traver & Edmunds 1967; Hubbard, 1982; Ferreira & Froehlich,
1992; Lopez, Froehlich & Domínguez, 2003; Salles, DaSilva,Hubbard & Serrão, 2004;
Domínguez&Molineri&Pescador&Hubbard&Nieto2006.
ThraulodesspangleriTraver&Edmunds,1967(Imagoe)(AméricaCentral
eMéxico)
Thraulodes spangleri Traver & Edmunds, 1967; Edmunds, Jensen & Berner, 1976;
McCafferty&LugoOrtiz,1996.
ThraulodesspeciosusTraver,1934(Imagoe,ninf a)(EUAeGuatemala)
Thraulodes speciosus Traver, 1934; Needham & Traver & Hsu, 1935; McDunnough,
43
1942; Traver & Edmunds 1967; Koss, 1968; Mayo, 1969; Edmunds, Jensen & Berner,
1976; Allen & Brusca, 1978; Allen & Murvosh, 1987; LugoOrtiz & McCafferty, 1995;
LugoOrtiz & McCafferty, 1996; McCafferty & LugoOrtiz, 1996; McCafferty,
Baumbgardner&Guenther,2004
=Thraulodesarizonicus(LugoOrtiz&McCafferty1995)
ThraulodessubfasciatusNavás,1934(Subimago)(Brasil)
Thraulodes subfasciata Navás, 1934; Traver & Edmunds, 1967; Hubbard, 1982;
Domínguez,Molineri,Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
ThraulodessubfasciatusSalles,DaSilva,Hubbard&Serrão,2004.
ThraulodestelegraphicusNeedham&Murphy,1924(Imagoe)(Peru)
Thraulodes telegraphicus Needham & Murphy 1924; Navás, 1935; Traver, 1946;
Edmunds, 1950; Traver & Edmunds 1967; Hubbard, 1982; Domínguez, Molineri,
Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
=ThraulodesplicatusNeedham&Murphy,1924
ThraulodestenulineusLugoOrtiz&McCafferty,1996(ninfa)(México)
ThraulodestenulineusLugoOrtiz&McCafferty,1996;
=Thraulodessp.DAllen&Brusca,
1978
ThraulodestraveraeThew,1960(Imagoe,ninfa)(BrasileUruguai)
ThraulodestraveraeThew1960;Traver&Edmunds,1967;Webb,1980;Salles, DaSilva,
Hubbard&Serrão,2004;Domínguez,Molineri,Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
ThraulodestrijunctusBanks,1918(Imagoe)(Peru)
Thraulustrijuncta
Banks1918
ThraulodestrijunctaUlmer,1943;Traver,1960
Thraulodes trijunctus Thew, 1960; Traver & Edmunds, 1967; Hubbard & Peters, 1981;
Hubbard,1982;Domínguez,Molineri,Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
ThraulodesulmeriEdmunds,1950(Imagoe)(Brasil)
44
Thraulodes ulmeri Edmunds, 1950; Traver & Edmunds, 1967; Edmunds, Jensen &
Berner, 1976; Hubbard, 1982; Salles, DaSilva, Hubbard & Serrão, 2004; Domínguez,
Molineri,Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
ThraulodesvalensEaton,1892(Imagoe)(Panamá)
ThraulusvalensEaton,1892
Thraulodes valens Ulmer, 1920; Needham & Murphy, 9124; Kimmins,1934; Ulmer,
1943;Traver&Edmunds,1967;Edmunds,Jensen &Berner,1976;McCafferty&Lugo
Ortiz,1996.
ThraulodesvenezuelanaUlmer1943(Imago)(Venezuela)
ThraulodesvenezuelanaUlmer1943;Traver&Edmunds,1967;Hubbard,1982;Segnini,
Chacon&Domínguez,2003;Domínguez,Molineri,Pescador,Hubbard&Niet o,2006.
ThraulodesvitripennisBlanchard(inGay)1851(Subimago)(Chile)
Ephemera(Cloe)vitripennisBlanchard1851.
CloenvitripenneEaton,1871
Thraulus(?)vitripenneEaton,1883
EphemeravitripennisPorter,1899.
Thraulodes vitripennis Ulmer, 1920 comb. n.; Ulmer, 1920; Ulmer, 1921; Needham &
Murphy,1924;Lestage,1924;Lestage,1931;Traver&Edmunds,1967;Hubbard,1982;
Domínguez,Molineri,Pescador,Hubbard&Nieto,2006.
Thraulodes zonalis Traver & Edmunds, 1967 (Imago e ninfa) (Nicaragua e
Panamá)
ThraulodeszonalisTraver&Edmunds,1967;Edmunds,Jensen&Berner,1976;Allen&
Brusca,1978;McCafferty,1985; McCafferty & LugoOrtiz,1996;D omínguez,Molineri,
Pescador,Hubbard&Nieto,2006;Meyer,Baumgardner&McCafferty,2008.
45
Figura 917. Placas subgentiais de Thraulodes. 9T. bolivianus; 10T. bomplandi; 11T. centralis; 12T.
cryptodrilus;13T.consortis;14T.daidaleus;15T.flinti;16T.furficulus;17T.gonzalesi.
46
Figura 1826. Placassubgenitais. 18 T. guanare; 19 T. hilaris; 20 T.shilaroides; 21 T. liminaris; 22 T.
laetus;23T.mexicanus;24‐T.lepidus;25T.marreroi;26T.lunatus.
47
Figura 2735. Placas subgenitais. 27T. mucuy; 28T. packeri; 29T. schlingeri; 30T. osiris; 31T.
paysandensis;32T.prolongnatus;33T.regulus;34T.quevedoensis;35T.splangeri.
48
Figura 3642. Placas subgenitais. 36T. speciosus; 37T. venezuelana; 38T. valens; 39T. traverae; 40T.
zonalis;41T.ulmeri;42T.trijunctus.
49
Figura 4349. Placas subgenitais. 43T. basimaculatus; 44T. conchuanensis; 45T. ephippiatus; 46T.
itatiajanus;47T.papilionis;4849T. telegraphicus.
50
Figura 5058. Asas. 50T. basimaculatus; 51T. bolivianus; 52T. bomplandi;53T. brunneus ; 54T.
conchunaensis;55T.consortis;56T.ephippiatus;57T.centralis;58T.furficulus.
51
Figura5967.Asas.59T.gonzalesi;60T. guanare;61T.hilarioides; 62T.irretitus;63T. humeralis;64T.
itatiajanus;65T.liminaris;66T. marreroi;67T.mucuy.
52
Figura6870.Asas.68T.packeri;69T.trijunctus;70T.zonalis.
5.3.3.Sinonimias
ThraulodeslepidusTraver,1884[=ThraulodescryptodrilusNieto&Domínguez,2001,n.
syn.]
Esta espécie descrita por Nieto e Domínguez (2001) baseada em material
colecionado no Mexico em 1981 é sinonimizada com T. lepidus, em resultado da
análisedosholótiposedaanálisecladistica.
5.3.4.Descriçõesdenovas
espécies
Thraulodessp1sp.n.Mariano&Froehlich
(Figura71)
imago.Tamanho:corpo6.4mm;asasanteriores:4.9mm;asasposteriores:0.8mm.
Coloração geral: marrom. Cabeça: marrom escuro; antenas claras, com pedicelo de
basemarrom;ocelosbrancoscombasepreta.rax:marromclarodorsalmente,coma
rego ventral
marrom; Asas anteriores (Figura 71A): área Costal e Subcostal da asa
anteriortranslúcidas;semveiastransversaisbasaisatéabulanaáreaCostal,e16veias
transversais distalmente à bula; asas posteriores (Figura 71B): hialinas com 6 veias
53
transversais.Pernas:pernasanteriores,medianaseposteriores:amareladas,apenasos
1/3 dos mures tingidos de marrom apicalmente com uma faixa preta na base da
manchamarrom.Abdomen(Figura71E):todostergoscomcormarrompredominante;
tergo I marrom com uma faixa preta na rego anterior; tergo II marrom com uma
pequena mancha marrom escura na região anterior; tergos IIIV marrons, rego
anterior com uma mancha clara, duas manchas escuras unilaterais medianas e
manchasescuraslateraisanteriores;tergosVIVIIImarronscomduasfaixasunilaterais
medianaseuma faixaescuraposterior;tergosIXXmarrons;esternostranslúcidoscom
laterais escuras. Genitália (Figura 71CD): placa subgenital marrom, com uma grande
projeçãomediana;pênisdividido2/3apicalmente,comaregiãoapicolateralformando
uma orelha; espinho longo e robusto; bolsa lateral presente; com dobra lateral na
margeminternaeregiãolateralventraldopênistingidadepreto.
Material:Holótipo: Brasil,NovaXavantina MT, FazendaJerusalém,Cachoeira,05
xii2006,Calor,A.R.;Mariano,R.&Mateus,S.
Discussão:asimagos machos de T. sp1podemser separadosdas demaisespéciesde
Thraulodes pela seguinte combinação de caracteres:1) Base da membrana da área
Costal até a bula sem veias tranversais; 2) área Costal e Subcostal da asa anterior
translúcidas;3)1faixanomuranterior;4)padrãodecoloraçãoabdominalescuroem
todos segmentos; 5) pênis com a região apicolateral formando uma orelha; espinho
longoerobusto;bolsalateralpresente;comdobralateralnamargemlateralinterna.
54
Figura71AE.Thraulodessp1.Aasaanterior;Basaposterior;Cplacasubgenital(vistaventral);Dpênis
(vistaventral);Epadrãodecoloraçãoabdominal(IIX).
Thraulodessp2sp.n.
(Figura72)
imago.Tamanho:corpo,6.0mm;asasanteriores:5.2mm;asasposteriores:1.2mm.
Coloração geral: marrom. Cabeça: marrom; antenas marrom claro, com pedicelo e
escapo marrom; ocelos brancos com aneis basais pretos. rax: marrom claro
dorsalmente,comaregiãoventralmarrom.Asasanteriores(Figura72A):áreaCostale
Subcostaldaasaanteriortranslúcidas,semveiastransversaisbasaisatéa bulanaárea
Costal e 812 veias transversais distalmente à bula; asas posteriores (Figura 72B):
hialinas com uma mancha escura na base. Pernas: amareladas; mur de todas as
55
pernas com duas manchas marrons, uma apical e outra situada a ¾ do ápice, e com
umafaixapretaa1/3doápice.Abdômen:marrom;tergosIVcomduasmanchaspretas
na rego anterolateral e região posterior de todos tergos com uma mancha
avermelhada; em vista lateral com uma faixa translúcida; tergos VIIX marrons com a
rego posterior tingida de vermelho; esternos translúcidos com lateral escura.
Genitália: projeção da placa subgenital pequena; pênis com a rego apicolateral não
formando uma orelha; espinho apical longo e delgado; bolsa lateral presente; sem
dobralateralnamargeminterna.
Material:Holótipo: Brasil,Goiás,Chapada dosVeadeiros,RibeirãoÁguaFria,16xii
2006,Bispo,P.C . ; Yokoyama,E.&Paciência,G.
Discussão:asimagosmachos de T. sp2 podem ser separados das demais espéciesde
Thraulodes pela seguinte combinação de caracteres: 1) Base da membrana da área
Costal até a bula sem veias tranversais; 2) área Costal e Subcostal translúcidas; 3) 1
faixa no mur anterior; 4) padrão de coloração abdominal; 5) pênis com a rego
apicolateralnão formando uma orelha; espinho apical longoe delgado; bolsa lateral
presente;semdobralateralnamargeminterna.
56
Figura 72. Thraulodes sp2. Aasa anterior; Basa posterior, com mesma escala da asa anterior e
ampliada;Cpadrãodecoloraçãoabdominal(IVII);Dgenitália;Epênis(vistaventral).
Thraulodessp3sp.n.
(Figura73)
imago.Tamanho:corp:9.3mm;asasanteriores:8.5mm;asasposteriores:1.6mm.
Coloraçãogeralmarrom.Cabeça:negra;antenasmarromclaras,compedicelomarrom
e escapo clara; ocelos brancos com anéis basais pretos. Olhos inferiores pretos e
superiores marrom amarelados. rax: pro, meso e metanoto marrom amarelado;
prosterno e metasterno marrom e mesosterno marrom amarelado. Asas: Asas
anteriores:áreaCostaleSubcostaldaasaanteriortranslúcidas;semveiastransversais
basais até a bula na área Costal, 15 veias transversais distalmente à bula; asas
posteriores:hialinas.Pernas:amareladas,apenas1/3dosmurestingidosdemarrom
57
apicalmente com uma faixa preta na base da mancha marrom. Abdomen: tergos
abdominais IVI translúcidos, tergos VIIX marrom amarelados; tergos IIVI com duas
manchas pretas situadas medianamente, uma de cada lado da linha mediana e duas
manchas pretas anterolaterais; esternos translúcidos. Genitália: placa subgenital com
projeção grande e delgada; pênis com a região apicolateral formando uma orelha;
espinho apical longo e delgado; bolsa lateral presente; sem dobra lateral na margem
interna.Filamentoscaudais:duasvezesotamanhototaldocorpo,todosossegmentos
brancoscombasenegra.
Material:Holótipo: Brasil,Iporanga SP, ParqueEstadualIntervales,Rio doCarmo,
próximoaoCórregoInferno,29xi2002,Melo,A.S.;Blahnik,R.ePrather,A.
Discussão: as imagos machos de T. sp3 podem ser separadasdasdemaisespécies de
Thraulodes pela seguinte combinação de caracteres: 1) Base da membrana da área
Costalatéabulasemveiastranversais;2)áreaCostaleSubcostaltranslúcidas;3)uma
faixa no mur anterior; 4) tergos abdominais IVI translúcidos, VIIX marrom
amarelados;5)pêniscomaregiãoapicolateralformandoorelha;espinhoapicallongoe
delgado;bolsalateralpresente;semdobralateralnamargeminterna.
58
Figura 73. Thraulodes sp3 sp. n. Aasa anterior; B asa posterior; Cplaca subgenital; Dpênis (esquerdo
vistaventral;direitovistadorsal);Epadrãodecoloraçãoabdominal(segmentosIVIII).
Thraulodessp4sp.n.
(Figura74)
imago.Tamanho:corpo,5.5mm;asasanteriores:6.7mm;asasposteriores:1.3mm.
Coloração geral: marrom. Cabeça: negra; antenas marrom claras, com pedicelo
marromeescapoclara;ocelosbrancoscomanéisbasaispreto.Olhosinferiorespret os
esuperioresmorromamarelados.rax:pro,meta
emesonotomarromclaro;esternos
brancosopacos.Asas:Asasanteriores:áreaCostaleSubcostaltranslúcidas,base com
uma mancha escura; base da membrana da área Costal até a bula sem veias
tranversais; 13 veias transversais distalmenteà bula; asas posteriores: hialinas com
uma mancha escura próxima à base. Pernas: claras com ápice tingido de marrom
separadoporumafaixapreta.Abdomen:tergoImarrom;tergosIIVItranslúcidoscom
duasmanchasanterolaterais;tergosVIIXmarrons;eaindaumafaixaescuranarego
posteriornostergosVIX;esternosIVItranslúcidoseesternosVIIXmarrons.Genitália:
59
placa subgenital com projeção grande e robusta; pênis com a região apicolateral não
formandoumaorelha;espinhoapicalcurtoesinuoso;bolsalateralausente;semdobra
lateralnamargeminterna.Filamentoscaudais:quebrados.
Material:Holótipo:CostaRica,Puntarenas,RioGuineal,830m,22xi86,Holzenthal,
Morse&Fasth. Parátipos:8,mesmodadosdoholótipo.2Panama, Prov. Chiriqui,
Fortuna,14xii1977,Flowers,R.W.
Discussão:asimagosmachos de T. sp4 podem ser separados das demais espéciesde
Thraulodes pela seguinte combinação de caracteres: 1) Base da membrana da área
Costalatéabulasemveiastranversais;2)áreaCostaleSubcostaltranslúcidas;3)uma
faixa no mur anterior; 4) tergos abdominais IIVI translúucidos, VIIX marrons; 5)
pênis com a região apicolateral não formando uma orelha; espinho apical curto e
sinuoso;bolsalateralausente;semdobralateralnamargeminterna.
60
Figura74.Thraulodessp4sp.n.Aasaanterior;B‐asaposterior;Cpênis;Dplacasubgenital;Epênisem
vistalateral;Fcoloraçãoabdminal(IIIX).
5.4.AnáliseCladística
5.4.1.MatrizeListadecaracteres
Umalistade caracteresdeimagos foipreviamenteelaborada,num totalde31
caracteres,sendo 30bináriose 1multiestado.A maioriadoscaracteres édegenitália
(17)easas(10). Para as análises foram usadas apenas caracteres de imagos
machos devido ao pouco númerode espécies que possuem ninfaefêmeas descritas.
Oscaracteresdeimagosforammodificadosenovosadicionados,apartirdamatrizde
dados elaborada por Flowers e Domínguez (1991) em uma análise cladística para o
complexoHermanella,ondeThraulodesfoiusadocomoumdosgruposexternos.
Na análise alguns neros do grupo Hermanella entre outros foram usados
61
como grupo externo: Askola froehlichi, Farrodes carioca, Hermanella guttata,
Hydrosmilodon gilliesae, Hylister plaumanni, Leentvaaria palpalis, Massartella brieni,
Needhamella ehrhardti, Paramaka convexa, Simothraulopsis demerara, Traverella
bradleyi,Traverellacalingastensis,Ulmeritoidesuruguayensis.
ListadeCharacters
1. ForquilhadaveiaMA:(0)assimétrica;(1)simétrica.
2. ForquilhadaveiaMP:(0)ausente;(1)presente.
3. Veiastransversaisat éabula:(0)presentes;(1)ausentes.
4. ÁreaCeSc(Asaanterior):(0)sempigmentação,translúcida;(1)pigmentada.
5. CordapigmentaçãodaáreaCeSc:(0)amarelada;(1)tingidademarrom.
6. OrigemdaveiaICu2:(0)basalmenteàCuP;(1)livre.
7. VeiaMPdasasasposteriores:(0)nãobifurcada;(1)bifurcada.
8. Projeçãocostaldasasasposteriores:(0)acuminada;(1)arredondada.
9. VeiaScterminando(asapost):(0)veiatransversalpróximaàprojeçãocostal;
(1)costal.
10. Manchasnofêmuranterior:(0)ausente;(1)presente.
11. Númerodemanchasnofêmuranterior:(0)1;(1)2;(2)3.
12. Unhastarsais:(0)diferentes;(1)iguais.
13. Padogeraldecoloraçãoabdominal:(0)nãotranslúcida;(1)translúcidanos
primeiros(segmentosIIVI).
14. Projeçãonaplacaestiligera:(0)ausente;(1)presente.
15. Númerodeprojeçõesnaplacasubgenital:(0)1;(1)2.
16. Formadaprojeçãodaplacasubgenital:(0)estreita;(1)larga.
17. Posiçãodaprojeçãonaplacasubgenital:(0)lat eral;(1)medial.
18. Formadoápicedaprojeção:(0)pontiagudo;(1)arredondado.
19. Soquetesdosfórceps:(0)nãofusionados;(1)fusionados.
20. Bolsalateral:(0)ausente;(1)presente.
21. "Orelha":(0)ausente;(1)presente.
22. Comprimentodopênis:(0)curto;(1)longo.
23. Divisãoapicaldopênis:(0)totalmentedividido;(1)parcialmentedividido.
24. Pênisdivididoapicalmente:(0)de1/2a1/3;(1)de3/4a4/5.
62
25. Basedopênisabruptamenteinchada:(0)ausente;(1)presente.
26. Espinhosapicaisnopênis:(0)ausente;(1)presentes.
27. Formadosespinhos:(0)longo;(1)curto.
28. Formadoespinho:(0)robusto;(1)delgado.
29. Formadosespinhos:(0)curvo;(1)reto.
30. Dobralateralnamargemexterna:(0)ausente;(1)presentes.
31. VeiasligadasaRs:(0)nãoformandotriângulos;(1)formandotriângulos.
63
Matrizdedados
Tabela1.Matrizdecaract eres
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15
Simothraulopsisdemerara 0 1 0 0‐1 0 0 1 0 ? 0 1 0 ?
T.basimaculatus 1 1 0 1 1 1 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.bolivianus 1 1 1 0‐1 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.bomplandi 1 0 0 1 0 1 1 1 0 1 1 0 1 1 0
T.brunneus 1 ? 0 0‐1 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.centralis 1 ? 1 0‐1 1 1 0 1 1 0 1 1 0
T.cochunaensis 1 ? 1 0‐1 1 0 0 1 0 0 1 1 0
T.consortis 1 0 0 1 1 1 1 1
0 1 1 0 0 1 0
T.cryptodrilus 1 0 0 1 0 1 1 1 0 1 2 0 1 1 0
T.daidaleus 1 ? 1 0‐1 1 1 0 1 1 0 1 1 0
T.ephippiatus 1 0 1 1 1 1 1 0 1 1 1 0
1 1 0
T.flinti 1 0 0 0‐1 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.furficulus 1 0 0 1 0 1 1 1 0 1 1 0 1 1 0
T.gonzalesi 1 0 0 0‐1 1 1 0 1 0 0 0 1 0
T.guanare
1 0 0 0‐1 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.hilaris 1 0 0 1 1 ? 1 1 0 1 1 0 1 1 0
T.hilaroides 1 0 0 1 0 ? 1 1 0 1 ? 0 0 1 0
T.itatiajanus 1 0 0 1 0 1 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.laetus ? 0 1 0‐? 1 1 0 1 1 0 ? 1 0
T.lepidus 1 0 0 1 0 1 1 1 0 1 1 0 1 1 0
T.liminaris 1 0 0 1 1 0 1 1 0 1 1 0 1 1 0
T.lunatus 1 0 0 0‐1 1 1 1 1 0 0 1 1 0
T.marreroi 1 0 1 0‐? 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.mexicanus 1 0 1 ? ? ? 1 1 0 1 1 0 1 1 0
T.mucuy 1 0 0 0‐? 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.osiris 1 ? 1 0‐? 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.packeri 1 0 0 0‐? 1 1 0 1 1 0 0 1 0
T.papilionis 1
0 1 0‐? 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.paysandensis 1 0 1 0‐1 1 1 0 1 1 0 1 1 0
T.quevedoensis 1 0 0 0‐1 0 1 0 1 0 0 1 1 0
T.prolongnatus 1 0 0 0‐1 1 1 0 0 ? 0 1 1 0
T.regulus 1 0 0 0‐1 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.schlingeri 1 0 1 0‐1 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.spangleri 1 ? ? ? ? ? 1 1 0 1 0 0
1 1 0
T.speciosus 1 ? ? ? ? ? 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.telegraphicus ? 0 1 0‐1 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.traverae 1 0 0 0‐1 1 1 0 1 1 0 1 1 0
T.trijuncta 1 0 0 0‐1 1 1 0 1 1 0 1 1 0
T.ulmeri 1 0 0 0‐0 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.valens 1 0 0 ? ? ? 1 1 0 1 1 0 1 1 0
T.ve nezuelana ? 0 0 1 1 ? 1 1 0 1 1 0 1 1 0
T.zonalis 1 0 1 1 1 ? 1 1 0 1 1 0 1 1 0
T.sp1 1 0 1 0‐1 1 1 0 1 0 0 0 1 0
T.sp2 1 0 1 0‐1 1 1 0 1
0 0 1 1 0
T.sp3 1 0 1 0‐1 1 1 0 1 0 0 1 1 0
T.sp4 1 0 0 0‐1 1 0 0 1 0 0 1 1 0
Needhamellaehrhardti ? 1 1 ? ? ? 0 0 0 1 ? 0 0 1 1
Hydrosmilodongilliesae ? 1 0 ? ? ? 0 0 0 1 ? 0 0 1 1
Ulmeritoidesuruguayensis 1 1 1 0‐0 ? 1 1 1 ? 0 0 0 ?
Paramakaconve xa 0 1 0 0‐0 0 0 0 1 0 0 1 1 0
Hermanellaguttata 0 1 0 1 1 1 0 1 1 0 ? 0 0 1 1
Leentvaariapalpalis 0 1 0 0‐1 0 0 0 0 ? 0 0 1 0
Hylisterplaumanni 0 1 0 1 1 1 0 1 0 1 0 0 0 0 ?
Traverellabradleyi 0 1 0 ? ? ? 0 0 0 1 ? 0 ? 1 1
Traverellacalingastensis 0 1 0 1 0 ? 0 0 0 0 ? 0 1 1 1
Massartellabrieni 1 ? 0 0‐0 1 1 1 0 ? 1 0 0 ?
Askolafroehlichi 0 1 0 0‐0 ? ? ? 0 ? 0 0 0 ?
Farrodescarioca 0 1 1 0‐1 0 0 0 0 ? 0 0 1 1
64
Tabela1.Continuação
1617 1819 20 2122 2324 2526 272829 30 31
Simothraulopsisdemerara ? ? ? 0 0 0 0 1 0 0 1 0 1 1 0 0
T.basimaculatus 0 1 1 1 0 0 1 1 1 1 1 1 0 1 0 0
T.bolivianus 0 1 1 1 1 0 0 1 1 1 1 1 0 1 1 0
T.bomplandi 0 1 1 1 1 1 0 ? ? 1 1 1 1 1 1 0
T.brunneus ? 1 1 1 0 1 0 ? ? 1 1 0 1 1 1 0
T.centralis 0 1 1 1 1 0 0 1 1 1 1 0 1 1 1 0
T.cochunaensis 0 1 1 1 0 0 1 1 1 1 1 1 0 0 1
0
T.consortis 0 1 1 1 0 1 0 1 1 1 1 1 0 1 1 0
T.cryptodrilus 1 1 1 1 1 0 0 1 1 1 1 0 1 1 1 0
T.daidaleus 0 1 1 1 0 1 0 1 0 1 1 0 1 1 1 0
T.ephippiatus 0 1 1 1 0 0 1 1 0 1 1 1 0 1 1 0
T.flinti 0 1 1 1 0 1 0 1 1 1 1 0 1 1 0 0
T.furficulus 0 1 1 1 1 1 0 0‐1 1 1 0 1 1 0
T.gonzalesi 0 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 0 0 1 0 0
T.guanare 0 1 1 1 1 1 0 0‐1 1 0 0 1 1 0
T.hilaris 1 1 1 1 0 0 0 1 1 1 1 1 1 1 1 0
T.hilaroides 1 1 1 1 0 1 0 1 1 1 1 1 0 1 1 0
T.itatiajanus 0 1 1 1 0 0 1 1 1 1 1 0 0 1 0 0
T.laetus 1 1 1 1 0 1 0 1 1 1 1 1 1 1 ?
0
T.lepidus 1 1 1 1 1 0 0 1 1 1 1 0 1 1 1 0
T.liminaris 0 1 1 1 0 1 0 0‐1 1 0 1 1 1 0
T.lunatus 0 1 1 1 1 1 0 1 0 1 1 1 1 1 0 0
T.marreroi 1 1 1 1 1 0 0 1 1 1 1 1 1 0 ? 0
T.mexicanus 0 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 0 1 1 1 0
T.mucuy 1 1 1 1 1 1 0 0‐1 1 1 0 1 1 0
T.osiris 0 1 1 1 1 0 0 1 1 1 1 1 1 1 ? 0
T.packeri 0 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 1 1 1 1 0
T.papilionis 1 1 1 1 0 1 1 0‐1 1 0 0 1 ? 0
T.paysandensis 1 1 1 1 1 0 0 1 1 1 1 0 1 1 ? 0
T.quevedoensis 1 1 1 1 0 0 0 0‐1 1 1 1 1 1 0
T.prolongnatus 0 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 0 1 1 ? 0
T.regulus 1 1 1 1 1 0 0 1 1 1 1 0 0 1 ? 0
T.schlingeri 0 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 0 0 0 ? 0
T.spangleri 1 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 1 1 1 1 0
T.speciosus 0 1 1 1 0 1 0 1 0 1 1 1 1 1 1 0
T.telegraphicus 1 1 1 1 0 1 1 1 1 1 1 0 1 1 ? 0
T.traverae 0 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 0 1 1 ? 0
T.trijuncta 0 1 1 1 1 1 0 0‐1 1 1 1 1 ? 0
T.ulmeri 0 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 1 1 1 ? 0
T.valens 1 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 1 1 1 0 0
T.ve nezuelana 0 1 1 1 0 1 0 1 1 1 1 1 1 1 ? 0
T.zonalis 0 1 1 1 1 1 0 ? ? 1 1 1 ? 1 1 0
T.sp1 1 1 1 1 1 0 0 1 0 1 1 0 1 1 1 0
T.sp2 0 1 1 1 1 1 0 1 0 1 1 0 1 0 1 0
T.sp3 0 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 0 1 1 1 0
T.sp4 0 1 1 1 0 0 0 0‐1 1 1 0 0 0 0
Needhamella
ehrhardti 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 1 0 0 0
Hydrosmilodongilliesae 0 0 1 0 0 1 0 1 0 0 1 1 1 1 0 0
Ulmeritoidesuruguayensis ? ? ? 0 0 0 1 0‐0 0 ? ? ? 0 1
Paramakaconve xa 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 1 1 1 0 0 0
Hermanellaguttata 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 1 1 0 0 0 0
Leentvaariapalpalis 1 1 1 0 0 0 0 0‐0 1 0 0 0 0 0
Hylisterplaumanni ? ? ? 0 0 0 0 1 0 0 1 1 0 ? 0 0
Traverellabradleyi 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 1 1 0 0
Traverellacalingastensis 0 1 1 0 0 0 0 1
0 0 1 0 1 1 0 0
Massartellabrieni ? ? ? 0 0 1 1 1 1 0 0 ? ? ? ? 0
Askolafroehlichi ? ? ? 0 0 0 1 0‐0 0 ? ? ? ? 0
Farrodescarioca 1 0 1 0 0 0 1 1 1 0 1 0 0 1 0 0
65
5.5.Cladogramas
5.5.1.Pesagemigualdoscaracteres
5.5.1.1.Buscatradicional
Aanáliseda matriz dedadosutilizandopesagem igual dos caracteresresultou
em10topologiasigualmenteparcimoniosas(Figuras7686)comcomprimentode138
passos,CI=0.23,RI=0.69eRC=0.16.
O consenso estrito resultante dessas 10 topologias (Figura 86) mostra a
estabilidadedealgunsclados(T.sp2,T.schlingeri)(T.telegraphicus,T.papilionis)(T.
speciosus,T.lunatus)(T.quevedoensis,T.mucuy)(T.hilaroides,T.consortis)(T.flint,T.
brunneus)(T.basimaculatus(T.sp4(T.ephippiatus,T.conchunaensis)))(T.centralis(T.
paysandensis,(T.lepidus,T.cryptodrilus)(T.sp1(T.marreroi(T.osíris,T.bolivianus)))))
sendo que as demais espécies (T. zonalis, T. venezuelana, T. valens, T. ulmeri, T.
trijuncta,T.traverae,T.spangleri,T.regulus,T.prolongnatus,T.packeri,T.mexicanus,
T.liminaris, T.laetus, T.itatiajanus, T.hilaris, T.guanare,T.gonzalesi, T.furficulus, T.
daidaleus, T. bomplandi, T. sp3) são apresentadas em uma politomia. A monofilia do
gêneroThraulodesfoicorroboradanaanálisecompesagemigualdoscaracteres.
66
Figura76.Topologia1resultantedaanálisecompesagemigualdoscaracteres(abarra
indicaogêneroThraulodes).
67
Figura77.Topologia2resultantedaanálisecompesagemigualdoscaracteres(abarra
indicaogêneroThraulodes).
68
Figura78.Topologia3resultantedaanálisecompesagemigualdoscaracteres(abarra
indicaogêneroThraulodes).
69
Figura79.Topologia4resultantedaanálisecompesagemigualdoscaracteres(abarra
indicaogêneroThraulodes).
70
Figura80.Topologia5resultantedaanálisecompesagemigualdoscaracteres(abarra
indicaogêneroThraulodes).
71
Figura81.Topologia6resultantedaanálisecompesagemigualdoscaracteres(abarra
indicaogêneroThraulodes).
72
Figura82.Topologia7resultantedaanálisecompesagemigualdoscaracteres(abarra
indicaogêneroThraulodes).
73
Figura83.Topologia8resultantedaanálisecompesagemigualdoscaracteres(abarra
indicaogêneroThraulodes).

74
Figura84.Topologia9resultantedaanálisecompesagemigualdoscaracteres(abarra
indicaogêneroThraulodes).
75
Figura 85. Topologia 10 resultante da análise com pesagem igual dos caracteres (a
barraindicaogêneroThraulodes).
76
Figura 86. Consenso estrito das 10 topologias resultantes da análise com pesagem
igualdoscaracteres(abarraindicaogêneroThraulodes).
77
5.5.1.2.“NewTechnology
A análise com “New Technology” do TNT resultou em duas topologias
igualmenteparcimoniosas,com138passoscada,comCI=0.23,RI=0.69eRC=0.16.
As duas árvores apresentaram a mesma relação entre as espécies com diferença nas
sinapomorfiasdo02(figuras87),bolsalateralecomprimentodopênis.
Dentro do gênero o clado ((T. telegraphicus, T. papilionis) (T.itatiajanus (T.
basimaculatus(T. sp4(T.ephippiatus,T. conchunaensis)))))éapresentadocomogrupo
irmão dos demais congêneres. Outro grupo monofilético resultante (T. packeri (T.
trijuncta(T. bomplandi(T.furficulus(T. zonalis(T.liminaris(T.hilaris(T.venezuelana(T.
hilaroides, T. consortis))))))))) foi apresentado como grupo irmão de (T. traverae (T.
prolongnatus ((T. laetus, T. daidaleus) ( T. mexicanus (T. centralis ((T. lepidus, T.
cryptodrilus) (T. paysandensis (T. sp1 (T. marreroi (T. osíris, T. bolivianus)))))))))). Estes
dois clados formam um grupo monofilético sendo grupo irmão as demais spécies de
Thaulodes.
78
Figura87.TopologiaresultantedaanálisecompesagemigualdoscaracterescomNew
TechnologySearch,mostrandoadiferença.
79
5.5.2.Pesagemimplícitadoscaracteres
Asanálisesutilizandopesagemimplícitadoscaracteresforamfeitascomusodo
softwareTNT.Asanálisescomvaloresdeknosvalores300,350e800(figuras8891)
resultaramemtopologiascommenornúmerodepassos,138.Algunspequenosclados
se mantiveram nas topologias supracitadas (Figura 91), enquanto que as demais
espécies oscilam nos cladogramas: (T. centralis ((T. paysandensis (T. lepidus, T.
cryptodrilus)) (T. sp1 (T. marreroi (T. osisris, T. bolivianus))))) (figura 91A); (T.
itatiajanus (T. basimaculatus (T. ephippiatus (T.sp4, T. conchuanensis)))) (figura 91B);
(T.sp3(T. sp2,T.schilingeri))(figura91C);(T.trijuncta((T.furficulus,T.bomplandi)(T.
zonalis (T. liminaris (T. hilaris, T. venezuelana (T. hilaroides, T. consortis)))))) (figura
91D).
80
Figura88.topologiaobtidaaporImpliedWeighting,K=300.

81
Figura89.topologiaobtidaaporImpliedWeighting,K=350.

82
Figura90.topologiaobtidaaporImpliedWeighting,K=800.

83
Figura91.Cladosformadosempesagemimplícitadetrêstopologias.

84
Tabela 2. Número de passos das topologias resultantes das análises com pesagem
implícita utilizando os diferentes valores de k. (entre parênteses quando número de
topologiasémaiorque1)
Valoresdek N
o
depassos Valoresdek N
o
depassos
1 155(2) 35 139
2 155 40 139
3 154 45 139
4 149 50 139
5 147(2) 60 139
6 147 70 139
7 146 80 139
8 144 90 139
9 143(2) 100 139
10 143 150 139
11 142 200 139
12 142 250 139(2)
13 144 300 138
14 140 350 138
15 140 400 139
16 139 450 140(2)
17 140 500 139
18 139 600 139
19 140 700 139(2)
20 140 800 138
25 139 900 140
30 140 1000 140
85
6.Hipótesesdeparentesco
Como demonstrado anteriormente, as diferentes metodologias de pesagem
das análises resultaram em várias árvores filogenéticas diferentes com 138 passos,
porém houve congruência em relação a alguns clados da filogenia das espécies de
Thraulodes. As análises com pesagem igual dos caracteres resultaram em 10 e 2
topologiasigualmenteparcimoniosascombuscastradicionalenovatecnologiadoTNT,
respectivamente; enquanto que o conjunto de análises utilizando pesagem implícita
resultouem3topologias,com138passos,comosvaloresdek300,350e800.
A monofilia do gênero foi corroborada em todas as análises, pesagem igual e
implícita,sendooscaracteresquesustentamamonofiliadeThraulodesosseguintes:
1. ForquilhadaveiaMPausente(caráter2)
2. Manchasnomuranteriorpresentes(caráter10)
3. Pado geral de coloração abdominal translúcida nos primeiros segmentos
(Caráter13)
4. Soquetesdosfórcepsfusionados(caráter19)
5. Basedopênisabruptamenteinchado(caráter25)
Partindo para a análise das hipóteses de relações entre as espécies de
Thraulodes,napesagemigualde caracteresumagrandeincerteza,comopodemos
observar no consenso das topologias, pela politomia da maioria das espécies, com
exceção da resolução de alguns clados (Figura 86). As relações entre as espécies de
Thraulodes ainda não estão totalmente resolvidas, porém alguns clados foram
observados nas análises. Sendo assim não houve uma topologia escolhida, mas sim
estescladosmonofiléticosencontradosempesagemimplícita(Figura91).
O maior grupo encontrado foi: (T. trijuncta (T. furficulus, T. bomplandi (T.
zonalis (T. liminaris (T. hilaris , T. venezuelana, (T. hilaroides, T. consortis))))))
sustentado pelo do carater 23 (0), pênis totalmente dividido. A espécie T. trijuncta
aparececomogrupoirmãodasdemaisespécies,quesãoporsuavezsãosustentadas
pelocaráter4(1)áreaCeScpigmentada;ocladoformadopelasespéciesT.furficulus
eT.bomplandiformamumpolitomiacomogrupo(T.zonalis(T.liminaris(T.hilaris,T.
86
venezuelana,(T.hilaroides, T.consortis)))).OtáxonT.zonalis,grupoirmãodasdemais
espécies deste clado é sustentado pelo presença de bolsa lateral. O clado que T.
liminarisformagrupoirmãocom(T.hilaris,T.venezuelana,(T.hilaroides,T.consortis))
que são sustentados pelo caráter 23 (1) pênis parcialmente divididos. E o grupo (T.
hilaroides, T. consortis) é sustentado pelos caracteres: padrão da geral coloração
abdominalnãotranslúcidaeespinhodopênisrobusto.
Outro clado monofilético é formado por 8 espécies: (T. centralis ((T.
paysandensis (T. lepidus, T. cryptodrilus)) (T. sp1 (T. marreroi (T. osisris, T.
bolivianus))))) sustentado pelo ca rater 20 (0) ausência de bolsa lateral, tendo T.
centralis como grupo mais externo. O clado (T. lepidus, T. cryptodrilus) é sustentado
pelo caráter 3 (0) veias transversais presentes e pelo caráter 4 (1) área C e Sc
pigmentada, como citado anteriormente T. cryptodrilus será sinonimizado com T.
lepidus. Este clado forma um grupo monofilético com T. paysandendsis, sendo grupo
irmão de (T. sp1 (T. marreroi (T. osisris, T. bolivianus))) que é por sua vez sustentado
pelocaráter11(1),duasmanchasnofêmuranterior.EnquantoqueocladoT.marreroi
(T.osisris,T.bolivianus)ésustentadopeloespinhodopênislongo.
Outrosdoisclados sãoT.itatiajanus (T.basimaculatus(T.ephippiatus(T.sp4,
T.conchunaensis))));sendoestecladosustentadopeloscarateres22(1)e4(1)(figura
91B).AsespéciesT.sp4eT.conchuanensisformamumcladosustentadopelaáreaCe
SC da asa anterior sem pigmentação e pela forma curva dos espinhos do pênis.
Enquanto que o outro clado formado por T.sp3, (T. sp2, T. schilingeri)) é sustentado
pelocaráter3(1),veiastransversaisausentesatéabulanaasaanterior(figura91C).
Apesardosprogressosrealizadosporessasanálisesfilogenéticas,notaseque
existemalgunsproblemasnamatrizdedadosemsi.Os altosíndicesde homoplasiae
os baixos índices de consistência de todas as análises feitas são indicativos dos
problemas existentes, alguns deles podendo ser de codificação. Um dos motivos do
altoíndicedehomoplasiaspodeserexplicadopeloconjuntodecaracteresdegenitália
quediferemnas46espécies.Asdiferentescombinaçõesdestesfazemcomquesurjam
diversas vezes dentro das filogenias aumentando este índice. Pom a falta de
caracteres de ninfas na matriz de dados também pode ter uma influência direta na
resolução de alguns clados, sendo este um problema não encontrado em
87
Thraulodes,masemumgrandenúmerodegênerosdeLeptophlebiidaedevidoàfalta
de descrição dos imaturos. Mesmo que plotados os caracteres de ninfas na matriz o
número de “missing data” seria muito grande. Provavelmente as espécies iriam ser
divididasemdoisclados,umdasespéciescomninfasdescritaseoutrodeespéciessem
asninfasdescritas.
Apesar de não ter sido escolhida nehuma topologia como resultado entre
todas as relações das espécies de Thraulodes, os clados anteriormente citados
esclarecemalgumasrelações.Apesardissomuitoqueserfeito,sendooprincipala
descrição dos outros estágios das espécies. Pom isto em alguns casos é inviável
dependendomuitodadificuldadedeacessoaospontosdecoleta.
88
7.Consideraçõesfinais
9 Nopresentetrabalhosãodescritaseilustradascinconovasespécies.Emtodas
as análises essas espécies apresentam proximidade filogenética com os demais
gênerosdeThraulodes,oquedemonstraqueelasdevemserinclusasnogênero;
9 Uma das espécies, Thraulodes cryptodrilus, foi sinonimizada com Thraulodes
lepidusapósanálisedosholótiposecomodemonstradoemtodasasanálisesfeitas;
9 Amonofiliadogênerofoicorroboradaemtodasasanálises;
9 O trabalho ressalta ainda que os imaturos da maioria das espécies ainda
continuamdesconhecidos,exigindoumesforçoespecialparasuadescrição;
9 Emparaleloaestatesealgunstrabalhosforampublicados(anexos).
89
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98
9.Anexos
9.1.Anexo1
AquaticInsects(noprelo)
TwonewspeciesofSimothraulopsisTraver,1947(Ephemeroptera:Leptophlebiidae:
Atalophlebiinae)fromNortheasternBrazil
RodolfoMariano
UniversidadedeSãoPaulo,FaculdadedeFilosofia,CiênciaseLetrasdeRibeirãoPret o. Departamentode
Biologia,LaboratóriodeEntomologiaAquática.Av .dosBandeirantes,3900,MonteAlegre.CEP14040
901.RibeirãoPreto,SP,Brazil.Email:[email protected]
Abstra ct
ThegenusSimothraulopsiscontains3describedspecies,oneofwhichoccursinBrazil.
ThenewspeciesSimothraulopsisdiamantinensissp.n.andSimothraulopsisjaneaesp.
n. are figured and described from males imagines. The main character of these two
newspeciestoseparatedthemfromtheotherscongenersistheforcepssocketfused.
ThematerialwascollectedinBahiaStateinNortheasternBrazil.
Resumo
Onero Simothraulopsiséformadopor 3espéciesdescritas,sendoqueapenasuma
ocorre no Brasil. Duas novas espécies, Simothraulopsis diamantinensis n. sp. e
Simothraulopsisjaneaen. sp.odescritaseilustra das apartir deimagos
machos.O
principalcaráterqueseparaestasduasnovasespéciesdosdemaiscongênereséabase
dos fórceps fundidos. O material é proveniente do Estado da Bahia, Nordeste
Brasileiro.
Keywords.Neotropical;Taxonomy;Mayfly;Leptophlebiidae;Simothraulopsis.
Introduction
In 1947, Traver described Thraulus demerara based in males and females
99
imagines from Guyana and one female from Surinam, but she commented that this
species may not belong to Thraulus. The genus Simothraulopsis was erected by
Demoulin(1966)foronespecies,S.surinamensis,basedonsixnymphsfromSurinam.
Later Dominguez et al. (1997) synonymized the type species. Thus, Simothraulopsis
becomesS.demeraranewcombination,basedintype materialofThraulusdemerara;
nymphs with associated subimagines and imagines of S. surinamensis; nymphs with
associated subimaginesandimaginesof T. demerara fromFrenchGuyana;collections
from the Amazon Basin and the Guiana Shield region of Brazil and Venezuela
(Dominguezetal.1997).
In2007KlugeproposedanewclassificationforLeptophlebiidaewithmanynew
taxaincludingnewsubgenera.InhisworkhemaintainsthegenusSimothraulopsisand
divided it in two subgenera: Simothraulopsis and Maculognathus. The first one is
composedbyS.(Simothraulopsis)demerara(Traver,1947)andthesecondbytwonew
species,S.(Maculognathus)plesiusKluge,2007andS.(M.)sabaloKluge,2007.
During thefieldtripto theStateof Bahia, Northeastern Region of Brazil,male
imagosof twonew speciesofSimothraulopsiswerecollected.The aimof thepresent
paperistopresenttheirdescription.
MaterialsandMethods
The imagos were collected with light trap. The types are deposited in the
followinginstitutions:holotypeinMuseudeZoologia,UniversidadedeSãoPaulo,São
PauloSP,Brazil(MZUSP)andparatypesinInstitutoNacionaldePesquisasdaAmazônia
(INPA), Florida A&M University, Tallahassee, Florida, USA (FAMU) and Instituto
FundaciónMiguel
Lillo,Tucumán,Argentina(IFML).
Taxonomy
GenusSimothraulopsisDemoulin1966
ThraulusTraver,1947;1960
SimothraulopsisDemoulin,1966;Domínguezetal.,1997,2006;Kluge,2007.
Description. the diagnosis given by Traver 1947 can be emended as follow: styliger
plate of imago: 1) forceps sockets fused (forming a single cavity) or not
fused; 2)
100
penes fused basally, divided in apical 1/4 to 1/2 with a spine on apex of each penes
lobe.
Simothraulopsisdiamantinensissp.n.
(Figures15)
Diagnosis.Thisspeciescanbeseparatedfromtheothercongenersbythecombination
ofthefollowingcharacters:1) forcepssockets fused,formingasingle cavity;2)penes
dividedinapical3/4;3)spinesofpenesdirectedtomiddle.
Imago (in alcohol and slide). Length: body, 4.8–5.9 mm; general coloration brown
yellowish. Head: brown; eyes of male meeting on meson of head, upper portion of
eyes brown yellowish and lower portion black; ocelli white with a black ring at base;
antennapalewith scapebrown.Thorax:tergabrownwithsuturesdarkbrown,sterna
brown yellowish with sutures brown. Fore wings (Figure 1): hyaline; crossvein
yellowish;baseofCandScbrownyellowish;forkofveinMPslightlyasymmetric.Hind
wings(Figure2):costalprojectionwelldeveloped,distalmarginformingalmostsquare
angle;inferiorportiontingedofblack.Legs:yellowish;femurbrownyellowishgradually
yellow to apex; tibia and tarsomeres grayish. Abdomen (Figures 34): tergum I black;
tergaIIVIyellowishtranslucidwithaposteriorblackspotandastrongposteriorblack
band;tergaVIIXbrownish;
sternaItranslucid;sternaIIVItranslucidwithposteriorarea
yellow;sternaVIIXdark yellowbrownish.Genitalia:styligerplate(Figure5)yellowish
with forceps brownish; forceps sockets fused, forming a single cavity; penes fused
basally divided in apical 3/4, apex rounded with a spine directed to the middle area.
Terminal
filamentbrownishonbasegraduallypaletoapex.
Nymph.Unknown
Etymology. diamantinensis, named for Parque Nacional Chapada Diamantina, where
thespecieswasfound.
Material. Holotype. imago: Brasil: Bahia: Lençóis, Rio Ribeirão, Parque Nacional
101
Chapada Diamantina, 23x2008, light trap, Calor, A. R.; Mariano, R & Mateus, S.
(MZUSP).Paratype:2imagos,samedataasholotype(INPA);2imagos,samedata
asholotype(FAMU);2imagos,samedataasholotype(IFML)and2imagosBrasil:
Bahia: Barreiras, Rio das Ondas, 15x2008, light trap, Calor, A. R.; Mariano, R &
Mateus,S.(MZUSP);2imagos,samedata.(FAMU)
Figures15.Simothraulopsisdiamantinensis.1forewing;2hindwing(scaleandenlarged);3abdominal
colorpattern,ventralview(segmentsIIVI);4abdominalcolorpattern,lateralview(segmentsIVVI);5
styligerplate(ventralview)
Simothraulopsisjaneaesp.n.
(Figures611)
Diagnosis.Thisspeciescanbeseparatedfromtheothercongenersbythecombination
102
ofthefollowingcharacters:1) forcepssockets fused,formingasingle cavity;2)penes
dividedinapical1/2;3)shapeofpenesslim.
Imago (in alcohol and slide). Length: body, 4.2–4.5 mm; general coloration brown
andtranslucid.Head:brown;eyesofmalemeetingonmesonofhead,upperportionof
eyes brown and lower portion black; ocelli white with a black ring at base; antenna
pale with scape brown. Thorax: terga brown with sutures dark brown, sterna brown
yellowishwithsuturesbrown.Forewings(Figure6):hyaline;crossveinyellowish;base
ofCand Scbrownyellowish;forkofveinMPsymmetric.Hindwings (Figure7):costal
projectionwelldeveloped,distalmarginformingalmostsquareangle;inferiorportion
and base of veins C and Sc black (Figure 7). Legs: brown yellowish; femur brown
yellowishwithapexyellow;tibiawithbasetomiddletingedofblackandfrommiddle
to apex white, tarsum and tarsomeres white. Abdomen (Figures 89): tergum I black;
terga IIIII translucid at apex with a posterior black band; tergum IV translucid with a
small blackband; tergum V translucidat middle to apexand black at middle to base;
terga VIVII black with a translucid small band at apex; terga VIIIX black; sterna IX
translucid with two black spots from the tergum IV increasing until the tergum X.
Genitalia: styliger plate (Figure 11) brown yellowish; forceps sockets fused, forming a
singlecavity;penesfusedbasally(Figures1011)dividedinapical1/2;dorsalportionof
penessclerotized,andventralportionmembranous;slimshape;apexroundedwitha
curvedspinedirectedtooutermargin.Terminalfilamentbrokenandlost.
Nymph.Unknown
Etymology. To Jan Peters, a wonderful person and important mayfly researcher who
kindlyhelpedmeduringmyvisitatFAMUTallahasseeFL.
Material.Holotype: imago:Brasil:Bahia: Barreiras,RiodeJaneiro,CachoeiraAcaba
Vida,14x2008,lighttrap,Calor,A.R.;Mariano,R&Mateus,S.(MZUSP).Paratypes:1
imago,samedataasholotype(INPA);2imagos,samedataasholotype(FAMU);2
imagos,samedataasholotype
(IFML).
103
Figures611.Simothraulopsisjaneae. 6fore wing;7hindwing (scaleand enlarged);8abdominalcolor
pattern,segmentsIIVI(ventralview);9abdominalcolorpattern,segmentsIVVI(lateralview);10penis
(dorsalview);11styligerplate(ventralview)
Discussion.
The fused forceps socket is a character used to identify Thraulodes, and now the
diagnosisofthegenusSimothraulopsisischanged.Thisisthemaincharacterofthese
two new species to separated them from the other congeners. Other important
difference between the species of Simothraulopsis is the shape of penes. In S.
demerara,S.janeae,S.plesiusandS.sabalothepenesaredividedinapicalalmost1/2,
whileinS.diamantinensisitisdividedinapical¾.Moreoverthedirectionoftheapical
spines is different in S. diamantinensis which are directed to middle of styliger plate.
The abdomen is translucidwith black bands in the terga in all species. However, in S.
diamantinensis the abdomen is more yellowish than translucid. The brown posterior
areainthehindwingsissimilarinallspecies,whileinthesetwonewspeciesthebase
104
ofveinsCandScisclearerthanthatinS.demerara.
In the classification proposed by Kluge (2007) the genus Simothraulopsis is
composed by two subgenera. This two new species make part of subgenus
Simothraulopsisduetoacharacteristiccolorpatterninhindwingsandabdomenfound
inthetypespecies.Inbothspeciesdescribedhere,theforkofveinMPnotvarieslike
observedinS.(M)plesiusandS.(M)sabalo(Kluge,2007).
Acknowledgments.
IsincerelythankDr.CleberPolegattoandMsCLuizCarlosdePinhoforallobservation
on the manuscript and plates. I also thank Dr. Sidnei Mateus and Dr. Adolfo Calor
participants of the Northeast expedition supported by Brazilian National Science
ResearchAgency(CNPq).TheauthorreceivedgrantsfromFAPESP(grant:05/538741)
within the BIOTA/FAPESP The Biodiversity Virtual Institute Program
(www.biota.org.br)whilecompletingthepaper.
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9.2.Anexo2
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DescriptionoftheimagoofTraverellalongifronsLugoOrtiz&McCafferty,1996
(Ephemeroptera:Leptophlebiidae)
RodolfoMariano
a
*,JanicePeters
b
&R.WillsFlowers
b
a
‐UniversidadedeSãoPaulo,FaculdadedeFilosofia,CiênciaseLetrasdeRibeirãoPreto.Departamento
deBiologia,LaboratóriodeEntomologiaAquática.Av .dosBandeirantes,3900,MonteAlegre.CEP
14040901.RibeirãoPreto,SP,Brazil.
b
‐Entomology,CESTA,FloridaA&MUniversity,Tallahassee,FL32307,USA
orrodolfomls@gmail.com
Abstra ct
In 1996, LugoOrtiz & McCafferty described the species Traverella longifrons from
Costa Rica based on nymphs previously known under the informal epithet Traverella
sp. B Allen (1973) from Honduras and Mexico. Here the imago of T. longifrons Lugo
Ortiz & McCafferty (1996) is described based on reared material from Panamá and
additionalmaterialfromHonduras.
Resumo
Em 1996, LugoOrtiz & McCafferty descreveram Traverella longifrons da Costa Rica
baseados em ninfas previamente conhecidas como epíteto informal Traverella sp. B
Allen(1973)deHonduraseMéxico.OadultodeT.longifronsLugoOrtiz&McCarfferty
(1996) é descrito baseado em material associado do Panamá e material adicional de
Honduras.
Keywords:Neotropical,Ephemeroptera,Leptophlebiidae,Imago,Traverellalongifrons
Introduction
The family Leptophlebiidae (Ephemeroptera) is probably the most diverse in the
Neotropics, with approximately 40 genera and 150 species, all belonging to the
106
subfamily Atalophlebiinae. Some genera are monotypic, while others are speciesrich
(Domínguezetal.2006).
The Hermanellagroup is composed of the following genera: Hermanella
Needham&Murphy, 1924,HydromastodonPolegatto&Batista,2007, Hydrosmilodon
Flowers & Domínguez, 1992, Hylister Domínguez & Flowers, 1989, Leentvaaria
Demoulin, 1966, Needhamella Domínguez & Flowers, 1989, Paramaka Savage &
Domínguez, 1992 and Traverella Edmunds, 1948. Kluge (2007) reduced all genera of
thegrouptosubgeneratofithiscircumscriptionalnomenclaturalsystem;however,we
prefer to follow a more conventional nomenclatural arrangement here. Within the
Hermanellagrouparemanyspecieswithadultstagesundescribed,includingTraverella
longifronsLugoOrtiz&McCafferty,1996.
Traverella was established for Thraulus albertanus McDunnough, 1931, by
Edmunds (1948) based on reared imagos and nymphs from Utah. He described and
transferredmanyspeciestoTraverella.In1973,AllenreviewedTraverellanymphsfrom
North and Central America, redescribed species and created some informal epithets
(e.g. A, B, C), some of which were later formally named. Presently 13 species are
attributed to Traverella although some are inadequately described so placement is
dubious:T. albertana(McDunnough,1931);T. bradleyi(Needham&Murphy,1924);T.
calingastensisDomínguez,1995; T.castaneaKilgore&Allen,1973;T.hozenthaliLugo
Ortiz&McCafferty1996;T.lewisiAllen,1973;T.montium(Ulmer,1943);T.presidiana
(Traver, 1934); T. promifrons LugoOrtiz & McCafferty, 1996 (= species C of Allen) T.
valdemari (EsbenPetersen, 1912); T. versicolor (Eaton, 1892); and T. longifrons (=
species B of Allen). Only seven of these species are described in the male imaginal
stage. Thegenus isclassified intwosubgenera,Traverella(Traverella)with 12species
andTraverella(Zonda)Domínguez,1995,withone speciesT. (Zonda)calingastensis.In
this paper we describe the adult stages of Traverella longifrons based on reared
materialfromPanamaandadditional imagosfromHonduras.Thematerialisdeposited
in the Florida Agricultural & Mechanical University, Tallahassee, FL, USA (FAMU) and
theUnitedStatesNaturalHistoryMuseum,Washington,D.C.(USNM).
Taxonomy
TraverellalongifronsLugoOrtiz&McCafferty,1996
107
(Figure1AE)
imago(inalcoholand styligerplateinglycerin).Length:body6.57.4mm;forewings
7.68.0 mm; hind wings 1.11.3 mm. Head: upper portion of eyes gray, lower portion
black; antennae pale. Thorax: terga and sterna brown yellowish with sutures dark
brown. Wings (Figures 1 A, B): hyaline, with bases shaded black; maximum length of
forewings23/4to3timeswidthofforewings;maximumlengthofhindwings2times
width of hind wings; maximumlengthof fore wings of length of hind wings. Fore
wings (Figure 1A): costal membrane basal to bulla without cross veins; 115120 cross
veins in membrane. Hind wings (Figure 1B): base of costal projection broad, apex
locatedslightlymorethan1/2distancefrombasetoapexofwing.Legs:Foreleg:coxa
and trochanter brown yellowish; femur yellowish with apical and medial black
maculae;tibiablack,exceptpaleapically;tarsomerespale.Middleandhindlegs:coxa
and trochanter yellowish; femur, tibia and tarsus with same pattern as fore leg.
Abdomen (Figure 1C): tergum I tinged black, terga IIVI translucent with a black
posteriorband, tergumVII tingedgraywitha blackposteriorband,tergaVIIIXyellow
brownish with a black posterior band; sterna IVI hyaline; sterna VIIX yellowish.
Genitalia(Figure1D,E):yellowish;styligerplatewith twolong,thin,dorsallyrecurved
spine‐likeprojections;segmentsIIandIIIofforcepsshort,segmentIIofforceps1/7to
1/8lengthofsegmentI;penesdividedinapicalthird,withalong,curvedspineatapex.
Cerciwithbroadblackbandsatthefirstsegments.
Material examined: 1 imago reared: Panama: Bocas del Toro Prov., Rio Teribe at
Zegla, 24IV1985, R.W. Flowers & A. Gonzalez 3 imago: same data except 21
IV
1985, all deposited at FAMU. 1 imago, Panama: Darien, Rio Tuira at Rio Pucuro,
16/17II1985,J.Louton,depositedatUSNM.
108
Figure 1. Traverella longifrons. A‐fore wing; B‐hind wing (scale and enlarged); C abdominal color
pattern;D‐styligerplate(caudalview);E‐styligerplate(lateralview)
Remarks
TheimagoofT. longifronsisverysimilartotwootherspecies,T. presidianaand
T. albertana. The styliger plate has similar projections with two fine, long spi nes
projecting posteriorly, but the abdominal color pattern is different from T. presidiana
which has a pale brown or yellowishwhite abdomen; in T. longifrons and in T.
albertana most terga are translucent. The shape of penes of T. longifrons is different
from T. albertana: in T. longifrons the apex is rounded in T. albertana the apex is
concave.
The main differential character present in the nymph is the shape of clypeal
projection.InT. longifrons thisisadistinctlong, triangularfrontoclypealprocess(see
109
fig.4inAllen1973orfig.41inLugoOrtiz&McCafferty1996);inT.presidianathisisa
largeandspatulateprojection;andinT.albertanaitisasmallprojection.
Thecolorpatternofthe maleimagoofTraverellalongifronsstronglyresembles
T. versicolor, a species described from Caché, Costa Rica and Chiriqui, Panamá (Eaton
1892)fromfemaleimagosandsubimagosandinformallyplacedinTraverellabyTraver
and Edmunds (1967). Although T. longifrons is a potential synonym, the female
described by Eaton has not yet been associated with males or by rearing from the
nymph.TraverellalongifronsisthusapotentialsynonymofT.versicolor,butwedefer
fromformalizingthisstatusuntilthemissingstagesareassociated.
Acknowledgments
ThefirstauthorwassupportedbySãoPauloStateResearchFoundation(FAPESPgrant
No.05/538741)whilecompletingthepaper.
References
Allen, R. K. (1973) Generic revisions of mayfly nymphs. I. Traverella in North and
Central America (Leptophlebiidae). Annals of the Entomological Society of
America,66,12871295.
Domínguez, E., Molineri, C., Pescador, M.L., Hubbard, M.D. & Nieto, C. (2006)
Ephemeroptera of South America.In: Adis,
J., Arias, J.R., RuedaDelgado, G. &
K.M. Wantzen (Eds.), Aquatic Biodiversity in Latin America (ABLA). Vol. 2.
Pensoft,SofiaMoscow,646pp.
Eaton,A.E.(1892)Fam.Ephemeridae.BiologicaCentraliAmericana,38(1),116.
Edmunds, G.F. (1948) A new genus of mayflies from Western North America
(Leptophlebiinae).Proceedings
oftheBiologicalSocietyofWashington,61,141
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Kluge, N. (2007) A new taxon Hermanellonota, or subtribe Hermanellini subtr. n.
(Ephemeroptera: Leptophlebiidae: Hagenulini), with description of three new
speciesfromPeruvianAmazonia.RussianEntomologicalJournal,16,385398.
LugoOrtiz, C.R. & McCafferty, W.P. (1996) New species of
Leptophlebiidae
(Ephemeroptera)fromMexicoandCentralAmerica.AnnalesdeLimnologie,32,
110
318.
Traver, JR. & Edmunds, G.F.Jr. (1967) A revision of the genus Thraulodes
(Ephemeroptera: Leptophlebiidae). Miscellaneous Publications of the
EntomologicalSocietyofAmerica,5,349395.
111
9.3.Anexo3
EduardoDomínguez,CarlosMolineri&RodolfoMariano2009.Revisionofthe
SouthAmericanspeciesofHagenulopsisUlmerandAskolaPeters(Ephemeroptera:
Leptophlebiidae)withdescriptionofsixnewspecies.Zootaxa2142:2944
Accepted by M. Hubbard: 25 May 2009; published: 26 Jun 2009
29
ZOOTAXA
ISSN 1175-5326 (print edition)
ISSN
1175-5334 (online edition)
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Zootaxa 2142: 2944 (2009)
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Article
Revision of the South American species of Hagenulopsis Ulmer and Askola Peters
(Ephemeroptera: Leptophlebiidae) with description of six new species
EDUARDO DOMÍNGUEZ
1
, CARLOS MOLINERI
1
& RODOLFO MARIANO
2
1
CONICET-Facultad de Ciencias Naturales e IML, Universidad Nacional de Tucumán, Argentina
2
Universidade de São Paulo, Faculdade de Filosofia, Ciências e Letras de Ribeirão Preto, Departamento de Biologia, Laboratório de
Entomologia Aquática, Ribeirão Preto, Brasil
Abstract
The South American species of the genera Askola and Hagenulopsis are revised. Three new species of Askola from
Brazil are described based on male imagos. Askola emmerichi sp. nov. and A. paprockii sp. nov. present spotted wings,
but differ in general coloration and details of genitalia; Askola cipoensis sp. nov. is easily distinguished because the male
eyes being widely separated on meson of head. Three new species of Hagenulopsis are also described: H. lipeo (from
Argentina and Bolivia) and H. zunigae (from Colombia), both described from imagos and nymphs, can be recognized by
details of coloration and male genitalia. H. esmeralda sp. nov. from Ecuador, described from imagos, shows a distinct
male genitalia and translucent male abdomen. A key to species for the the male and female imagos of Askola and
Hagenulopsis species is provided.
Key words: Atalophlebiinae, Neotropics, taxonomy, new species, mayflies
Introduction
Askola Peters and Hagenulopsis Ulmer are two of the four dipterous (with no hind wings) leptophlebiids
known to South America. The monotypic Bessierus Thomas & Orth and Perissophlebioides Savage, are the
two other dipterous genera, but are not closely related to the sister taxa Askola and Hagenulopsis (Domínguez,
2009).
The genus Askola was established by Peters (1969) from male and female imagos and nymphs for A.
froehlichi, and no other species was described since then. We are describing here three new species, based on
male imagos.
The genus Hagenulopsis was established by Ulmer (1920) and is currently known from all the stages. Five
species have been described, three from adults and nymphs: H. diptera Ulmer, H. minuta Spieth and H.
traverae (Peters), and two only from nymphs: H. ingens and H. ramosa Lugo-Ortiz & McCafferty.
We are describing three new species of Hagenulopsis, two based on male and female imagos and nymphs,
and the third from male and female imagos.
We are also including a key to separate the male and female imagos of all the known species of Askola and
Hagenulopsis. The aspect and coloration of the nymphs of Hagenulopsis is very similar, and we found it very
difficult to separate them. As we did not have specimens of all the species, we prefer not to include a key to
separate them.
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DOMÍNGUEZ ET AL.30 · Zootaxa 2142 © 2009 Magnolia Press
Material and methods
The material used in this study is preserved in ethyl alcohol 75%. Male legs and genitalia and nymphal parts
were dissected and mounted in Canada Balsam. Wings were mounted dry. Female descriptions only list those
characters that differ from male (excluding those related to sexual dimorphism). The material is deposited in
the following institutions: Instituto-Fundación Miguel Lillo, Tucumán, Argentina (IFML); Museu de
Zoologia, Universidad de São Paulo, Brazil (MZSP); Museo de Entomología, Universidad del Valle, Cali-
Colombia (MUSENUV), Museo Ecuatoriano de Ciencias Naturales, Quito, Ecuador (MECN).
Key to separate the imagos of Askola and Hagenulopsis
Males
1. Vein ICu
1
of fore wings joined at base to CuA (Figs. 25–27); penis lobes without ventral spines (Figs. 28, 31, 34)
.................................................................................................................................................................. 2 (Askola)
1’. Vein ICu
1
of fore wings joined at base to CuP (Figs. 37–39); each penis lobe with a ventral spine (Figs. 40, 42–44)
........................................................................................................................................................ 5 (Hagenulopsis)
2(1). Cross veins of fore wings not surrounded with dark clouds (Fig 27)...................................................................... 3
2’. Cross veins of fore wings surrounded with dark clouds (Figs. 25–26) ...................................................................4
3(2). Fore wing length approximately 7 mm; eyes meeting on meson of head (Figs. 11–12); penes not extending
beyond posterior margin of styliger plate (similar to Fig. 31); basal 1/3 of forceps brown, remainder paler; general
coloration as in Fig. 10 ..........................................................................................................................A. froehlichi
3’. Fore wing length 4.5–5.3 mm; eyes separated on meson of head (Figs. 8–9); penes extending beyond posterior
margin of styliger plate (Figs. 34–35); forceps light yellow washed with gray, lighter toward apex; general color
-
ation as in Fig. 7........................................................................................................................ A. cipoensis sp. nov.
4(2). Forceps yellowish-brown, except inner margins whitish; penes extending well beyond the posterior margin of
styliger plate (Figs. 28–29); general coloration as in Figs. 1–3...............................................A. emmerichi sp. nov.
4’. Forceps whitish, except basal articulation orangeish; penes not extending beyond posterior margin of styliger
plate (Figs. 31–32); general coloration as in Figs. 4–6 ............................................................ A. paprockii sp. nov.
5(1). Cross veins of fore wings blackish brown surrounded with dark clouds; dorsal portion of eyes yellowish white
(Figs. 23–24); general coloration as in Fig. 22 ........................................................................................ H. diptera
5’. Cross veins of fore wings not surrounded with dark clouds (Figs. 37–39); dorsal portion of eyes darker (Figs.
14–15, 17–18, 20–21); general coloration not as above ..........................................................................................6
6(5). Well developed bridge between stalks of upper portion of male eyes (Fig. 47) ....................................... H. minuta
6’. Without well developed bridge between stalks of upper portion of male eyes....................................................... 7
7(6). Upper portion of male eyes separated on meson of head by a length equal to maximum width of lateral ocellus
(distribution: Dominica and St. Lucia) .................................................................................................. H. traverae
7’. Upper portion of male eyes meeting on meson of head (Figs. 14, 17, 20, 23) ....................................................... 8
8(7). Light colored species, with abdominal segments II–VI translucent white, with black posterolateral spot (Figs.
16–18); first forceps segment long, three times length of styliger plate and straight (Fig. 41) .................................
................................................................................................................................................ H. esmeralda sp. nov.
8’. Dark colored species, with abdominal segments II–VI heavily washed with black or blackish brown (Figs. 13,
19); first forceps segment short—not more than 2.3 times length of styliger plate, and curved medially (Figs.
41–42, 44)................................................................................................................................................................ 9
9(8). Hind femora yellowish washed with black, heavier on apical 1/4, with a longitudinal lighter line; cerci dark brown
......................................................................................................................................................... H. lipeo sp. nov.
9’. Hind femora yellowish with black shading restricted to apical ¼; cerci yellowish ....................H. zunigae sp. nov.
Females
1
1. Cross veins of fore wings blackish brown surrounded with dark clouds; general coloration similar to Fig. 22 .......
1. Askola froehlichi, the only species known from females for the genus, can be separated from the species of
Hagenulopsis by the wing characters included in the male key.
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SOUTH AMERICAN HAGENULOPSIS ULMER AND ASKOLA
.....................................................................................................................................................................H. diptera
1’. Cross veins of fore wings not surrounded with dark clouds (Figs. 37–39); general coloration not as above ........ 2
2(1). Small species, body length 4.0 mm or less; cerci with darker annulations at articulation of three most basal seg-
ments .......................................................................................................................................................... H. minuta
2’. Larger species, body length 5 mm or more; cerci without annulations as above.....................................................3
3(2). Abdominal sterna much paler than terga ..................................................................................................................4
3’. Abdominal sterna concolorous with terga ................................................................................................................5
4(3). Abdominal terga II–VII with a paler, medial line (only subimago known, distribution: Dominica and St. Lucia) ..
.................................................................................................................................................................. H. traverae
4’. Abdominal terga II–VII with a pair of paler submedial dots on anterior margin (similar to Fig. 16) .......................
................................................................................................................................................. H. esmeralda sp. nov.
5(3). Hind femora yellowish washed with black, heavier on apical ¼, with a longitudinal lighter line.............................
......................................................................................................................................................... H. lipeo sp. nov.
5’. Hind femora yellowish with black shading restricted to apical ¼ ............................................. H. zunigae sp. nov.
Askola Peters
Askola Peters, 1969: 253. (Type-species: Askola froehlichi Peters).
Discussion: Askola can be distinguished from the other genera of Leptophlebiidae by the following
combination of characters, in the imago: 1) hind wings absent; 2) MA fork slightly asymmetrical, MP fork
symmetrical; 3) vein ICu1 of fore wings joined at base to vein CuA; 4) claws of a pair dissimilar, one apically
hooked and the other blunt; 5) penes divided, tubular, slender, apically pointed, and without appendages or
spines (Figs. 28–36 ); and 6) female with egg guide prolonged to middle of abdominal sternum IX and 7)
female sternum IX deeply cleft apically. In the nymph: 1) hind wing pads absent; 2) anteromedian
emargination of labrum with two small denticles; 3) denticles of tarsal claws progressively larger apically; 4)
dorsal and ventral portions of abdominal gills I–VII equal and plate-like, with the apical half of each plate
bordered with finger-like processes; 5) posterolateral spines present on abdominal segments V–IX or VI–IX.
The generic description of the male imago needs to be emended with the following characters to include the
variations reported for the new species: 1) eyes separated (Fig 8) or meeting (Figs. 2, 6 and 11) on meson of
head; 2) wings hyaline (Fig 27) or spotted (Figs. 1, 25, 26), costal cross veins basad to bullae absent (Fig. 27)
or present (Figs. 25–26); 3) penes extending (Figs. 28, 34) or not (Fig 31) beyond posterior margin of styliger
plate.
Askola emmerichi sp. nov. Domínguez, Molineri & Mariano
Male imago. Length: body, 5.0–5.2 mm; fore wing, 4.8–5.0 mm. General coloration (Fig. 1) thorax yellowish
orange, abdomen translucent, blackish marks on thorax and abdomen forming a pair of sublateral longitudinal
lines; wings with blackish marks. Head (Figs. 2–3). Dorsal portion of eyes grayish, lower portion black; eyes
widely meeting dorsally on meson of head; head yellowish with black stripes between eyes and ocelli.
Antennae whitish. Thorax. Pronotum yellowish white with blackish lateral third. Mesonotum orange yellow
with lateral margin of scutum, scutellum and central line on scutellum blackish. Metanotum yellowish with
lateral and posterior margins blackish. Pleurae and sterna yellowish white except sclerites close to base of legs
II and III darker. Legs. Leg I yellowish white except tarsi whitish, black bands on apex of femur, subapex of
tibia and base of tarsal segments III and IV; tarsal bands occupying ¾ of respective segment; claws grayish
[legs II and III broken off and lost]. Wings (Figs. 1, 25). Membrane hyaline except base of C area yellowish
and grayish spots mainly around cross veins as in Figs. 1, 25; longitudinal veins yellowish, cross veins
blackish bordered with grayish; 4 costal cross veins from bulla to costal brace. Abdomen translucent white
except segments VIII–X yellowish white. Terga with characteristic black pattern of marks and dots (Fig.1),
sterna without marks. Genitalia (Figs. 28–30): styliger plate yellowish white darker on margins, forceps and
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DOMÍNGUEZ ET AL.32 · Zootaxa 2142 © 2009 Magnolia Press
penes light gray, paler towards apex. Terminal filament whitish with a black band on the base of each segment
[cerci broken off and lost].
Material: 1 male imago from Colombia-Brazil, Amazonas, Reserva Natural Palmarí, quebrada
Natividad, cuenca rio Yabarí, 150 m, N 04º 17' 28"- W 70º 17' 42", 28-V-2002, light trap, M.C. Zúñiga, D.
Emmerich, A.J. Cardozo & R.J. Cardozo cols.; 1 male imago from Colombia-Brazil, Amazonas, Reserva
Natural Palmarí, rio Yabarí, muelle Centro Administrativo, 120 m, N 04º 17' 10"- W 70º 17' 49", 29-V-2002,
light trap, same collectors. Holotype deposited at MUSENUV, paratype at IFML.
Etymology: We dedicate this species to our friend and colleague Daniel Emmerich, one of the collectors
of the type material.
Discussion: Askola emmerichi can be separated from the other species of the genus by the following
combination of characters. Imago: 1) blackish marks on thorax and abdomen forming a pair of sublateral
longitudinal lines (Fig. 1), wings with blackish marks (Figs. 1, 25); 2) dorsal portion of eyes grayish and
widely meeting dorsally on meson of head (Figs. 2–3); 3) forceps yellowish-brown, except inner margins
whitish; 4) penes extending well beyond posterior margin of styliger plate (Figs. 28–29).
Askola paprockii sp. nov. Domínguez, Molineri & Mariano
Male imago. Length: body, 6.5–6.8 mm; fore wing, 6.5–6.7 mm. General coloration (Figs. 4–5) thorax
yellowish white, wings and abdomen hyaline, with grayish marks. Head (Fig. 6). Dorsal portion of eyes
grayish black, lower portion black; eyes widely meeting dorsally on meson of head; head yellowish white
with two black stripes from eyes and ocelli to fore margin. Antennae whitish. Thorax yellowish white darker
on meso and metanotum. Pronotum with blackish marks on lateral margins and two pairs of black sublateral
spots. Mesonotum with a small black spot at base of wings and diffuse black marks from wing base to anterior
margin. Metanotum with a pair of broad sublateral black marks. Pleurae with distinct black marks especially
around coxae, sterna with central area washed with black. Legs yellowish white with slightly darker femora;
trochanters II–III with black spots; subapical black band on tibia I; black medial mark on femora II–III. Wings
(Fig. 26). Membrane hyaline except base of C area yellowish and grayish spots mainly around cross veins as
in Fig. 26; longitudinal veins yellowish gray lighter towards hind margin, cross veins blackish bordered with
grayish; 4 costal cross veins from bulla to costal brace. Abdomen (Figs. 4–5) translucent white except
segments IX–X yellowish heavily washed with black. Tergum I completely washed with black, terga II–VIII
with a black band on lateral and hind margins, except medial line; terga VII–VIII with a pair of submedian
blackish spots near fore margin. Abdominal sternum I with anteromedian black mark and a pair of blackish
wide diagonal stripes, sterna II–VII with small anterolateral spot and thin and short oblique blackish stripe
ending on spiracles, sterna VIII–IX with lateral margins blackish. Genitalia: styliger plate whitish uniformly
washed with gray, forceps whitish except basal half washed with gray, penes yellowish washed with gray.
[Caudal filaments broken of and lost].
Material: Holotype and 1 paratype male imagos from Brazil, Minas Gerais, rio Peixe/rio Itam
confluence, S 19º 17.525'- W 43º 15.457', 500 m, 4-II-1998, Holzenthal & Paprocki Cols.
Holotype deposited
at MZSP, paratype at IFML.
Etymology: We dedicate this species to H. Paprocki, Trichoptera specialist, one of the collectors of the
type material.
Discussion: The male imago of Askola paprockii sp. nov. can be distinguished by the following
combination of characters: 1) General coloration yellowish white with grayish marks (Figs. 4–5), wings with
grayish spots (Fig. 26); 2) dorsal portion of eyes grayish black, eyes widely meeting dorsally on meson of
head (Fig. 6); 3) 4 costal cross veins from bulla to costal brace (Fig. 26); 4) forceps whitish except basal half
washed with gray (Fig. 5); 5) penes not extending beyond posterior margin of styliger plate (Figs. 31–32).
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SOUTH AMERICAN HAGENULOPSIS ULMER AND ASKOLA
FIGURES 1–6. Askola. Figs 1–3, Askola emmerichi, sp. nov., male imago. 1, general aspect, lateral view; 2, head,
dorsal view; 3, head, lateral view. Figs 4–6, Askola paprockii sp. nov., male imago. 4, body, dorsal view; 5, idem, ventral
view; 6, head, dorsal view.
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Askola cipoensis sp. nov. Domínguez, Molineri & Mariano
Male imago. Length: body and fore wing, 4.5–5.3 mm. General coloration (Fig. 7) yellowish, abdomen
washed with gray. Head (Figs. 8–9). Dorsal portion of eyes yellowish brown, lower portion black; eyes widely
separated dorsally on meson of head by ca. twice width of lateral ocelli; head yellowish washed with black
between ocelli. Antennae: scape yellowish brown, pedicel yellowish white with a grayish band on apical half,
flagellum whitish. Thorax yellowish with carinae and sutures slightly darker. Legs yellowish paler toward
apex and with narrow subapical blackish band on tibiae, stronger on tibia I, and subapical blackish band on
femora III. Wings (Fig. 27). Membrane hyaline with longitudinal and cross veins yellowish gray lighter
towards hind margin; no costal cross veins basad to bulla. Abdomen (Fig. 7) translucent yellowish white
except segments VIII–X whitish, segments I–II and VIII–X heavily washed with black; segments III–VII with
a transversal blackish band, narrower at center. Terga I–IX with a transparent medial line. Genitalia (Figs.
34–36): styliger plate yellowish with hind margin orangeish; forceps light yellow washed with gray lighter
toward apex, penes yellowish orange washed with gray. Caudal filaments yellowish white with every other
intersegmental union with a narrow black band.
Material: Holotype male imago and 14 paratypes male imagos from Brazil, Minas Gerais, Serra do Cipó,
km 126, II-1973, P. Montouchet & I. Sazima. Holotype and 6 paratypes deposited at MZSP, 7 paratypes at
IFML.
Etymology: cipoensis, from the type locality, Serra do Cipó.
Discussion: male imago of Askola cipoensis sp. nov. can be distinguished by the following combination
of characters: 1) General coloration yellowish, abdomen washed with gray (Fig. 7); 2) dorsal portion of eyes
yellowish brown, eyes widely separated dorsally on meson of head (Figs. 8–9); 3) no costal cross veins basad
to bulla (Fig. 27); 4) forceps light yellow washed with gray; 5) penes extending slightly beyond posterior
margin of styliger plate (Figs. 34–35).
Askola froehlichi Peters
Askola froehlichi Peters, 1969: 255 (male, female, nymph); Da-Silva, 2002: 1.
Material: 1 male imago from Brazil, SP, Casa Grande, Rib. Coruja, 11-IV-1983, light, C. G. Froehlich col.; 1
male imago from Brazil, SP, Campos do Jordão, Parque Estadual Campos do Jordão, córrego Galharada, 16-
X-1998, C. G. Froehlich & H. Paprocki cols.; 1 male imago from Brazil, SP, Campos do Jordão, Parque
Estadual Campos do Jordão, rio Sapucaí e córrego Galharada, 7
8/I/1986, C. G. Froehlich & L. G. Oliveira
cols.; 1 male imago, 6 male subimagos and 3 female subimagos from Brazil, SP, Campos do Jordão, Parque
Estadual Campos do Jordão, 16-XII-1987, C. G. Froehlich & L. G. Oliveira cols.; 2 mature male nymphs from
Brazil, SP, Campos do Jordão, Parque Estadual Campos do Jordão, 18-XI-1987, C. G. Froehlich & L. G.
Oliveira cols.; 1 male and 1 female from Brazil, SP, Jundiaí, Serra do Japi, Trilha da cachoeira do Paraíso,
riacho paraíso, S23°14 W46°57”, 1050 m, 18
20-XII-2007, Puçá, L. S. Lecci; R. A. Moretto & E. A.
Nascimento cols.; 1 male and 1 female from Brazil, SP, Jundiaí, Serra do Japi, córrego Paraiso, 20-II-2008,
Malaise trap, L. S. Lecci, R. A. Moretto & E. A. Nascimento cols.
All material deposited at MZSP, except 1
male imago from Rib. Corujá, 1 male imago and one nymph from Campos do Jordão, 1 male and 1 female
imagos from Serra do Japi.
Discussion: male imago of Askola froehlichi can be distinguished by the following combination of
characters:1) General coloration yellowish, abdomen washed with gray (Fig. 10), wings hyaline; 2) dorsal
portion of eyes blackish (Figs. 11–12); 3) 4 weak costal cross veins basad to and 1 on bulla; 4) basal 1/3 of
forceps brown, remainder paler; 5) penes not extending beyond posterior margin of styliger plate.
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Zootaxa 2142 © 2009 Magnolia Press · 35
SOUTH AMERICAN HAGENULOPSIS ULMER AND ASKOLA
FIGURES 7–12. Askola. Figs 7–9, Askola cipoensis sp. nov., male imago. 7, general aspect, lateral view; 8, head, dorsal
view; 9, head, lateral view. Figs 10–12, A. froehlichi, male imago. 10, general aspect, lateral view; 11, head, dorsal view;
12, head, lateral view.
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DOMÍNGUEZ ET AL.36 · Zootaxa 2142 © 2009 Magnolia Press
Hagenulopsis Ulmer
Hagenulopsis Ulmer, 1920: 34; Needham & Murphy, 1924: 43; Traver, 1946: 427; Peters, 1969: 258; Edmunds, Jensen
& Berner, 1976: 221; Peters & Domínguez, 2001: 353. (Type-species: Hagenulopsis diptera Ulmer).
Discussion: Hagenulopsis Ulmer can be separated from the other genera of the family by the following
combination of characters, in the adult: 1) hind wings absent; 2) MA fork symmetrical or asymmetrical, MP
fork symmetrical; 3) vein ICu1 of fore wings attached at base to vein CuP (Figs. 37–39); 4) tarsal claws of a
pair dissimilar, one apically pointed, other blunt; 5) penes divided, tubular, apically acute, with two small
ventral spines located between 1/5–1/3 distance from apex; 6) inner angle of forceps segment I located about
1/2–1/3 distance from base; 7) female with well developed egg guide, which is prolonged to middle of
abdominal sternum IX; and 8) female sternum IX deeply cleft apically. In the nymph: 1) labrum with rounded
margins, and anteromedian emargination with 3–5 denticles; 2) mandible with few or no setae on apical third
of outer margin; 3) apical 1/2 of segment III of labial palpi constricted; 4) denticles of tarsal claws
progressively larger toward apex, except apical denticle much larger; 5) gills on abdominal segments I–VII
lanceolate, narrow, dorsal and ventral portions similar; 6) posterolateral spines on abdominal segments VI–IX,
larger posteriorly, only slightly developed in IV and V.
The generic description needs to be amended with the following characters to include the variations
reported for the new species: In the imago, 1) penes divided, tubular, apically acute, with two small ventral
spines located between 1/5–1/3 distance from apex; 2) inner angle of forceps segment I located about 1/2–1/3
distance from base. In the nymph, 1) labrum with rounded margins, and anteromedian emargination with 3–5
denticles.
Lugo-Ortiz & McCafferty (1996) separated one of the two species they described from nymphs, mainly
on the presence of branched setae on the distal end of hind tibiae. The nymphs we are describing and H.
diptera we studied (from Sao Paulo) have only simple setae on hind tibiae.
Hagenulopsis lipeo sp. nov. Domínguez, Molineri and Mariano
Male imago (Fig. 19). Length: body, 5.0–5.8 mm; fore wings, 5.0–5.6 mm. Eyes: upper portion grayish brown
meeting dorsally, basally contiguous; facets small and numerous (Figs. 20–21). Facets of lower portion black,
small. Head yellowish brown with black markings close to base of eyes. Ocelli whitish, lateral ocelli twice the
size of the median one. Antennae: scape yellowish white, pedicel brownish [flagellum broken off and lost].
Thorax. Nota and pleurae reddish brown with carinae darker and whitish membranes; sterna yellowish brown
with whitish membranes. Leg I yellowish heavily washed with black specially on femora, tarsi lighter; legs
II–III with coxae and trochanter yellowish white, remainder segments yellowish washed with black specially
at apex of femora; longitudinal lighter line on femora II–III; claws in all legs yellowish washed with black.
Wings membrane hyaline uniformly tinted with light brown, veins brownish lighter toward apex, pterostigma
clouded white (Fig. 37); no costal cross veins basad to bulla. Abdomen. Terga yellowish heavily washed with
black except on two submedial and two sublateral paler areas close to anterior margin on each terga II to VI;
sterna yellowish white washed with black except anterior margin and ganglia; posterior margin of sterna
VII–VIII translucid. Genitalia (Figs. 43–46): styliger plate and forceps yellowish brown except inner margins
of forceps whitish, penes yellowish white; short styliger plate (ratio maximum width/medial length:
1.95–2.17) with a similar width along its entire length, hind margin straight to slightly concave; first forceps
segment curved medially (ratio length F1/styliger: 2.0–2.3) (Figs. 43–44). Caudal filaments, basal half of first
segment yellowish brown; rest of filaments yellowish black basally, turning yellowish gradually toward apex.
Female imago. Length: body, 4.4–5.6 mm; fore wings, 5.0–5.8 mm. Head yellowish brown except base of
ocelli blackish, and area between ocelli and eyes whitish. Eyes black. Thorax yellowish brown, sterna
yellowish white except darker medially. Some females have lighter wing membranes than the males.
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Zootaxa 2142 © 2009 Magnolia Press · 37
SOUTH AMERICAN HAGENULOPSIS ULMER AND ASKOLA
Abdomen ventrally with lighter areas covering anterior ¾ of segments II–V; egg guide yellowish black lighter
toward apex, apically acute.
FIGURES 13–18. Hagenulopsis. Figs 13–15, H. zunigae sp. nov. 13, male imago, general aspect, lateral view; 14, head,
dorsal view; 15, head, lateral view. Figs 16–18, H. esmeralda sp. nov. 16, male imago, general aspect, lateral view; 17,
head, dorsal view; 18, head, lateral view.
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DOMÍNGUEZ ET AL.38 · Zootaxa 2142 © 2009 Magnolia Press
FIGURES 19–24. Hagenulopsis. Figs 19–21, H. lipeo. 19, male imago, general aspect, lateral view; 20, head, dorsal
view; 21, head, lateral view. Figs 22–24, H. diptera. 22, male imago, general aspect, lateral view; 23, head, dorsal view;
24, head, lateral view.
Mature nymphs. Female length: body, 5.4–5.6 mm, cerci 3.7–3.9 mm, terminal filament, 4.8–5.0 mm.
Male length: body 5.3–5.6 mm, cerci 5.3 mm, terminal filament, 3.6 mm. Head. Eyes of male with reddish
black upper portion and blackish lower portion; eyes of female black; ocelli whitish with inner half margin
blackish. Antennae: scape yellowish, pedicel blackish, flagellum yellowish lighter toward apex. Dorsum of
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Zootaxa 2142 © 2009 Magnolia Press · 39
SOUTH AMERICAN HAGENULOPSIS ULMER AND ASKOLA
head yellowish brown stained with black in central area. Mouthparts yellowish stained with black at: base of
labrum, basal half of mandibles, outer margin and palpi segment I of maxilla, posterior margin of
superlinguae, and submentum; molae of mandible and apical row of setae of maxilla orange brown;
anteromedian emargination of labrum with 3 denticles, the median smaller than lateral ones. Thorax. nota
yellowish white with latero-medial and latero-posterior areas washed with black; pro- and mesosternum
yellowish white with ganglia and margins stained with black, metasternum yellowish white almost completely
washed with black except inner margin of articulation of coxae. Leg I light orange yellow with coxa and
margins of trochanters washed with black, femur almost completely washed with black except lighter
oblicuous line. Legs II and III yellowish with coxa and two longitudinal lateromedial areas on femora, and
longitudinal stripe on tibiae blackish; tibiae and tarsi darker than femora, claws orange brown. Tarsal claws
with 8–9 denticles. Abdomen dorsally yellowish orange washed heavily with black especially on latero-
posterior areas of terga; sterna yellowish with central area tinged with black, lighter in central area.
[Posterolateral projection as in minuta description]. Gills whitish with blackish tracheae. Cerci yellowish
orange, few setae on each intersegmental union.
FIGURES 25–36. Askola. Figs 25–27, male fore wing: 25, Askola emmerichi sp.nov.; 26, Askola paprockii sp. nov.; 27,
Askola cipoensis sp. nov. Figs 28–30, Askola emmerichi sp.nov.: 28, genitalia, ventral view; 29, genitalia, lateral view;
30, penes, detail. Figs 31–33, Askola paprockii sp. nov.: 31, genitalia, ventral view; 32, genitalia, lateral view; 33, penes,
detail. Figs 34–36, Askola cipoensis sp. nov.: 34, genitalia, ventral view; 35, genitalia, lateral view; 36, penes, detail.
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DOMÍNGUEZ ET AL.40 · Zootaxa 2142 © 2009 Magnolia Press
Material: Holotype male imago from ARGENTINA: Salta, PN Baritu, Lipeo, estación 5, 13-XI-2004; 98
male and 8 female imagos same data as holotype.
Paratypes: 18 nymphs from ARGENTINA: Salta, Parque
Nacional Baritu, Lipeo, Aº Los Naranjos, 13-XI-2004, E. Domínguez col.; 2 nymphs, same data as holotype,
except Aº Baritu, 17-XI-2004.
Other material: Jujuy, El Carmen, Aº Las Lanzas, 3-III-2000, Domínguez &
Molineri cols. BOLIVIA: Dpto. Santa Cruz, Ichilo Prov., 10 km NE Hierba Buena Militar, Quebrada El
Bronce, 1100 m, 19-IV-1993, E. Domínguez & M. Paco cols. All material deposited at IFML, except 5 male
imagos at MZSP and 5 male imagos at MUSENUV.
Etymology: Lipeo, name of the type locality.
Biology: Hagenulopsis lipeo sp. nov. was collected in a small effluent of the Lipeo river, in Salta
Province, NW Argentina. The stream was about 3 m wide and between 20 cm to 60 cm deep. The bottom was
covered with rocks, with some sandy areas. A mating flight was observed during the morning hours, 1 m
above the water course, performing the typical up and down pattern of most leptophlebiid species. It is
interesting to note that the pattern does not seem, at least on the main features, to be affected by the dipterous
conditions of the specimens. The size of the swarm was approximately 5 m long and 1 m width, and extended
for about an hour. A few females were caught among the flying males.
Discussion: This species seems to have a rather extended distribution from NW Argentina to central
Bolivia. It has been observed certain variation in the shape of the apex of the male styliger plate (Figs. 45–46),
that is due to the angle of observation. It can be separated from the other- species of the genus by the
following combination of characters. Imago: 1) general coloration dark (yellowish, heavily washed with
black), pattern as in Fig. 19; 2) eyes of male meeting on -meson of head (Figs. 20–21); 3) first forceps
segment not more than 2.3 times length of styliger plate, and curved medially (Fig. 43); 4) hind femora
yellowish washed with black, heavier on apical 1/4, with a longitudinal lighter line; 5) cerci dark brown.
Hagenulopsis esmeralda sp. nov. Domínguez, Molineri & Bersoza
Male imago (Fig. 16). Length: body, 4.8–5.2 mm; fore wings, 4.8–5.0 mm. Eyes: upper and lower portions
black, meeting dorsally, in frontal view the eyes are contiguous except small basal and medio-apical openings;
facets small and numerous. Head yellowish washed with black diffusely. Ocelli whitish, lateral ocelli twice
the size of the median one. Antennae: scape yellowish white, pedicel brownish, flagellum yellowish lighter
toward apex. Thorax. Pronotum yellowish white heavily washed with black except central area and two C-
shaped submdian marks on posterior margin lighter; mesonotum orangish yellow with sutures and carinae
darker, metanotum yellowish white with posterior and lateral margins washed with black; pleurae sclerites
yellowish orange, membranes whitish heavily washed with black; sterna yellowish orange except central
portions whitish. Legs yellowish white with brownish spot at apex of femora, hooked claw of a pair orange
blunt claw grayish. Wings membrane hyaline except basal to costal brace brownish, veins yellowish brown,
crossveins whitish, pterostigma clouded white (Fig. 38); bullae (better distinguishable in alcohol specimens)
present on Sc, R
1
, R
4+5
and MP
1
about ½ from base; 4 costal cross veins from bulla to costal brace. Abdomen.
Terga II–VI translucent white with black posterolateral angles; tergum VII whitish with sublateral circular
areas and posterolateral angles washed with black; terga VIII–IX whitish heavily washed with black except
narrow medial line; tergum X whitish with blackish anterolateral corners; abdominal sterna whitish. Genitalia
(Figs. 41–42): whitish except basal articulation of forceps and posterior margin of styliger plate orangeish and
penes light orange; long styliger plate (ratio maximum width/medial length: 1.66–1.95) wider at base
becoming thinner toward apex, hind margin markedly concave; first forceps segment long and straight (ratio
length forceps I/styliger plate: 3) (Fig. 41). Caudal filaments translucent white with black annulations, narrow
near base of filaments and widening towards apex.
Female imago. Length: body, 5.0–5.5 mm; fore wings, 5.3–5.5 mm. Eyes black. Head yellowish white
with two dark stripes between lateral ocelli and posterior margin. Antennae scape and pedicel yellowish
washed with black, flagellum grayish lighter towards apex. Thorax. Pronotum whitish heavily washed with
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Zootaxa 2142 © 2009 Magnolia Press · 41
SOUTH AMERICAN HAGENULOPSIS ULMER AND ASKOLA
black; mesonotum yellowish orange margins darker; pleurael sclerites yellowish orange slightly washed with
black, membranes whitish heavily washed with black; sterna yellowish except central parts whitish. Legs
coxae and trochanter yellowish orange washed with black on coxae, femora whitish with black subapical
band, tibiae and tarsi yellowish white, claws grayish. Wings. Membrane hyaline basally brown as in male,
longitudinal and crossveins brownish, bullae as in male. Abdomen. Terga whitish, heavily washed with black
from I to IX, except median area of tergum VII, and a pair of submedial dots on anterior margin of terga
II–VII paler; sterna whitish except posterior margin of sternum VI and egg guide brownish, egg guide apically
acute. Caudal filaments light yellowish brown with annulations as in male.
Material. Holotype male from ECUADOR: Esmeralda Prov., Canton Eloy Alfaro, Parroquia Telembí,
Estero Arenales, N 0º 40' 06", W 78º 69' 26", 40 m, 15-IV-2002, E. Domínguez, F. Bersoza, M.C. Zuñiga coll.
Allotype, and paratypes (42 males, 5 females) same data as Holotype; 6 male and 1 female imagos (paratypes)
from ECUADOR: Esmeralda Prov., Canton Eloy Alfaro, Parroquia Telembí, Comunidad San Miguel, Estero
Charco Vicente, N 0º 41' 36", W 78º 54' 33", 80 m, 14-IV-2002, E. Domínguez, F. Bersoza, M.C. Zuñiga coll.
Imagos of both sexes were captured in the same nuptial flight. Holotype, Allotype and half of the partatypes
deposited in MECN, rest of paratypes divided equally between IFML and MUSENUV.
Etymology: Esmeralda, from the name of the Ecuadorean province where the species was collected.
Discussion: Hagenulopsis esmeralda sp. nov. can be separated from the other species of the genus by the
following combination of characters. Imago: 1) general coloration light, with abdominal segments II–VI
translucent white, with black posterolateral angles (Figs. 16–18); 2) eyes of male meeting on dorsum of head
(Figs. 17–18); 3) first forceps segment long (3 times length of styliger plate), and straight (Fig. 42); 4) hind
femora yellowish white with brownish spot at apex; 5) cerci translucent white with black annulations, narrow
near base of filaments and widening towards apex.
Hagenulopsis zunigae sp. nov. Domínguez, Molineri and Mariano
Male imago (Fig. 13). Length: body, 6.0–6.8 mm; fore wings, 6.0–6.5 mm. Eyes: upper portion dark reddish
brown, lower portion black, meeting dorsally, in frontal view the eyes are contiguous; facets small and
numerous. Head yellowish washed with black in median area delimited by eyes and ocelli. Ocelli whitish,
median ocelli very small, lateral ocelli 4 times the size of the median one. Antennae: scape yellowish and
pedicel yellowish brown, flagellum grayish, lighter towards apex. Thorax. Pronotum yellowish with margins
and paramedian lines blackish; mesonotum yellowish orange with sutures and carinae darker, metanotum
yellowish orange diffusely washed with black darker along margins; pleural sclerites yellowish orange,
membranes whitish heavily washed with black; sterna yellowish orange except central portions whitish and
margins of sclerites blackish. Legs. Leg I: coxa, trochanter and femur yellowish heavily washed with black,
tibia light yellowish black, tarsi whitish except apical tarsomere washed with black, hooked claw grayish,
blunt claw translucent white. Legs II and III similar to leg I, except femora shading restricted to apical ¼.
Wings membrane hyaline tenuously tinged with brown; except basal to costal brace brownish, veins grayish
brown, crossveins lighter, pterostigma clouded white; bullae (better distinguishable in alcohol specimens)
present on Sc, R
1
, R
4+5
and MP
1
about ½ from base (Fig. 37); 4 costal cross veins from bulla to costal brace.
Abdomen. Terga yellowish white heavily washed with blackish brown except terga III–VII with anterior
margins with central area and corners not tinged; sterna yellowish white shaded with brownish black except
ganglia and semicircular area close to posterior margin on sterna III–VIII, lighter. Genitalia (Fig. 40): styliger
plate yellowish white with basal half and posterior margins washed with black; forceps yellowish white with
segment I heavily washed with black; penes yellowish white; short styliger plate (ratio maximum width/
medial length: 1.95–2.16) with a similar width along its entire length, hind margin straight to slightly concave;
first forceps segment curved medially (ratio length F1/styliger: 2.2) (Fig. 40). Caudal filaments yellowish gray
lighter towards apex.
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DOMÍNGUEZ ET AL.42 · Zootaxa 2142 © 2009 Magnolia Press
FIGURES 37–47. Hagenulopsis. Figs 37–39, male fore wing: 37, H. zunigae sp. nov.; 38, H. esmeralda sp. nov.; 39, H.
lipeo. Fig. 40, H. zunigae sp. nov., genitalia, ventral view. Figs 41–42, H. esmeralda sp. nov.: 41, genitalia, ventral view;
42, penes, detail. Figs 43–46, H. lipeo: 43, genitalia, ventral view; 44, penes, detail; 45, apex of styliger plate, ventral
view; 46, idem, variation. Fig. 47, H. diptera, male head, dorsal view.
Female imago. Length: body, 6.1–6.3 mm; fore wings, 6.5 mm. Head yellowish gray, with whitish area
between eyes and center of head. Eyes black. Thorax yellowish brown, with pleural sclerites washed with
black. Abdomen lighter than male; egg guide yellowish washed with black, apically acute.[Caudal filaments
broken off and lost].
Mature male nymphs. Length: body 5.2–6.7 mm, cerci 3.5–4.0 mm, terminal filament, 5.0 mm. Head.
Eyes of male with yellowish brown upper portion and blackish lower portion; eyes of female black; ocelli
whitish with inner half margin blackish. Antennae whitish with blackish band occupying 2/3 of pedicel.
Dorsum of head yellowish washed with black in central area. Mouthparts yellowish white with clypeus,
labrum, base of mandibles, stipes of maxillae and postmentum of labium washed with black; molae of
mandibles and crown of setae on maxillae orangeish; anteromedian emargination of labrum with 3 denticles
of similar size. Thorax. Thoracic nota light yellow orange, pronotum and metanotum heavily washed with
black, mesonotum with outer margin and base of wingbuds blackish; thoracic sterna yellowish heavily
washed with black except basal part of prosternum and area between legs in mesosternum. Leg I yellowish
with two subapical black spots on femora, tibiae and tarsi darker. Legs II and III with coxae, trochanters and
femora yellowish white, trochanters washed with black, femora with subapical black band, tibiae and tarsi
yellowish especially on leg III. Tarsal claws yellowish white, with 9–10 denticles. Abdomen light yellow
orange, darker dorsally and with a blackish pattern similar to male imago but more diffuse. [Posterolateral
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Zootaxa 2142 © 2009 Magnolia Press · 43
SOUTH AMERICAN HAGENULOPSIS ULMER AND ASKOLA
projection as in minuta description]. Gills whitish with blackish tracheae. Caudal filaments yellowish orange
lighter towards apex, with setae on each intersegmental union.
Material. Holotype male imago from COLOMBIA: P. N. Farallones de Cali, Peñas Blancas, río Pichinde,
N 3º 25' 45", W 76º 39' 27", 2.000 m, 17-18-III-1999, E. Domínguez, M.C. Zuñiga & C. Molineri; allotype
female imago, 7 male imagos and 1 male nymph paratypes, same data as holotype; 7 male and 1 female
imagos and 2 male nymphs paratypes from COLOMBIA: Boyacá, Municipio de Arcabuco, Santuario de
Flora y Fauna de Iguaque, quebrada Carrizal, N 5º 42' 37", W 73º 27' 43", 2720 m, 6-II-1997, E. Domínguez,
M. Pescador & L. Baena cols. All material deposited at MUSENUV, except 4 male imagos from rio Pichinde,
3 male, 1 female imago and 2 nymphs from quebrada Carrizal, deposited at IFML.
Etymology: The species is dedicated to Maria del Carmen Zuñiga, friend and colleague for her
enthusiasm and contributions to the knowledge of Colombian aquatic insects.
Discussion: H. zunigae sp. nov. can be separated from the other species of the genus by the following
combination of characters. Imago: 1) General coloration dark (yellowish white heavily washed with blackish
brown except terga III–VII with anterior margins with central area and corners not tinged), pattern as in Fig.
13; 2) eyes of male meeting on dorsum of head (Figs. 14–15); 3) first forceps segment around 2.2 times length
of styliger plate, and curved medially (Figs. 41–42); 4) hind femora yellowish with black shading restricted to
apical ¼; 5) cerci yellowish.
Hagenulopsis diptera Ulmer
Hagenulopsis diptera Ulmer, 1920: 34; Lestage, 1922: 33; Edmunds, Jensen & Berner, 1976: 221; Peters & Domínguez,
2001: 356.
Material studied: One male imago from BRAZIL, São Paulo, Campos do Jordão, Parque Estadual, 16/XII/
1987.
C. G. Froehlich & L. G. Oliveira cols. Six nymphs, same data, except date: 18/XI/1987. Three nymphs
deposited at MZSP, remainder at IFML.
Discussion: This species was recently redescribed (Peters & Domínguez, 2001), it can be separated from
the other species of the genus by the following combination of characters. Imago: 1) general coloration
yellowish brown, pattern as in Fig. 22, 2) cross veins surrounded with dark clouds; 3) dorsal portion of male
eyes yellowish white, meeting on dorsum of head (Figs. 23–24); 4) first forceps segment around 1.5 times
length of styliger plate, and curved medially (Figs. 41–42); 5) hind femora yellowish-white, with wide medial
and narrower apical grayish black bands; 6) cerci yellowish-white, with basal 1/3 of each segment grayish.
Hagenulopsis minuta Spieth
Hagenulopsis minutus Spieth, 1943: 10; Traver, 1946: 427.
Hagenulopsis minuta; Peters & Domínguez, 2001: 354.
Discussion: This is a very small species (body size 3–4 mm) as noted by Spieth (1943), in the species
description. It is known from Surinam, Brazil and Venezuela. Peters & Dominguez (2001) detailed variations
in size, and coloration. The Venezuelan specimens are larger and the color pattern is more pronounced than
the others. H. minuta can be separated from the other species of the genus by the following combination of
characters. Imago: 1) general coloration reddish brown, heavily washed with blackish brown; 2) upper portion
of male eyes separated basally, meeting medially with well developed eye bridge on inner margin of upper
portion; 3) first forceps segment around 2 times length of styliger plate, and curved medially; 4) hind femora
yellowish, with wide subbasal and apical dark bands; 5) cerci pale, articulations of basal 3 segments darker.
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DOMÍNGUEZ ET AL.44 · Zootaxa 2142 © 2009 Magnolia Press
Akcnowledgments
We are grateful to María del Carmen Zúñiga, Daniel Emmerich, Lucas Lecci and Claudio Froehlich for
material donation.
Partial support was obtained from ANCYPT (PICT 528 and PICT 351) and CONICET
(PIP 1484). The two first authors are member of the CONICET, which support is acknowledged.
Bibliography
Da-Silva, E.R. (2002) Variaçôes intraespecíficas da ninfa de Askola froehlichi Peters, 1969 (Insecta: Ephemeroptera,
Leptophlebiidae), com notas biológicas. Boletim do Museu Nacional, Nova Serie, Zoología (Rio de Janeiro), 492,
1–5.
Dominguez, E. (2009) Overview and phylogenetic relationships of the two-winged genera of South American
Leptophlebiidae (Ephemeroptera). Aquatic Insects, In press.
Edmunds, G.F. Jr., Jensen, S.L. & L. Berner (1976) Mayflies of North and Central America. University of Minnesota
Press, Minneapolis.
Lestage, J.A. (1922) Note. Bulletin de la Société Entomologique de Belgique, 3, 33–34.
Lugo Ortiz, C. & W.P.McCafferty (1996) New species of Leptophlebiidae (Ephemeroptera) from Mexico and Central
America. Annales de Limnologie, 32, 3–18.
Needham, J.G. & H.E. Murphy (1924) Neotropical mayflies. Bulletin of the Lloyd Library Number 24, Entomological
Series 4, 1–79.
Peters, W.L. (1969) Askola froehlichi a new genus and species from southern Brazil (Leptophlebiidae: Ephemeroptera).
Florida Entomologist, 52, 253–258.
Peters, W.L. & E. Domínguez, (2001) The identity of Hagenulopsis minuta SPIETH (Leptophlebiidae: Atalophlebiinae).
In: Domínguez, E. (ed.). Trends in research in Ephemeroptera and Plecoptera. Kluwer Academic/Plenum, New
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