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Introdução à microbiologia clínica
e ao
tratamento das doenças infecciosas
Eurico de Aguiar
2009
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Dedicatória
Aos meus pais, Jefferson e Iracema, que foram fundamentais para que
pudesse me tornar o cidadão que sou.
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Currículo resumido
Eurico de Aguiar é médico e especialista em Patologia Clínica pelo Conselho
Federal de Medicina.
Ex-estagiário da Seção de Vírus do Instituto Evandro Chagas, Belém, Pará.
Especialista em Perícia Médica pela Fundação Unimed/Universidade Gama Filho.
Pós-graduado em Microbiologia Clínica e Sanitária pela Universidade de Sevilha,
Espanha.
Responsável pelo Setor de Bacteriologia do Laboratório de Patologia Clínica do
Hospital Regional da Asa Sul, Brasília, Distrito Federal (1988-2007).
Ex-coordenador de Patologia Clínica e ex-coordenador de Controle de Infecção
Hospitalar da Secretaria de Saúde do Distrito Federal.
Ex-presidente da Comissão Central de Controle de Infecção Hospitalar do Distrito
Federal.
Docente fundador do Curso de Medicina da Escola Superior de Ciências da Saúde
do Governo do Distrito Federal.
Diretor da Coordenação de Laboratório de Análises Clínicas do Departamento
Médico da Cãmara dos Deputados (2002-2008).
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ÍNDICE
Prefácio.................................................................................................................5
Coleta, transporte e semeadura de material ....................................................6
Exames diretos ..................................................................................................17
Meios de cultura ................................................................................................20
Identificação preliminar de culturas bacterianas e de fungos.......................22
Taxonomia microbiana .....................................................................................24
Identificação e teste de sensibilidade por equipamento automatizado ........26
Identificação manual dos microrganismos mais isolados ..............................32
Teste de sensibilidade manual ..........................................................................52
Resultados que merecem reavaliação .............................................................55
Avaliação da qualidade do ar interno ..............................................................56
Resistência bacteriana .......................................................................................60
Principais grupos de antimicrobianos ..............................................................63
Considerações importantes sobre alguns antimicrobianos ........................... 73
Princípios gerais de uso de antimicrobianos ...................................................76
Septicemia............................................................................................................82
Agentes antimicrobianos como início de terapia empírica .............................89
Dosagens de alguns antimicrobianos de maior uso .........................................90
Bibliografia recomendada ..................................................................................92
Alguns links de maior interesse .........................................................................96
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Prefácio
Durante vários anos procurei adotar uma metodologia que viesse facilitar o
desenvolvimento dos trabalhos microbiológicos em um laboratório clínico. A bibliografia
sobre o assunto é extensa, complexa e aplica, muitas vezes, procedimentos não acessíveis à
maioria dos laboratórios do nosso país.
Preocupado com essa questão, procurei utilizar práticas que pudessem ser adotadas
por diferentes tipos de condições de trabalho.
Reconheço que, ao menos em Brasília, as condições que dispomos nos laboratórios
da rede pública são bastante razoáveis, se comparadas com outras cidades e regiões do país.
Trabalhamos com sistemas automatizados de realização de hemoculturas, além de
sistemas automatizados de identificação e testes de sensibilidade bacteriana por
microdiluição em caldo, com determinação de concentração inibitória mínima.
Isso, no entanto, não impede que laboratórios com condições mais simples não
possam também desenvolver um trabalho de qualidade.
De 1988 até 2007 trabalhei no Hospital Regional da Asa Sul, hospital público de
nível terciário dotado de 360 leitos e de clientela constituída principalmente por gestantes e
crianças.
Além de responsável pelo setor de microbiologia do laboratório de patologia clínica,
participei ainda como membro efetivo da comissão de controle de infecção hospitalar.
É possível constatar que temos considerável aproximação com outras áreas e
especialidades, como as atividades desenvolvidas pelos infectologistas, assim como pelos
clínicos e cirurgiões que lidam com doenças infecciosas.
Em conseqüência, surgiu a idéia de desenvolver um texto que também abordasse um
pouco de um setor de tanta relevância na prática clínica e cirúrgica e que tem interface com
o nosso trabalho diário, apesar de que, por muito tempo, os livros de texto separaram
indevidamente as informações relativas à microbiologia das relativas às doenças
infecciosas.
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Coleta, transporte e semeadura de material
Como em todo exame de laboratório, as três etapas do processo (pré, per e pós-
analítico) são importantes para que o produto, ou seja o resultado do exame seja adequado e
compatível com as expectativas dos nossos clientes, médicos e pacientes.
Para que a primeira etapa seja realizada de forma correta temos primeiramente de
abordar a coleta, o transporte e a semeadura das amostras.
Passos principais a serem seguidos para uma adequada coleta de amostras para
exame microbiológico:
1. O material deve ser representativo do local da infecção, devendo-se evitar a
contaminação com outras amostras de sítios adjacentes.
2. Seguir os tempos ótimos estabelecidos para obter a maior chance de recuperação dos
microrganismos envolvidos, especialmente em relação às hemoculturas e outros
materiais de maior importância clínica e diagnóstica.
3. Entregar a amostra ao laboratório no menor tempo possível. O ideal é um intervalo de,
no máximo, 30 minutos entre a coleta e a semeadura da amostra.
4. Obter uma quantidade suficiente da amostra para poder realizar os testes solicitados
pelo médico assistente.
5. Utilizar sempre o material mais adequado para a coleta e semeadura de cada tipo de
amostra.
6. Quando necessário, utilizar o meio de transporte mais indicado para as espécies mais
prováveis de serem isoladas.
7. Obter as amostras, preferencialmente, antes do uso de antimicrobianos.
8. Exames diretos devem ser realizados juntamente com as culturas, para melhor
interpretação dos resultados.
9. Cada amostra deve ser sempre bem identificada.
10. O pessoal técnico deve ser imeditamente informado da entrega da amostra.
Desenvolvimento:
Sempre que possível devemos evitar a contaminação da amostra com a microbiota
normal do organismo, de forma a assegurar que seja representativa da infecção.
Amostra colhida de um local com flora normal abundante (pele, membranas
mucosas, fezes, etc.) pode interferir com a interpretação dos resultados de cultura e
dificultar o encontro do agente responsável pelo quadro clínico.
Devemos ainda colher a amostra do sítio anatômico mais adequado para o tipo de
infecção, usando a técnica mais adequada e os meios apropriados, evitando-se a
contaminação com a microbiota adjacente ao sítio da infecção.
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Além disso, a amostra deve ser colhida antes do início da terapia antimicrobiana, já
que se essa regra não for seguida há riscos de um resultado falso negativo provocado pela
ação “in vitro” dos medicamentos.
Lembrar sempre das características biológicas dos microrganismos mais prováveis
de serem isolados de acordo com a suspeita clínica e o quadro apresentado pelo paciente.
Assim se suspeitamos de uma infecção por anaeróbios, deveremos colher a amostra
em um recipiente adequado que atenda as condições de sobrevida dos germes envolvidos.
Ou ainda quando há suspeita de um material conter bactérias do gênero Neisseria ou
Haemophilus, que por não resistirem a baixas temperaturas e necessitarem de
microaerofilia para se desenvolver, requerem cuidados especiais na hora de colher,
transportar, semear e incubar.
Devemos lembrar também da importância de se colher volumes adequados de cada
amostra. Isso é particularmente importante no caso das hemoculturas, em que a relação
sangue/meio de cultura deve ser rigorosa.
O momento ideal da coleta é também outro ponto importante de ser lembrado.
Nunca esquecer a identificação correta de cada amostra e pedido médico, que deve
incluir o nome do paciente, nº da etiqueta, nº do prontuário, unidade de internação, data e
hora da coleta, exames solicitados, indicação clínica, doença de base, informações sobre o
uso de antimicrobianos e identificação legível do médico requisitante.
A amostra deve, sempre, ser coletada em um recipiente adequado, que além de
permitir a sobrevida dos micróbios, impeça vazamentos ou contaminação da equipe de
saúde.
Cada material deverá ser imediatamente encaminhado ao laboratório para ser
processado.
Considerações sobre biossegurança:
-Toda amostra deve ser considerada como potencialmente patogênica.
-A equipe de saúde deve utilizar equipamento de proteção individual adequado, como
luvas, máscara, óculos de proteção e avental ou jaleco longo de mangas compridas.
-Antes de manusear cada amostra verificar se há vazamentos ou respingos. Se houver,
fazer descontaminação com álcool a 70% ou outro germicida equivalente, como o
hipoclorito de sódio a 0,5%.
-Evitar a formação de aerossóis, especialmente ao trabalhar com semeadura de material.
-Utilizar ainda equipamento de proteção coletiva como cabine de segurança biológica,
chuveiro de emergência, lava-olhos, extintor de incêndio, microincinerador de alça
metálica ou uso de alça estéril descartável.
-Trabalhar em cabine de segurança biológica de risco biológico de acordo com os
agentes envolvidos no trabalho diário.
-Há quatro níveis de segurança biológica. O laboratório de microbiologia do HRAS
trabalha com segurança de nível 3, já que lida não só com os agentes patogênicos de
nível moderado, como ainda com agentes causadores de infecções sistêmicas mais
graves e letais (como o M. tuberculosis). Todas as barreiras de proteção individual
devem ser utilizadas e toda manipulação deve ser feita em cabine de segurança
biológica. O acesso ao laboratório deve ser controlado, assim como deve haver um
sistema de ventilação especial.
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-A cabine de segurança biológica deve ser dotada de filtro HEPA(filtro com eficiência
de 99,99% para partículas de até 0,3 micra de diâmetro), e com abertura frontal, que
protege o operador, o material e o meio ambiente.
-Dentro do laboratório será proibido guardar alimentos ou líquidos -como água, sucos e
refrigerantes-, fazer refeições ou aplicar cosméticos.
-Não será permitido o uso de pipetagem com a boca.
-Estabelecer um plano de gerenciamento de resíduos sólidos, contemplando os passos
de geração, segregação, acondicionamento, coleta, armazenamento, transporte,
tratamento e descarte.
-Todo material contaminado deve ser descontaminado antes de ser descartado.
-Ter um plano previamente estabelecido de como agir em casos de acidentes
envolvendo agentes infecciosos.
-Limpar e desinfetar todas as superfícies de trabalho no início e no término da jornada,
e sempre que houver risco de contaminação.
-Lavar as mãos imediatamente após contato com alguma amostra, após remover as
luvas e ao final do turno de trabalho.
-Manter organizadas todas as áreas de trabalho.
Critérios para rejeição de amostras consideradas inadequadas para cultura:
Qualquer amostra recebida em formol ou outro tipo de germicida.
Coleta de escarro ou de urina de 24 horas.
Amostras recebidas em recipientes apresentando vazamentos.
Amostras recolhidas de sondas de Foley.
Amostras recebidas em duplicata (exceto hemoculturas), em um período de 24 horas.
Amostras de secreção uretral colhidas em swab de algodão (o algodão é tóxico para o
gonococo).
Amostras recebidas sem identificação adequada e/ou sem pedido médico.
Amostras de urina recebidas sem condições adequadas de transporte,ou seja, em recipiente
sem gelo
Coleta, transporte e semeadura de amostras para cultura:
Hemocultura:
O sangue deve ser coletado antes de se iniciar a terapia antimicrobiana. Se isso não
for possível, coletar a amostra imediatamente antes da próxima dose do antimicrobiano.
Fazer antissepsia do local da punção venosa, inicialmente com álcool a 70% e
depois com solução iodada a 1% (ou com solução de clorohexidina), utilizando
movimentos circulares de dentro para fora. Deixar secar a área por 1 a 2 minutos, antes da
punção. Após a coleta, retirar a solução de iodo com álcool a 70%, para evitar a irritação da
pele.
As bacteremias podem ser transitórias (durante um procedimento cirúrgico;
presença de infecção grave como meningite, pneumonia, osteomielite, etc.), intermitentes
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(presença de abscesso não drenado) e contínuas (endocardite bacteriana, infecção associada
a cateter, septicemia, etc.). Ao menos duas hemoculturas, devem ser colhidas em um espaço
de 24 horas, com um intervalo de 30 a 60 minutos entre elas. Com isso mais de 90% dos
episódios bacteriemicos costumam ser detectados.
O volume de sangue recolhido deve ser de 1/10 do volume do frasco, no sentido de
minimizar a ação de fatores do hospedeiro que podem afetar o resultado dos exames
(anticorpos, complemento, leucócitos,etc.). Para adultos colhe-se em torno de 20 ml de
sangue por dia, e para crianças entre 1 e 5 ml. Logo após a coleta, os frascos de
hemocultura deverão invertidos 2 a 3 vezes para uma adequada homogenização e em
seguida encaminhados ao laboratório, para serem colocados em estufa a 35°C.
Nunca colocar os frascos de hemocultura em geladeira, porque isso poderá impedir
o crescimento de bactérias como as Neisserias e os Haemophilus. A coleta de mais de um
frasco é também útil para a interpretação dos resultados das culturas. Bactérias
consideradas geralmente como contaminantes (S. epidermidis, S. viridans, espécies do
gênero Corynebacterium, do gênero Bacillus e do gênero Propionibacterium) podem ser
valorizadas se forem isoladas em mais de uma amostra de um mesmo paciente.
O número máximo aceitável de frascos é de até 4 por dia para um mesmo paciente,
mas como o custo desse material é elevado, deve-se procurar evitar a solicitação desse tipo
de pedidos sempre que possível.
Não se deve colher amostras a partir de um cateter intravascular porque essa prática
aumenta o número de isolamentos de bactérias presumidamente contaminantes.
O HRAS utiliza um equipamento automatizado para a realização de hemoculturas
(Bact-Alert) que se baseia na detecção colorimétrica de CO2 produzido pelo metabolismo
microbiano. A estufa possui ainda movimento de rotação dos frascos. A cada 10 minutos o
equipamento faz uma leitura de todos os frascos. Se em algum deles tiver havido
crescimento suficiente para mudança de cor do fundo do frasco, o aparelho emite um sinal
sonoro e seu monitor alerta para a existência de um recipiente com crescimento microbiano.
Cada frasco costuma se positivar geralmente em 24 a 48 horas de incubação, exceto nos
casos de crescimento de leveduras ou bactérias anaeróbicas onde esse tempo pode ser mais
elevado.
Durante o ano de 2006 o laboratório recebeu 1976 frascos de hemoculturas de
pacientes oriundos, principalmente, do Berçario, UTI neonatal, UTI Pediátrica e Cirurgia
Pediátrica.
Dessas 314 foram positivas (15,9% do total), sendo 195 (62,1%) constituída pelo
grupo dos cocos gram positivos, 82 (26,1%) pelo dos bacilos gram negativos, 32 (10,2%)
por leveduras e o restante por bactérias fastidiosas (H. influenzae e N. meningitidis) e
bacilos gram positivos(Corynebacterium spp.).
Entre os cocos gram positivos houve predomínio de estafilococos coagulase
negativos(65,6% do grupo), especialmente o S. epidermidis, sendo a maioria resistente à
oxacilina.
A característica maior dessas cepas é a grande produção de uma substância mucóide
que, ao infectar implantes biomédicos como cateteres intravasculares, aumenta
consideravelmente de seu potencial patogênico.
Entre os bacilos gram negativos predominaram as cepas de Klebsiella pneumoniae e
Serratia marcescens(68,3% do grupo).
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Entre as leveduras a espécie mais isolada foi a Candida guillermondii(43,7% do
grupo).
Ao longo dos anos, tem-se verificado um aumento gradual na incidência de
hemoculturas positivas com isolamento de leveduras, o que pode estar relacionado a
diversos fatores, como maior tempo de internação dos pacientes imunodeprimidos, uso
maior de associações de antibióticos, maior nascimentos de prematuros, maior utlização de
procedimentos de risco, uso mais elevado de nutrição parenteral, entre outros.
LCR:
O LCR é coletado geralmente por meio de punção lombar, entre L3 e L4, após
prévia antissepsia do local a ser puncionado. O material é recolhido em dois frascos estéreis
e imediatamente semeado em meio de agar chocolate. Deve ser em seguida encaminhado
ao laboratório. Lembrar ainda que não se deve manter esses materiais em geladeira ou a
baixas temperaturas, por afetar bactérias como o meningococo e o Haemophilus influenzae,
comumente envolvidas em quadros de meningite bacteriana.
No laboratório será feita bacterioscopia e pesquisa de antígeno bacteriano quando a
bacterioscopia for sugestiva de meningite (glicose baixa, proteina elevada, aumento de
polimorfonucleares, etc.). Nos casos de suspeita de infecção por micobactéria ou por
fungos (Cryptococcus neoformans) poderá ser feita uma pesquisa de BAAR ou de
leveduras (método da tinta nanquim), após prévia centrifugação do material (3000 rpm por
30 minutos), desprezando o sobrenadante e utilizando apenas o sedimento para a análise.
Líquidos orgânicos:
Materiais nobres como liquido pleural, líquido peritoneal, liquido pericardico,
líquido sinovial e liquido ascítico devem ser colhidos, após antissepsia prévia, por aspiração
de seringa com agulha em um volume de 5 a 10 ml.
Após entrega imediata ao laboratório, o material deve ser utilizado parte para a
inoculação dos meios de cultura e parte para a realização de exames diretos.
Além do uso de meios tradicionais como o agar sangue, agar MacConkey e o agar
chocolate, pode-se inocular parte do material em um frasco normalmente utilizado para
hemocultura, que será depois incubado.
Para os exames diretos recomenda-se (nos casos de material fluido) centrifugação
da amostra (3000 rpm por 30 minutos), sendo descartado o sobrenadante e o esfregaço
realizado a partir do sedimento. Poderá ser feito Gram, Zihel e pesquisa de fungos, de
acordo com o pedido médico e a suspeita clínica.
Secreções do trato respiratório:
a)secreção de nasofaringe – nos casos de suspeita de coqueluche, colher o material com
swab (previamente umedecido em água ou salina estéril) e inocular logo em seguida em
meio de Regan-Lowe agar (composto de agar carvão com 10% de sangue de cavalo,
além de cefalexina) e depois incubar em estufa. Nos casos de pesquisa de portadores de
S. aureus (como MRSA), colher o material com swab e semear em agar manitol sal. A
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secreção de nasofaringe não é indicada para a pesquisa de agente etiológico de sinusite
bacteriana.
b)Secreção de orofaringe – colher a amostra com o uso de um abaixador de língua e de um
swab. Introduzir o swab entre os pilares das amigdalas e atrás da úvula, sem tocar a
língua e as bochechas. Procurar colher o material das áreas de hiperemia, próximas aos
pontos de supuração. Para a pesquisa de Streptococcus beta-hemolítico do grupo A (S.
pyogenes) devemos semear o material em um meio seletivo, onde a chance de
isolamento dessa bactéria é maior, como em agar sangue com trimetoprim e em caldo
Todd-Hewitt. Nos casos de suspeita de epiglotite, em que o agente costuma ser o H.
influenzae, devemos semear o material em agar chocolate suplementado (com fatores V
e X) ou usando a técnica do satelitismo, com uma estria de estafilococo (com as placas
incubadas em atmosfera de 5% de CO2). Nos casos de suspeita de difteria colher o
material a partir da placa suspeita, e fazer duas lâminas. Uma para a coloração de Gram
e a outra para a de Löffler (azul de metileno), em que se procura visualizar granulações
metacromáticas de espécies de Corynebacterium.
c)Escarro, lavado broncoalveolar e aspirado traqueal – o escarro (que não é considerado
um material ideal em casos de pneumonia) deve ser colhido pela manhã, após uma tosse
profunda, antes de se alimentar e após lavar a boca com água. Uma maneira de avaliarmos
se a amostra foi adequadamente colhida é relação de polimorfonucleares e células
epiteliais, em campo de 400x. Mais de 10 polimorfonucleares/campo e menos de 10 células
epiteliais/campo é a relação esperada nesses casos. As bactérias que se procura isolar a
partir do escarro dependem do tipo de paciente. Se a infecção for comunitária procuramos
isolar o Streptococcus pneumoniae, o Staphylococcus aureus e o Haemophilus influenzae,
principalmente. Já se for de origem hospitalar, são as enterobactérias (Klebsiella
pneumoniae, Serratia marcescens, etc.) e os bacilos gram negativos não fermentadores
(Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter spp., etc.) os mais envolvidos com essas
infecções. Em conseqüência deveremos semear esses materiais em agar sangue, agar
chocolate, agar MacConkey e em um caldo como o tioglicolato ou o tripticase soja. O
aspirado traqueal é obtido em pacientes intubados, através da sonda de aspiração. Os
resultados podem refletir apenas colonização, sendo sua interpretação, muitas vezes, difícil.
No caso de lavado broncoalveolar (considerado o método mais adequado para investigação
microbiológica do trato respiratório inferior) é necessária a realização de contagem de
colonias (usando a técnica da alça calibrada de 0,01 ml onde o nº de colonias encontradas
na placa de agar sangue deve ser multiplicado por 100). Em consequência, o tempo entre a
coleta da amostra e a semeadura do material deve ser mínimo (até 30 minutos). A presença
de mais de 10 mil UFC/ml de uma determinada espécie é sugestiva de ter significado
clínico.
Urina:
Pelo menos quatro tipos de amostras de urina podem ser coletadas para cultura.
Em se tratando de neonatos ou crianças de baixa idade pode-se utilizar a punção
suprapúbica. Este procedimento requer que a bexiga esteja cheia e que antes se faça uma
antissepsia da pele. A bexiga é puncionada acima da sínfese pubiana e cerca de 5 a 10 ml
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de urina são coletados. A amostra deve ser imediatamente encaminhada ao laboratório e
logo em seguida semeada nos meios convencionais (agar sangue e agar MacConkey).Aqui
qualquer contagem de colônias é significativa, portanto devemos utilizar nesses casos uma
alça calibrada de até 0,1 ml. Em crianças maiores, mas ainda sem controle esfincteriano,
pode-se utilizar saco coletor. Deve ser feita uma prévia higienização do períneo, coxas e
nádegas com água e sabão neutro. Caso não haja micção, o saco coletor deverá ser trocado
a cada 30 minutos, repetindo-se a higienização do períneo.
No caso de adultos o procedimento mais utilizado é a coleta do jato médio de urina. A
mulher deve proceder a uma higiene da área uretral e períneo com água e sabão, com gaze
estéril. Em seguida deve secar a área lavada com uma gaze seca. Afastar os grandes lábios e
em seguida desprezar o primeiro jato de urina (de preferência da 1ª urina da manhã)e colher
o jato médio dentro de um recipiente estéril de boca larga, sem encher demasiadamente o
recipiente (cerca de metade do volume do frasco), sendo desprezado o jato final . Em
seguida fechar o frasco hermeticamente e conservar em gelo até a entrega ao laboratório.
Nos casos em que essa entrega não puder ser imediata, a urina pode ser mantida em
geladeira (2 a 8°C) por até 24 horas. Nos casos de pacientes masculinos a recomendação é
de que lavem a glande com água e sabão, e recolham a pele do prepúcio antes de urinar.
Colher o jato médio e desprezar o jato final de urina.
No caso de paciente em uso de cateter a recomendação é que se puncione a cânula do
coletor, após prévia desinfecção com álcool a 70%. Com seringa e agulha puncionar a
cânula e aspirar até 10 ml de urina, transferir em seguida para um frasco esterilizado e
encaminhar ao laboratório. Este material não é considerado o mais adequado devido aos
riscos de contaminação, porém em casos excepcionais também poderá ser utilizado. Nunca
utilizar urina colhida a partir do saco coletor de paciente cateterizado.
Com relação à contagem de colônias, os critérios de Kass, elaborados em 1956, já não
são tão verdadeiros hoje em dia. Como exemplo, podemos citar o caso da síndrome uretral
aguda, em que mulheres com vida sexual ativa podem desenvolver infecção urinária com
contagens tão baixas como 100 a 10 mil UFC/ml. Um dos motivos para a existência de
infecção com esse número baixo de micróbios pode ser o aumento do número de micções
induzido pela infecção ou o aumento da ingestão de líquidos que leva à diluição da amostra
de urina. Nesses casos é fundamental que o médico indique a possibilidade desse evento -
síndrome uretral aguda - para que o laboratório possa dar valor a contagens tão baixas
quanto essas.
Trato genital:
a)feminino – a secreção vaginal pode ser um excelente material para a realização de
exame direto, realizado logo após a coleta da amostra. Primeiro a suspensão de
um material recém-colhido é feita com cerca de 1 ml de salina estéril. Após
agitação uma gota é colocada entre lâmina e lamínula e com outra parte é feito
esfregaço para coloração de Gram e Giemsa. Com esses três exames podemos
fazer diagnósticos variados, como nas vaginoses, causadas por agentes diversos
como a Gardnerella vaginalis (com a presença das “clue cells”, ou seja células
epiteliais recobertas de flora cocobacilar), a Candida albicans (presença de
leveduras e pseudo-hifas) e o Trichomonas vaginalis (onde o exame direto
permite verificar o movimento e a forma do protozoário). No caso de material
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para diagnóstico de cervicite por gonococo, a amostra deve ser colhida com swab
introduzido 1 a 2 cm no canal endocervical e em seguida feita rotação por alguns
segundos. Retirar o swab sem tocar a superfície da vagina. Colocar o swab em
meio de transporte, ou preferencialmente semear diretamente em meio de
Thayer-Martin, depois levar ao laboratório e incubar em estufa com atmosfera de
5% de CO2.
b)Masculino – para a pesquisa de gonococo pode-se usar tanto a secreção uretral como
o 1º jato de urina. No caso de haver secreção – colhida, de preferência, pela
manhã, antes de urinar - o swab é inserido 2 a 4 cm no interior da uretra e é feita
uma rotação. Em seguida o material é colocado em meio de transporte (meio de
Stuart) e semeado da mesma forma que em pacientes do sexo feminino. Em
homens a bacterioscopia da secreção uretral pode ser diagnóstica, por meio da
detecção de diplococos gram negativos intracelulares. Nos casos de ulcera onde
se for pesquisar o Haemophilus ducrey, deve-se coletar o material da base da
ulcera. Ao Gram vamos encontrar bacilos gram negativos pleomórficos e
cocobacilos em cadeias.
Cateter:
O cateter (periférico, central, arterial, Swan-Ganz, etc.) deve ser retirado do paciente
com os mesmos cuidados de antissepsia da pele que precederam a sua colocação, para se
evitar a sua contaminação com a microbiota da pele. Após remoção do cateter com técnica
asséptica, cortar os 5 cm da ponta onde estava inserida a veia do paciente, e em seguida
colocá-la em um frasco estéril e encaminhá-lo imediatamente ao laboratório.
Com a ajuda de uma pinça rolar o cateter sobre a superfície de uma placa média de
Agar sangue e em seguida colocá-lo em um tubo com caldo (tioglicolato, tripticase soja,
etc.). Incubar a placa e o tubo por até 48 horas. Fazer a contagem de colônias na placa de
Agar sangue. Segundo a técnica de Maki, devem ser valorizadas as contagens de colônias
iguais ou maiores do que 15 UFC/placa. Se não houver crescimento na placa e houver
crescimento no caldo, devemos repicar o caldo para novo Agar sangue e Agar MacConkey,
para a identificação desses microrganismos. É importante ressaltar que mesmo sem haver
isolamento na placa (ou com contagens consideradas baixas) pudemos verificar que havia
resultados significativos, ao isolarmos bactérias que normalmente não seriam valorizadas.
Um dos motivos para isso poderia ser a existência de bactérias apenas no interior do cateter
e que a simples rolagem não permitiria o seu isolamento.
Fezes:
A amostra utilizada pode ser 1 a 2 g de fezes ou swab retal. De preferência o
material deve ser colhido e imediatamente encaminhado ao laboratório. Algumas bactérias,
como as espécies de Shigella, resistem pouco a variações bruscas de pH e por esse motivo
as amostras devem ser colhidas em meio tamponado (tampão fosfato 0,03M com igual
volume de glicerol) ou meio de transporte, como o Cary-Blair. A bacterioscopia das fezes
pode auxiliar para a pesquisa do provável agente causador do quadro diarréico
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(estafilococos, leveduras, etc.). As bactérias habitualmente pesquisadas são a Salmonella,
Shigella, E. coli (enteropatogenica, enteroinvasora, etc.), Yersinia enterocolítica e o
Campylobacter (pequenos bacilos gram negativos curvos ou em forma de asa de gaivota).
As espécies de Aeromonas (A. hydrophila e A. caviae) e a Plesiomonas
shigelloides(bacilos gram negativos oxidase positivos) e a E. coli entero-hemorrágica
(O157: H7) são espécies mais raras de serem isoladas, mas que devem ser pesquisadas
quando houver indicação clínica. Por exemplo, nos casos de suspeita de síndrome
hemolítico uremica, causada pela E. coli O157:H7, devemos procurar utilizar o meio de
Agar MacConkey sorbitol (ou procurar identificar cepas de E. coli que não utililizam o
sorbitol). Esse meio pode tornar-se ainda mais seletivo se acrescentarmos cefixime e
telurito de potássio. A síndrome hemolítico-uremica se caracteriza por um quadro de
anemia hemolítica, insuficiência renal aguda e trombocitopenia. A ingestão de hamburgers
contaminados tem sido a causa mais comum de eventuais surtos, apesar de outras fontes de
contaminação terem sido descritas. Já a Aeromonas costuma ser mais facilmente isolada
usando meio seletivo como o agar sangue com ampicilina (20 mcg/ml) e ainda o CIN agar,
que também aumenta a possibilidade de isolamento de Yersinia.
Nos casos de suspeita de cólera o material deverá ser enviado em meio tamponado
para o laboratório central de saúde pública, onde será feita a pesquisa do Vibrio cholerae,
ou se poderá isolar no próprio laboratório usando-se o agar TCBS (tiosulfato-citrato-sais
biliares-sacarose), onde as colonias da bactéria aparecem como colonias amarelas, por
fermentarem a sacarose. O V. cholerae é oxidase positivo e aglutina com o antisoro
específico.
Na coprocultura comum, logo após a chegada do material ao laboratório, fazer
bacterioscopia e semear em caldo de enriquecimento (GN ou tetrationato), agar sangue de
Skirrow - que contem sangue de cavalo, vancomicina, polimixina B e trimetoprim - , agar
MacConkey e agar SS. A placa de agar sangue deve ser colocada em microaerofilia
(atmosfera contendo 5% de oxigênio, 10% de CO2 e 85% de N2) por até 72 horas, a 42°C.
A espécie mais envolvida com quadros diarreicos é o C. jejuni, que hidroliza o hipurato, é
resistente ao disco de cefalotina e geralmente é sensível ao de ácido nalidíxico. As crianças
abaixo de dois anos de idade são particularmente susceptíveis às infecções por
Campylobacter.
Cerca de quatro horas após a semeadura inicial, deve-se repicar o caldo de
enriquecimento para outro agar SS, como nova tentativa de se isolar colônias de Salmonella
ou de Shigella.
Secreções diversas:
a)de ouvido – o ideal é a amostra colhida pelo médico por aspiração através do tímpano,
ou seja a cultura de secreção de ouvido médio. Se for necessária a coleta de material
do ouvido externo, o próprio pessoal do laboratório poderá realizá-la, desde que
utilize o procedimento adequado. Limpar o canal auditivo com antisséptico, em
seguida lavar com solução fisiológica estéril. Só depois colher o material com swab
estéril. Fazer esfregaço para Gram e semear em um caldo (tioglicolato ou tripticase
soja), agar sangue, agar chocolate e agar MacConkey. As bactérias mais
freqüentemente envolvidas são o Streptococcus pneumoniae, e o Haemophilus
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influenzae. Também pode ocorrer a participação de enterobactérias, bacilos gram
negativos não fermentadores e do S. aureus.
b)Ocular – geralmente a coleta é feita com swab de material obtido por esfregaço do
saco conjuntival do olho afetado, a não ser que o médico solicite outro tipo de
amostra - blefarite: inflamação das margens da pálpebra; ceratite: inflamação da
córnea - . As bactérias mais freqüentemente envolvidas são o S. aureus, o S.
pneumoniae, as enterobactérias (especialmente em recém-nascidos) e o
Haemophilus influenzae. Lembrar ainda da possibilidade de conjuntivite
gonocócica em neonatos. Fazer esfregaço para Gram, e semear em agar sangue,
agar chocolate, agar MacConkey e caldo (tioglicolato ou tripticase soja).
c)Secreção de ferida operatória – colher o material com swab (com meio de Stuart) das
bordas da lesão, após lavar a secreção purulenta com salina estéril. No laboratório
fazer esfregaço para Gram e semear em agar sangue, agar chocolate,agar
MacConkey e caldo tioglicolato. Os estafilococos (coagulase positivo e coagulase
negativos) são as bactérias mais freqüentemente envolvidas, depois as
enterobactérias e finalmente os bacilos gram negativos não fermentadores.
Material com suspeita clínica de infecção por anaeróbios:
Geralmente as infecções por anaeróbios estão relacionadas às infecções próximas as
membranas mucosas (boca, anus), com microbiota mista, após mordedura humana ou
de animal, infecções com odor fétido, com produção de gás e infecções associadas a
tumores ou a áreas com vascularização deficiente, como em pacientes diabéticos
apresentando necrose de extremidades. Um material cujo exame microscópico (Gram)
apresentou microbiota abundante e que depois a cultura para aeróbios foi negativa
também é sugestiva de ser causada por anaeróbios.
As amostras devem ser coletadas com agulha e seringa, sem ar (ou usar meio de
transporte para anaeróbios). Logo em seguida encaminhadas ao laboratório. Fazer
inoculação em frasco de hemocultura (frasco anaeróbio), em caldo tioglicolato e
esfregaço para Gram. Também semear em meios sólidos para anaeróbios, como o agar
sangue anaeróbico, que deve ser incubado por 72 horas em jarra com atmosfera de
anaerobiose.
A bacterioscopia pode fornecer informações bastante úteis: bacilos gram positivos
com esporos, sugerem espécies do gênero Clostridium; bacilos gram negativos
fusiformes sugerem bactérias do gênero Fusobacterium; vários tipos bacterianos podem
ser encontrados nas infecções mistas como peritonites, em que há associação de
anaeróbios estritos como os Bacteróides e facultativos como as diferentes espécies de
enterobactérias.
Material com suspeita de infecção por micobactérias de crescimento rápido(MCR):
É cada vez mais frequente o encontro de algumas MCR em infecções hospitalares -
como Mycobacterium abscessus, M. massiliense, M. chelonae, M. bolletii e M.
fortuitum - decorrentes de procedimentos invasivos como injeções, sessões de
mesoterapia, sessões de acupuntura, cirurgias oculares (transplantes de córnea, cirurgias
refrativas, etc.) e cirurgias plásticas estéticas (lipoaspiração, próteses de mama, etc.).
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Essas infecções são associadas, principalmente, à materiais utilizados em videocirurgias
e que são reutilizados após desinfecção química.Os componentes do grupo MCR são
muito resistentes aos antimicrobianos e a vários desinfetantes, especialmente o
glutaraldeído. No entanto, costumam responder ao tratamento com associação de
antimicrobianos, como ciprofloxacina mais claritromicina por um período mínimo de
seis meses.
As MCR podem crescer em meios comuns, como agar sangue, agar Mueller-Hinton
e agar Sabouraud. Caracterizam-se por formarem colonias visíveis em três a sete dias de
incubação em temperatura ambiente (vedar a placa para evitar desidratação).
Para diagnóstico, coletar secreção ou fragmento de tecido e fazer pesquisa para
BAAR (material concentrado por centrifugação), além de cultura para micobactérias
usando, de preferência, meio sólido e meio líquido.
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Exames diretos
Os exames diretos constituem alguns dos métodos mais rápidos e eficientes de
diagnóstico disponíveis em microbiologia. Além de poder servir de guia terapêutico para se
iniciar uma antibioticoterapia empírica com maior racionalidade, como em uma meningite
bacteriana em que a bacterioscopia do LCR ajuda a definir o provável agente etiológico e o
mais adequado grupo de antimicrobianos a ser empregado no tratamento, alguns exames
diretos chegam a diagnosticar a doença apresentada pelo paciente, como é o caso da
pesquisa de BAAR de linfa no caso de uma suspeita de hanseníase.
Algumas técnicas de exames diretos de amostras não coradas:
1. Montagem com salina.
Material: solução aquosa de salina estéril (0,85%), lamina de microscopia e lamínula.
Técnica: dispersar uma pequena quantidade da amostra em uma gota de salina sobre
uma lamina. Colocar lamínula e examinar ao microscópio com aumento de 40X,
fechando o diafragma para diminuir a passagem da luz transmitida.
Objetivo: verificar a presença de fungos, protozoários, etc.
2. Preparação com tinta nanquim.
Material: tinta nanquim, lâmina de microscopia e lamínula.
Técnica: após centrifugado o LCR, uma gota do sedimento é colocada ao lado de uma
gota de tinta. Misturar as duas gotas e colocar lamínula. Fazer emulsão fina, senão nada
poderá ser visto. Fazer leitura ao microscópio com aumento de 40X.
Objetivo: pesquisa de leveduras de Cryptococcus neoformans, cuja característica é a
presença de grande halo ao redor da levedura devido à sua capsula.
3. Montagem com KOH.
Material: solução aquosa de KOH a 10%, lamina de microscopia e lamínula.
Técnica: após ser feito raspado (de pele, couro cabeludo, unha, etc.) o material é
suspenso em uma gota de solução de KOH a 10%, sobre uma lamina. Em seguida
colocar lamínula e aquecer um pouco sobre uma chama de bico de Bunsen, para
acelerar o processo de clarificação. Deixar a lamina por cerca de 15 a 30 minutos à
temperatura ambiente, antes de levar ao microscópio . Fazer leituras com objetivas de
10 e de 40X.
Objetivo: pesquisar a presença de fungos (hifas, esporos, leveduras, etc.) em material
que contem queratina.
4. Pesquisa em campo escuro.
Material: microscópio com condensador de campo escuro, lâmina, lamínula, e salina.
Técnica: Colher secreção serosa do paciente (lesão tipo cancro duro da sífilis) e colocar
sobre a lamina. Colocar laminula e examinar imediatamente depois em microscópio
dotado de condensador de campo escuro (aumentos de 40 e de 100X).
Objetivo: pesquisar a presença de espiroquetas, por meio de seu movimento e sua
morfologia espiralar característica.
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Algumas técnicas de exames diretos de amostras coradas:
1. Löeffler.
Composição:
Azul de metileno – 0,3 g
Àlcool etílico 95% - 30 ml
Água destilada – 100ml
Técnica: após fixar o esfregaço pelo calor, deixar o corante agir por um minuto e em
seguida lavar a lamina com água corrente e deixar secar.
Objetivo: procurar bacilos gram positivos pleomórficos que apresentem granulações
metacromáticas (azul-escuras). Podem ocorrer ainda em outros microrganismos, como
nas bactérias do gênero Propionibacterium e nos actinomicetos. Assim um resultado
conclusivo só poderá ser dado por meio de cultura para bacilo diftérico.
2. Gram.
Composição:
a) Cristal violeta – 2,0 g
Álcool etílico 95% - 20 ml
Oxalato de amonio – 0,8 g
Água destilada – 100 ml
b) Iodeto de potássio – 2,0 g
Cristais de iodo – 1,0 g
Água destilada – 100 ml
c) Acetona – 50 ml
Álcool etílico 95% - 50 ml
d)Safranina O – 2,5 g
Àlcool etílico 95% - 10 ml
Água destilada – 90 ml
Técnica: após fixar o esfregaço pelo calor, colocar o corante inicial (cristal violeta)
por 1 minuto. Depois lavar com água corrente e colocar solução de iodo por mais
um minuto. Descorar rapidamente (cinco segundos) e depois lavar com água
corrente. Deixar o contracorante (safranina) agir por 30 segundos. Lavar com água
corrente e deixar secar.
Objetivo: descrever as principais bactérias por meio de sua morfologia e por sua
capacidade de reter a associação cristal violeta-iodo, ou seja, em gram positivas
(coradas em purpura) ou gram negativas (coradas em vermelho).
3. Ziehl-Neelsen.
Composição:
a)Cristais de fenol – 2,5 ml
Álcool etílico 95% - 5 ml
Fucsina básica – 0,5 g
Água destilada – 100 ml
b)Ácido clorídrico concentrado – 3,0 ml
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Álcool etílico 70% - 100 ml
c)Azul de metileno – 0,5 g
Ácido acético glacial – 0,5 ml
Água destilada – 100 ml
Técnica: após fixar o esfregaço pelo calor, colocar o corante de fucsina e aquecer a
lamina até a emissão dos primeiros vapores. Deixar agir por cinco minutos. Lavar com
água corrente e em seguida descorar com solução de álcool-ácido. Lavar novamente
com água corrente e em seguida colocar solução de azul de metileno. Deixar agir por
um minuto e depois lavar com água. Deixar secar. Ler toda a lamina com aumento de
100X.
Objetivo: detectar a presença de BAAR, que se cora em vermelho.
4. Wright-Giemsa.
Composição:
Corante de Wright em pó – 9,0 g
Corante de Giemsa em pó – 1,0 g
Glicerina – 90 ml
Álcool metílico absoluto – 2910 ml
Misturar em frasco âmbar e deixar estabilizar por um mês antes de usar.
Técnica: usar metodologia semelhante a utilizada em hematologia.
Objetivo: importante na pesquisa de protozoários (Leishmania) e fungos (Histoplasma),
ou ainda na pesquisa de inclusões intracelulares (Chlamydia).
5. Solução de lactofenol.
Composição:
Cristais de fenol – 20,0 g
Ácido láctico –20,0 g
Glicerol – 40 ml
Água destilada – 20 ml
Dissolver o ácido láctico e glicerol em água destilada. Depois acrescentar azul de
algodão (0,05 g). Deixar a suspensão repousar por dois dias e, em seguida, filtrar em
papel.
Técnica: uma gota do corante sobre uma preparação de pesquisa de fungos. Colocar
lamínula em ângulo de 45º, para evitar a formação de bolhas. Fazer leitura com objetiva
de 10 e de 40X.
Objetivo: ver as estruturas coradas de fungos filamentosos (micélios e órgãos de
reprodução).
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Meios de cultura
Os meios de cultura utilizados em microbiologia podem ser de vários tipos:
a-Meios sólidos: geralmente utilizados para obter colônias isoladas, como o agar sangue
e o agar MacConkey.
b-Meios líquidos: geralmente utilizados para facilitar o desenvolvimento microbiano,
porém sem propiciar a obtenção de colônias isoladas, como o caldo tioglicolato ou o
caldo tripticase soja.
c-Meios de transporte: servem apenas para a manutenção da viabilidade das bactérias
entre a coleta de material e a semeadura nos meios adequados. Exemplos: meio de
Stuart (secreções) e meio de Cary-Blair (fezes).
d-Meios não seletivos: são meios com suplemento que facilitam o crescimento
microbiano, como o agar sangue e o agar chocolate.
e-Meios seletivos: meios que contêm substâncias inibidoras do crescimento de alguns
grupos de bactérias, como o agar MacConkey que inibe o crescimento de cocos
gram positivos, sendo útil para o crescimento de bacilos gram negativos.
f-Meios diferenciais: meios usados como prova bioquímica, ou seja para avaliar se o
microrganismo possui uma enzima responsável por uma determinada via de
atividade metabólica. Exemplo: agar DNAse para verificar se a bactéria possui a
enzima desoxirribonuclease, que degrada o DNA.
g-Meio base: geralmente são meios utilizados como base à qual adicionamos
suplementos para obtermos um produto como o agar sangue, em que podemos usar
como meio base o agar tripticase soja ou o agar Columbia.
Alguns dos meios mais usados em microbiologia:
a-Agar sangue: meio não seletivo que possibilita o crescimento de diversos grupos
microbianos e permite verificar a presença de hemólise. Composição: meio base
agar tripticase soja com 5% de sangue de carneiro (adicionados quando o meio
estiver em torno de 50°C). Distribuir 20 a 25 ml em placas de 90 mm.
b-Agar chocolate: meio não seletivo que possibilita, além do que se obtem com o
uso do agar sangue, isolar ainda cepas de Haemophilus e de Neisseria.
Composição: agar GC ou agar Mueller-Hinton com 5% de sangue de carneiro
(adicionados com temperatura em torno de 80°C). Depois de achocolatado, o
meio é resfriado até 50°C quando então é adicionado o suplemento VX (10 ml
de suplemento/litro de meio).Distribuir de forma semelhante a do agar sangue.
c-Agar MacConkey: meio seletivo usado para isolamento de bacilos gram negativos
e para verificar a capacidade de fermentação da lactose. Lactose negativas são as
colonias transparentes. Lactose positivas as colonias de cor rosa.
d-Agar SS
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: meio seletivo e diferencial usado para o isolamento de Salmonella e
Shigella. Permite diferenciar as cepas lactose positiva e lactose negativa, além
de permitir visualizar as que produzem H2S.
e-Agar Thayer-Martin: meio seletivo usado para isolamento de cepas de Neisseria
gonorrhoeae. Composição: agar chocolate com suplemento VX e suplemento
1
Alguns preferem utilizar o Agar XLD, por permitir mais facilmente identificar colônias de Shigella
e de Salmonella.
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VCNT (vancomicina, colistina, nistatina e trimetoprim), adicionados com o
meio com temperatura em torno de 50°C.
f-Caldo tioglicolato: usado para o crescimento de vários grupos de microrganismos,
inclusive anaeróbios. O meio possui um indicador (resazurina) que torna rosa a
parte do meio em contato com o oxigênio. Para haver crescimento de anaeróbios
o material deve ser semeado no fundo do tubo, sem agitar.
g-Caldo Todd-Hewitt: ao meio base é adicionada colistina (10 mcg/ml) e ácido
nalidíxico (15 mcg/ml). É um meio de enriquecimento para isolamento de
estreptococos do grupo A.
h-Caldo tetrationato: caldo de enriquecimento utlizado para o isolamento de
Salmonella.
i-Caldo descarboxilase: usado para avaliar a capacidade bacteriana de descarboxilar
alguns aminoácidos (arginina, lisina e ornitina).
j-Agar sangue anaeróbico: agar sangue utilizado para isolamento de anaeróbios.
Composição: Brucella agar como meio base, acrescido de sangue de carneiro a
5%, mais solução de hemina e vitamina K.
k-Meios para fungos: geralmente utilizamos um meio com antibióticos, Mycosel,
para inibir o crescimento de bactérias contaminantes e um meio sem
antibióticos, o agar Sabouraud, que devido ao pH baixo, também tem algum
efeito inibidor sobre as bactérias. Lembrar que o Cryptococcus neoformans é
sensível à cicloheximida, portanto cresce apenas no agar Sabouraud.
l-Meios para micobactérias: o tradicional é o meio de Lowestein-Jensen sem
antibióticos, podendo também ser usado com antibióticos (anfotericina B, ácido
nalidíxico e penicilina) para os materiais biológicos que apresentam
contaminação com microbiota normal. No entanto, devido à maior rapidez no
isolamento de micobactérias, é cada vez maior a utilização de métodos semi-
automatizados, como o do equipamento Bactec 460, que utiliza o princípio da
detecção da liberação de CO2 devido ao crescimento microbiano.
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Identificação preliminar de culturas bacterianas, leveduras e fungos
filamentosos
Após cêrca de 24 a 48 horas de incubação, o microbiologista deverá iniciar a
interpretação das culturas, o que requer habilidade e experiência. A partir da observação
das características de cada colônia e em que meios se desenvolve, o técnico partirá para
a realização de outros procedimentos necessários à correta identificação preliminar das
bactérias envolvidas em cada processo infeccioso.
Assim, se estamos trabalhando com uma secreção traqueal em agar sangue, e se
verificarmos a presença de uma colônia achatada, mucóide, e com halo de hemólise
alfa, pensaremos na possibilidade de se tratar de um pneumococo. A partir daí, iremos
partir para a realização da prova da catalase e do Gram (e depois a sensibilidade à
optoquina) de forma a confirmar a nossa suspeita.
Se ao invés de uma placa de agar sangue, estivéssemos trabalhando com uma placa
de agar MacConkey, e tivesse havido o crescimento de colonias mucóides, lactose
positivas, a suspeita agora passaria a ser se tratar de uma colonia de Klebsiella
pneumoniae. O procedimento então seria a realização de uma prova de oxidase, que
deveria ser negativa por se tratar de uma enterobactéria. Em seguida passaríamos para
outras provas de identificação bioquímica, até a identificação definitiva.
A seguir alguns passos para identificação preliminar de alguns tipos de colonias, a
partir de diversos tipos de materiais:
1.Colonias brancas ou amarelas, 2 a 3 mm de diâmetro,
cremosas, com zona de beta-hemólise, suspeitas de serem
estafilococos – realizar prova da catalase (provavelmente
positiva). Se necessário, fazer Gram. Fazer prova da
coagulase, se for estafilococo. Em seguida colocar em painel
para cocos gram positivos.
2.Colonias pequenas, puntiformes, com hemólise beta, suspeitas
de serem estreptococos – realizar prova da catalase (que deve
ser negativa). Se necessário, fazer Gram. Fazer prova da
bacitracina. Colocar em painel para cocos gram positivos.
3.Colonias mucóides, achatadas, com hemólise alfa, sugestivas
de serem pneumococos – fazer a prova da catalase(que deve
ser negativa) e em seguida a prova de sensibilidade à
optoquina. Colocar em painel para cocos gram positivos.
4.Colonias acinzentadas, opacas, com ou sem beta-hemólise,
suspeitas de serem pertencentes ao grupo das enterobactérias
. Fazer Gram e se for um bacilo gram negativo fazer a prova
da oxidase. Se for uma enterobactéria a oxidase será negativa.
Para identificar a espécie deveremos partir para vários testes
bioquímicos, como os existentes nos painéis para bacilos
gram negativos.
5.Colonia apresentando véu, com probabilidade de pertencer ao
gênero Proteus – fazer provas de identificação bioquímica,
como a urease e fenilalanina desaminase ou colocar em
painel para bacilos gram negativos.
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6.Colonias achatadas, opacas, cinza a esverdeadas, com odor de
frutas, sugestiva de pertencerem ao gênero Pseudomonas –
fazer a prova da oxidase (que deve ser positiva). Em seguida
colocar em painel para bacilos gram negativos.
7.Colonias que crescem bem em agar sangue e mal - ou não
crescem - em agar MacConkey . Fazer a prova da oxidase
(que pode ser positiva ou negativa).Se no Gram verificar-se a
presença de cocobacilos gram negativos e a oxidase for
negativa, possivelmente as colonias pertencem ao gênero
Acinetobacter. Confirmar com o painel para bacilos gram
negativos.
8.Colônias que crescem apenas em agar chocolate suplementado
com fatores V e X (ou por meio da prova de satelitismo), em
atmosfera de CO2. Fazer a prova da oxidase (que deve ser
positiva) e o Gram. Se for um cocobacilo gram negativo
curto, pleomórfico, deve tratar-se de colônias de
Haemophylus. Confirmar com o uso de discos de
identificação V e X, em agar não suplementado.
9.Colônias que crescem em agar sangue (em aerobiose) e que ao
Gram aparecem como bacilos gram positivos pleomórficos .
Verificar se tem esporos (bactérias do gênero Bacillus tem
endosporos) ou não. Fazer a prova da catalase (Listeria e
Corynebacterium são catalase positivas). Fazer outras provas
de identificação para esse grupo de bactérias.
10.Colônias pequenas, translúcidas, brilhantes, que crescem bem
em agar chocolate, em atmosfera de 5% de C02, e que podem
ou não crescer em agar sangue. Fazer a prova da oxidase. Se
for positiva, corar pelo Gram. Provavelmente será um
diplococo gram negativo, pertencente ao gênero Neisseria,
especialmente se a amostra for de LCR ou de secreção
uretral.
11.Leveduras:no teste de produção de tubo germinativo para
colonias de leveduras crescidas em agar Sabouraud ou agar
sangue, inocular algumas colonias em substrato adequado
(como soro humano) por 3 horas a 37°C, em tubo de
hemólise. Depois levar ao microscópio e verificar a produção
de tubos germinativos a partir das leveduras. Caso positivo,a
prova irá sugerir tratar-se de Candida albicans, e serve como
prova preliminar de identificação dessa espécie de levedura.
12.Fungos: observação inicial das características macroscópicas
das colonias e observação de suas características
microscópicas coradas com solução de lactofenol,
procurando-se identificar as características taxonômicas dos
micélios vegetativos e das estruturas de reprodução.
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Taxonomia microbiana
A necessidade de uma correta identificação de cada espécie bacteriana se prende,
principalmente, aos estudos epidemiológicos e aos de vigilância sanitária. Antigamente
os estudos de taxonomia dependiam dos testes bioquímicos, essencialmente. Com o
avanço da biotecnologia, atualmente os estudos da sistemática das bactérias e outros
microrganismos estão ligados, predominantemente, aos de biologia molecular.
Sistemática, ou a ciência de classificação dos organismos vivos inclui a
classificação, a nomenclatura e a identificação dos seres.
O objetivo da classificação é fazer com que se possa generalizar o conhecimento de
um grupo de organismos que têm semelhanças entre si. Exemplo: a Escherichia coli tem
semelhança com outras enterobactérias, como a Klebsiella pneumoniae, o Proteus
mirabilis e a Salmonella enterica. Todas são bacilos gram negativos, reduzem nitrato a
nitrito e são oxidase negativas.
A nomenclatura utilizada pelos microbiologistas tem como idioma o latim, sendo
dado a cada organismo um nome duplo, em que o primeiro é relativo ao gênero e o
segundo à espécie. O gênero é representado por uma espécie tipo, enquanto a espécie é
representada por uma determinada cepa que é reconhecida em uma coleção de culturas
bacterianas e que fica disponível a todos os microbiologistas, como as cepas ATCC
(American Type Culture Collection) e NTCC (National Type Culture Collection).
A última revisão do Código Internacional de Nomenclatura Bacteriana foi publicada
em 1992, sendo que as emendas são publicadas no International Journal of Systematic
and Evolutionary Microbiology.
A hierarquia da nomenclatura bacteriana é ordem, família, tribo, genêro e espécie.
A identificação é o processo por meio do qual um determinado microrganismo é
reconhecido como pertencente à uma determinada espécie e dessa forma corretamente
designado.
A identificação é baseada na semelhança molecular das bactérias conhecidas, com
relação à uma desconhecida. Pode-se citar como exemplo as semelhanças existentes
entre percentual de conteúdo citosina e guanina, a seqüência de aminoácidos do RNA
ribossomal 16S (o RNA ribossomal permanece mais estável do que os outros ácidos
nucléicos das células) ou a homologia entre as cadeias de DNA de diferentes bactérias
(hibridinização DNA-DNA).
Como critérios de caracterização preliminar – antes do nível molecular – das
bactérias, podemos utilizar algumas características fenotípicas, como:
a)Morfologia – ou seja a morfologia da bactéria, em termos de tamanho, forma, arranjo
das células (se em forma de coco, de bacilo, etc.).
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b)Características de coloração - como são suas características microscópicas (se é um
bacilo gram negativo; se é ou não álcool-ácido resistente; se tem cápsula, etc.).
c)Motilidade – verificada ou por exame direto (microscopia em salina estéril) ou por
inoculação em meio semi-sólido.
d)Presença ou não de esporos – que podem ser visualizados ou pela coloração
de Gram ou por exame direto. A presença de esporos é particularmente útil para
a identificação de bactérias dos gêneros Bacillus(aeróbio) e
Clostridium(anaeróbio).
e)Características de crescimento – como temperatura ótima de crescimento;
tempo de desenvolvimento das colonias; morfologia das colonias nos meios de
cultura (meios não seletivos, seletivos e diferenciais); atmosfera ótima de
crescimento , como bactérias aeróbicas (que requerem O2 para seu
desenvolvimento), bactérias facultativas (que crescem tanto na presença como
na ausência de O2) e anaeróbicas (com crescimento otimizado na ausência de
O2). Também há bactérias que requerem atmosfera de CO2 para se
desenvolverem como as dos generos Neisseria e Haemophilus, como ainda as
do gênero Campylobacter.
f)Bioquímica – por meio de vários testes bioquímicos é possível identificar as
atividades metabólicas das bactérias, que por sua vez tem a ver com as
características de cada espécie. Exemplo: a Klebsiella utiliza o citrato como
fonte de carbono, enquanto que a Escherichia e a Shigella não possuem essa
capacidade metabólica.
g)Sorologia – características antigênicas ligadas a antígenos de superfície das
bactérias servem para propiciar a formação de soros capazes de levar à
aglutinação de bactérias em nível de espécie (como uma sorologia de
identificação de espécies de Samonella
1
e Shigella) ou até de subespécies, como
sorotipos ou sorogrupos. O pneumococo, por exemplo, pode ser identificado em
cerca de 90 sorotipos diferentes por meio de diversos antígenos capsulares.
h)Composição química – pode-se utilizar nesse processo de identificação,
também chamado de quimiotaxonomia , a cromatografia de lipídeos,
fosfolipídeos, ácidos micólicos, ácidos graxos e hidrolisados de peptidoglicano,
ou seja de componentes da parede celular das bactérias. Esses procedimentos
mais complexos são restritos a laboratórios de pesquisa, dotados de maiores
recursos e tecnologia.
1
Como na tipagem de Salmonella como sendo do grupo A, B, C ou D, por exemplo.
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Identificação e testes de sensibilidade por equipamento automatizado
Os dois fabricantes de equipamentos automatizados mais conhecidos no mercado
nacional são a Dade Behring (fabricante do equipamento Walkaway) e a BioMèrieux
(fabricante dos equipamentos automatizados Vitek).
Pela experiência que obtive com ambos os equipamentos, creio que têm muita
semelhança em termos de qualidade e eficiência de trabalho. Cada um tem suas
vantagens e limitações.
Ora um é mais interessante por um aspecto, ora o concorrente o é por outro. A
escolha de cada um é devida, principalmente, à relação custo-benefício na hora de se
fazer uma aquisição, ou de se fazer um contrato do tipo aluguel ou comodato.
1.O sistema Walkaway permite a realização simultânea de testes de identificação e de
sensibilidade, inclusive com determinação de concentração inibitória mínima (teste de
diluição em caldo).
a)Painéis para identificação de bacilos gram negativos: geralmente utilizamos o NC33
(para amostras de urina) ou o NC32 (para outros tipos de amostras).
Preparo do inoculo (sistema Prompt): usando-se um aplicador descartável, tocar a
superfície de 4 a 5 colônias grandes (ou 5 a 10 colônias pequenas), semelhantes,
bem isoladas, a partir de uma placa de agar sangue ou agar chocolate (placa de agar
não inibidor) após incubação de 18 a 24 horas. Retirar o excesso de material do
aplicador e colocar o material em uma garrafa de diluição (água de inoculo). Agitar
a garrafa por alguns segundos. Em seguida colocar o inóculo na bandeja
transparente, que deve estar nivelada. Colocar a tampa. Bater nas laterais da bandeja
para homogenizar. Colocar o RENOK, aspirar e inocular o painel. Colocar óleo
mineral nos poços sublinhados. Tampar a placa e colocar no Walkaway. O ideal é se
fazer o teste da oxidase antes de inocular os painéis, isto porque na hora de serem
identificados os painéis, o aparelho solicita o teste da oxidase para os bacilos gram
negativos.
Testes de identificação:
Fermentação de açúcares (GLU;SUC;RAF;RHA;ARA;INO;ADO;MEL), que
quando positiva leva a formação de uma coloração amarela devido à queda do pH
(detectada pelo indicador vermelho fenol).
Uréia, que havendo a enzima urease leva à formação de amônia, que eleva o pH e
produz coloração vermelha (indicador também é o vermelho fenol).
H2S, este gás é produzido a partir do tiossulfato de sódio e reage com os íons
férricos do meio produzindo um precipitado negro.
Indol, o metabolismo do triptofano resulta na formação do indol, que é detectado
pela adição do reagente de Kovac’s, produzindo cor vermelha.
Lisina(LIS), Arginina(ARG) e Ornitina(ORN), a descarboxilação desses
aminoácidos resulta na formação de aminas básicas detectadas por uma cor púrpura,
dada pelo indicador púrpura de bromocresol.
Triptofano desaminase(TDA), a existência dessa enzima leva à produção de ácido
indolpirúvico que reage com o cloreto férrico levando à produção de um produto de
cor marron escuro.
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Hidrólise da esculina(ESC), que forma um precipitado negro ao reagir com o citrato
de amônio férrico do meio.
Voges-Proskauer(VP), quando a produção de acetoina é detectada pela formação de
cor vermelha depois da adição do KOH e da solução de alfa-naftol.
Galactosidase(ONPG), sendo a presença dessa enzima detectada pela produção de
uma cor amarela.
Utilização de Citrato(CIT), Malonato(MAL), Acetamida(ACE), e
Tartarato(TAR),quando a utilização desses substratos for a única fonte de carbono,
ela é evidenciada pela produção de uma cor azul, devido à elevação do pH, tendo
como indicador o azul de bromotimol.
Oxidação-Fermentação(OF/G) - a oxidação da glicose leva à formação de ácido e
queda do pH, mudando a cor do indicador (azul de bromotimol) para amarelo. Se
nenhum ácido é produzido (não há oxidação) o indicador não sofre mudança de cor.
Para avaliar a fermentação da glicose adiciona-se óleo mineral ao pocinho, mas a
leitura é feita da mesma forma que no caso da oxidação (cor amarela).
Nitrato(NIT), verifica a habilidade da bactéria de reduzir nitrato a nitrito, que é
verificada após adição de dois reagentes (ácido sulfanílico e alfa-naftilamina),
levando à produção de cor vermelha.
Cetrimide(CET), ou seja avalia a capacidade de crescer em meio com cetrimide.
P4, K4, etc., representa a resistência da bactéria em relação à concentrações
específicas de alguns antimicrobianos. Estes dados também participam da
identificação bacteriana.
Definição de um número de biótipo: todos estes testes levam à definição de um
número código de 8 dígitos correspondente ao biótipo da bactéria. Esse número é
comparado com um banco de dados do fabricante, que leva à identificação da
bactéria com probabilidade de até 99,9% de chance de ser exata.
Interpretação dos testes de sensibilidade:
A sensibilidade é determinada comparando-se a concentração inibitória mínima
(CIM) de uma determinada bactéria em relação ao nível alcançável pelo
antimicrobiano no sangue, seguindo as normas recomendadas pelo CLSI , EUA.
Exemplo: para enterobactérias a cefalotina é considerada sensível se a CIM for
menor ou igual a 8,0 mcg/ml; nível intermediário se a CIM for igual a 16,0 mcg/ml ;
resistente se a CIM for maior ou igual a 32,0 mcg/ml. Já para a ciprofloxacina,
ainda em relação às enterobactérias, os níveis de sensível, intermediário e resistente
são de CIM respectivamente menor ou igual a 1,0 ; 2,0 ; e maior ou igual a 4,0. As
diferenças entre os dois antimicrobianos estão relacionadas às diferentes
concentrações terapêuticas encontráveis no sangue e não à maior ou menor ação de
cada um deles.
b)Painéis para identificação de cocos gram positivos: geralmente utilizamos o painel PC
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Preparo do inóculo: Para estafilococos o procedimento utilizado para preparo do
inóculo é semelhante ao utilizado para os bacilos gram negativos, por meio do sistema
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Prompt (tocar 4 a 5 colônias grandes ou 5 a 10 colônias pequenas, etc.). Ao
trabalharmos com estreptococos ou com enterococos, há necessidade de fazermos um
procedimento mais padronizado. Colocar a suspensão bacteriana em 3 ml de caldo BHI
(ou água destilada estéril ), e deixar incubar por 2 a 4 horas. Deixar no turbidímetro na
posição “blank”, um frasco com caldo BHI sem inóculo (ou com água destilada). Na
outra posição, colocar o tubo inoculado, que deverá apresentar turbidez compatível com
a leitura na escala entre 006 a 013, que corresponde ao tubo 0,5 da escala de
McFarland. Com uma pipeta, passar 100 microlitros do tubo com inóculo padronizado
para um frasco contendo 25 ml de água pluoronica. Agitar o frasco e colocar na
bandeja. A seguir continuar de forma semelhante à utilizada para os painéis de gram
negativos.
Testes de identificação:
Violeta de genciana (CV) – os estreptococos crescem na presença do corante, enquanto
os estafilococos não.
Micrococos (MS) – o crescimento em baixas concentrações de bacitracina (0,04 U) é
utilizado para diferenciar os micrococos (sensíveis) dos estafilococos (resistentes).
Nitrato (NT) – os estafilococos reduzem nitrato a nitrito (cor vermelha), enquanto os
estreptococos não reduzem.
Novobiocina (NOV) – são resistentes à novobiocina algumas espécies de estafilococos,
como o S. sapropyticus, S. xylosus, S. cohnii e S. sciuri.
Glicosidases (PGR,PGT) – a presença da enzima é detectada pela formação de um
produto de cor amarelada .
Indoxil fosfatase (IDX) – este teste é equivalente ao da coagulase. Os estafilococos que
têm essa enzima são também coagulase positivos, levando à formação de um composto
de cor azul.
Voges-Proskauer (VP) – formação de um produto de cor vermelha na reação positiva,
de forma semelhante ao que ocorre com os bacilos gram negativos.
Optoquina (OPT) – o pneumococo é sensível à optoquina. Os demais cocos gram
positivos não são inibidos pela substância.
Fosfatase (PHO) – a reação positiva forma um produto de cor amarela.
Bile esculina (BE) – a reação positiva forma um precipitado negro.
Pirrolidonil-beta-naftilamida (PYR) – a reação positiva , que corresponde a presença da
enzima pirrolidonase, produz uma cor vermelha após a adição do reagente de peptidase.
Arginina (ARG) – a cor vermelha corresponde a reação positiva, ou seja a
desidrolização do aminoácido.
Uréia (URE) – a formação de amonia leva a produção de uma cor vermelha.
Carbohidratos (RAF, LAC,TRE,MNS, SOR, ARA, RBS, INU, MAN) – a fermentação
de cada açúcar leva a formação de cor amarela.
NaCl 6,5% (NACL) – a tolerância ao sal é uma característica dos estafilococos e
enterococos.
Bacitracina (BAC) – a sensibilidade à bacitracina é característica do Streptococcus
pyogenes (grupo A de Lancefield).
Piruvato (PRV)– a reação positiva leva a formação de uma cor amarela.
Beta-lactamase (BL) – a presença de beta-lactamase é detectada pela adição de
penicilina e iodo ao pocinho BL. Se houver a enzima o iodo liga-se ao anel beta-
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lactamico, formando uma reação incolor. Se não houver a enzima há formação de um
produto de coloração preta.
Identificação de microrganismos: de forma semelhante a utilizada para os bacilos gram
negativos, o resultado dos testes de identificação leva a formação de biotipo com cerca
de 8 números, que é confrontado com um banco de dados criado pelo sistema
MicroScan. Os códigos nesse caso são divididos em duas seções, ou seja nas famílias
Streptococcaceae e Micrococcaceae (famílias 1 e 2).
Interpretação dos testes de sensibilidade: de forma semelhante a adotada para os painéis
de bacilos gram negativos. Aqui o que varia são alguns antimicrobianos, mais
específicos para esse grupo de microrganismos, como a ampicilina, eritromicina,
clindamicina, oxacilina, vancomicina, etc. Há ainda pocinhos para avaliar a existência
ou não de resistência de nível elevado (HLR) a aminoglicosídeos (estreptomicina e
gentamicina). Isso tem importância no tratamento de casos de endocardite bacteriana
por enterococos, onde a associação de ampicilina ao aminoglicosídeo provoca aumento
do índice de cura, desde que não haja resistência de nível elevado a esses
antimicrobianos.
Painel de identificação de leveduras: o ideal é que a levedura tenha sido isolada a partir
do agar dextrose Sabouraud. Não devem ser usados meios que contenham sangue. Usar
o painel de identificação rápida de leveduras.
Preparo do inóculo: remover do agar (após 24 horas de crescimento) uma quantidade de
colonias em tubo contendo 3 ml de água estéril, suficiente para alcançar uma turbidez
equivalente ao padrão de turbidez para leveduras do fabricante.
Após homogenizar o inóculo por meio de agitação, adicionar 50 microlitros da
suspensão a cada pocinho do painel contendo substrato, e nos poços controle. Agitar
lateralmente o painel, tampar e depois colocá-lo no aparelho. A leitura é feita após 4
horas de incubação.
Testes de identificação:
Substratos de aminoácidos (HPR,ILE, PRO,TYR,etc.) – a reação positiva produz uma
cor púrpura, obtida pela presença de uma enzima que faz a hidrólise do aminoácido.
Utilização de carbohidratos (SUC,TRE, etc.) – a reação positiva produz uma cor
amarela relativa à queda do pH, pela produção de ácidos.
Substratos nitrofenil (AGL, BGL, AGL, etc.) – a presença da enzima leva a liberação de
compostos nitrofenol, levando a um produto de cor amarela.
Indoxil fosfatase (IDX) – a presença da fosfatase libera o radical indoxil que ligado ao
oxigênio forma um precipitado azul.
Uréia (URE) – a presença de urease leva a formação de amônia, que eleva o pH
produzindo coloração vermelha.
Identificação das leveduras: mesmo princípio dos outros painéis, com a produção de um
biotipo, com vários dígitos, que é comparado com um banco de dados do fabricante do
painel.
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2.O VITEK é um equipamento automatizado dedicado à identificação de bactérias e
leveduras, além de permitir a realização de testes de sensibilidade, pelo método de
microdiluição em caldo.
O sistema é composto de dois programas informatizados, um que comanda a leitura de
cartões e incubadora (VITEK) e outro (bioLIAISON) responsável pelo banco de dados
que circunda o VITEK. O programa inclui análise, gerenciamento de dados e vários
relatórios relacionados aos pacientes e produtos.
O sistema apresenta como principais diferenças com o da Dade Behring a separação de
cartões de identificação e de sensibilidade, além da necessidade de sempre se trabalhar
com inóculo padronizado segundo a escala de McFarland. Essa padronização é feita
com o auxílio de um colorímetro, que utiliza quatro faixas de transmitância:
a) Faixa vermelha (80 a 88% de T) – que visualmente corresponde a escala 0,5 de
McFarland (usada para estafilococos)
b) Faixa azul (67 a 77% de T) – visualmente corresponde a escala 1,0 de McFarland
(usada para enterobactérias e estreptococos).
c)Faixa verde (46 a 56% de T) – visualmente corresponde a escala 2,0 de McFarland
(usada para bacilos gram negativos não fermentadores e leveduras).
c)Faixa amarela (27 a 37% de T) – visualmente corresponde ao tubo 3,0 de McFarland
(usada para cartões ANI e NHI).
Os cartões mais comumente empregados na rotina são os de cocos gram positivos (GPI
e GPS), bacilos gram negativos (GNI e GNS), além de leveduras (YBC). Há ainda
outros menos utilizados como os de identificação de bactérias anaeróbicas (ANI) e de
bactérias fastidiosas como as dos gêneros Hemophilus e Neisseria (NHI).
Identificação dos cartões: cada cartão deve ter sua identificação numérica (seis dígitos)
anotada no campo adequado para isso.
Os cartões de bacilos gram negativos devem ter o espaço redondo existente preenchido
da seguinte forma:
( ) - oxidase negativa (enterobactérias e alguns não fermentadores como os do gênero
Acinetobacter).
( ) - oxidase positiva (alguns não fermentadores como os do gênero Pseudomonas).
Os cartões de cocos gram positivos devem ter o espaços preenchidos da seguinte forma:
( ) - catalase negativa como no caso de Streptococcus e de Enterococcus.
( ) - catalase positiva como no caso de Staphylococcus.
( ) - coagulase negativa (e se catalase for positiva).
( ) - ou coagulase positiva (e se catalase for positiva).
( ) - se não houver hemólise beta (e se catalase for negativa).
( ) - se houver hemólise beta ( e se catalase for negativa).
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Metodologia básica de uso do equipamento:
- Para cocos gram positivos:
a)No 1º e no 2º tubo de ensaio, adicionar 1,8 ml de salina esterilizada em concentração
de 0,45% de NaCl.
b)No 1º tubo, preparar inóculo padronizado, compatível com escala 0,5 (faixa vermelha
do colorímetro, se for estafilococo)ou escala 1 de Mc Farland (faixa azul, se for
estreptococo ou enterococo). Fazer suspensão homogênea.
c)Adicionar, com pipeta automática e ponteira estéril, 200 microlitros do inóculo
padronizado do 1º tubo ao 2º tubo, com salina. Fazer suspensão homogênea.
d) O primeiro tubo será utilizado para o cartão de identificação (GPI) e o segundo para
o teste de sensibilidade (GPS).
e) Colocar tubo de aspiração no local adequado de cada cartão. Ligar o sistema de
vácuo e selador do VITEK 15 minutos antes de usá-los.
f) Colocar tubos e cartões no setor de aspiração e de produção de vácuo do VITEK.
g) Ligar o sistema de produção de vácuo (“on”).
h) Aguardar o término da aspiração (“ready”).
i) Inserir os cartões no selador. Ligar o selador (“on”). Esperar término (“ready”).
j) Após selados colocar os cartões na incubadora do VITEK (antes verificar o próximo
horário da leitora de cartões). As letras de identificação do cartão ficam viradas para
cima (Ex; GPI).
k) Inserir dados do paciente no VITEK (cadastramento de pacientes).
Para bacilos gram negativos:
a) No 1º e no 2º tubo de ensaio, adicionar 1,8 ml de salina esterilizada em
concentração de 0,45% de NaCl.
b) No 1º tubo, preparar inóculo padronizado, compatível com escala 1 de McFarland
(faixa azul do colorímetro). No caso de bactérias de crescimento mais lento como os
não fermentadores, usar a escala 2 de McFarland (faixa verde).
c) Adicionar, com pipeta automática, 50 microlitros do inóculo padronizado do 1º ao
2º tubo, com salina. Fazer suspensão homogênea.
d) O primeiro tubo será utilizado para o cartão de identificação (GNI) e o segundo
para o teste de sensibilidade (GNS).
e) Continuar as outras etapas como já descrito anteriormente (ítens e até k).
Para leveduras:
a) Usar apenas um tubo, com 1,8 ml de salina esterilizada em concentração de
0,45% de NaCl.
b) Preparar inóculo compatível com escala 2 de McFarland (faixa verde).
c) Usar cartão de leveduras (YBC). Nesse caso não há cartão de sensibilidade.
d) Continuar como as etapas anteriormente citadas (e a i).
d) Incubar o cartão por 24 horas a 35ºC fora do aparelho, antes de se fazer a
primeira leitura no VITEK. Inserir dados do paciente . Não havendo leitura final,
reincubar por mais 24 horas a 35ºC, antes de fazer a 2ª leitura.
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Identificação manual dos microrganismos mais freqüentemente isolados
Enterobactérias:
De todas as amostras recebidas por um laboratório diagnóstico são as
enterobactérias os microrganismos mais encontrados, especialmente em se tratando de
amostras de pacientes com suspeita de infecção urinária.
Esse grupo de bactérias que hoje compreende um considerável número de gêneros e
de espécies representam importante fonte de infecções comunitárias e hospitalares,
além de constituir um grupo de elevada resistência aos antimicrobianos, especialmente
as cepas de origem nosocomial e especialmente as produtoras de beta-lactamase de
espectro estendido (ESBL).
A identificação preliminar desse grupo de bactérias é simplificada se nos atentarmos
para algumas de suas principais características, como:
•Crescimento de colonias grandes, acinzentadas, com ou sem
hemólise, em placas de agar sangue.
•Ao Gram, verifica-se a presença de bacilos gram negativos.
•A glicose é fermentada, a reação de citocromo oxidase é
negativa e o nitrato é reduzido a nitrito.
Entre as enterobactérias há ainda dois grandes subgrupos: as que fermenta
lactose e as que não fermentam o carbohidrato. Nisso reside a identificação
preliminar de cada subgrupo em meios seletivos, como o agar MacConkey, onde as
colonias lactose positivas como a Escherichia coli podem ser vistas como colônias
de cor rosa, enquanto colônias que não fermentam a lactose, como a Serratia
marcescens, permanecem transparentes.
Uma outra maneira de avaliar subgrupos de enterobactérias consiste na
utilização de meios de triagem bioquímica como o agar Klieger ferro, onde
utilizamos um tubo com meio inclinado. A reação no fundo do tubo ocorre em
anaerobiose (fermentação) e a parte inclinada é feita em aerobiose (oxidação).
Na oxidação a produção de radicais ácidos é bem menor do que na
fermentação. Como no meio há apenas uma pequena quantidade de glicose (1g de
glicose e 10 g de lactose para litro de meio) em relação à de lactose, é a utilização
da lactose o fator determinante para a viragem ou não do indicador (vermelho
fenol). Se a enterobactéria fermenta a lactose, o fundo e a parte inclinada ficam
amarelos devido à formação de radicais ácidos e mudança do pH do meio.
Se, no entanto, a bactéria não fermenta a lactose, apenas a parte inclinada
fica amarela (oxidação da glicose) enquanto o fundo permanece vermelho. Se tanto
o fundo como a parte inclinada não sofrem modificação, é provável que não se trate
de uma enterobactéria, mas sim de um bacilo gram negativo não fermentador. O
meio permite ainda visualizar a presença de H2S, como costuma ocorrer com
bactérias dos gêneros Proteus, Salmonella e Citrobacter.
Ao se falar em enterobactérias, logo vem a lembrança as enzimas que mais
caracterizam esse grupo bacteriano, como as betalactamases, que ao se ligar ao anel
betalactamico hidroliza-o, tornando o antibiótico inefetivo.
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Em relação às cepas de enterobactérias produtoras de beta lactamase de
espectro estendido (ESBL), como em cepas de K. pneumoniae, K. oxytoca, E. coli e
Proteus mirabilis, apesar de poderem ser clinicamente resistentes à terapia com
penicilinas, cefalosporinas ou aztreonam, in vitro podem apresentar sensibilidade à
esses antimicrobianos.Também têm sido detectadas em outros microrganismos,
como Salmonella spp., e em bacilos não fermentadores como a P. aeruginosa..
Típicamente, as ESBL derivam dos genes TEM-1, TEM-2, TEM-3, CTX-M
e SHV-1 por mutações que alteram a configuração de aminoácidos ao redor do sítio
ativo dessas betalactamases. Atualmente mais de 160 enzimas TEM já foram
descritas.
A presença de ESBL amplia o espectro dos antibióticos betalactamicos
susceptíves à hidrólise por essas enzimas. Plasmídeos responsáveis pelas ESBL
frequentemente carreiam genes responsáveis pela resistência a outras classes de
drogas como os aminoglicosídeos.
Em conseqüência, as opções para o tratamento por bactérias desse tipo são
bastante limitadas, ficando quase que restritas aos carbapenemicos.
O rastreamento da produção de ESBL (como sensibilidade ao cefpodoxime,
ceftazidime e aztreonam) deve ser sempre feito quando testamos enterobactérias..
No sistema MicroScan esta triagem é feita com cefpodoxime e ceftazidime.
A confirmação da produção de ESBL por uma determinada cepa bacteriana
baseia-se no aumento da sensibilidade quando associamos ao disco de cefalosporina
de amplo espectro(cefotaxime, cefatizidime,etc.) um inibidor de beta lactamase
como o acido clavulanico. O aumento da sensibilidade (igual ou maior a 5 mm de
aumento de diametro do halo dos discos) confirma a produção de ESBL pela cepa.
Entre os fatores de risco identificados para o desenvolvimento de infecções
por cepas produtoras de ESBL - segundo estudo brasileiro de 2006 - estão a idade
(pacientes jovens),exposição a ventilação mecanica, uso de cateter venoso central e
de antimicrobianos (principalmente cefalosporina de 4ª geração ou quinolona),além
de internação prolongada.
Há ainda enterobactérias, como Enterobacter spp., Escherichia coli, K.
pneumoniae, Citrobacter freundii e Serratia marcescens com resistência
antimicrobiana elevada, sendo o mecanismo mediado cromossomicamente por
betalactamases de amplo espectro e devido às enzimas tipo AmpC (betalactamases
classe C de Ambler). Há resistência a todos os betalactamicos, à exceção dos
carbapenemicos.
Nesses casos a detecção pode ser feita por meio de resistência às
cefamicinas, como a cefoxitina.
Não há inibição dessas betalactamases por inibidores como clavulanato ou
sulbactam, ao contrário do que ocorre com as cepas produtoras de ESBL.
Carbapenemases são betalactamases com capacidades hidrolíticas versáteis.
Têm habilidade para hidrolisar penicilinas, cefalosporinas, monobactamicos e
carbapenemicos.
São membros das classes de betalactamases A, B e D de Ambler. A classe A
e D são enzimas que têm mecanismo hidrolítico baseado na serina (serina
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betalactamases), enquanto a classe B são metalo-betalactamases que contêm zinco
no sítio ativo das enzimas.
A classe A do grupo das carbapenemases inclui membros das famílias SME,
IMI, NMC, GES e KPC. Dessas, as KPC carbapenemases são mais prevalentes e
mais frequentemente encontradas em plasmídeos de cepas de Klebsiella
pneumoniae.
As metalobetalactamases, pertencentes à classe B, incluem as famílias IMP,
VIM, SVM e GIM. Hidrolisam todos os betalactamicos à exceção do aztreonam e
têm sido detectadas primariamente em Pseudomonas aeruginosa e o Acinetobacter
spp. É importante lembrar ainda que, em todo o mundo, tem sido crescente o
encontro dessas enzimas em espécies de enterobactérias. A sensibilidade ao
aztreonam e a resistência aos demais betalactamicos sugere a presença de
metalobetalactamase.
As de classe D, consistem de OXAbetalactamases (caracterizadas
inicialmente pela elevada atividade hidrolítica contra a oxacilina e cloxacilina) e
são frequentemente encontradas em cepas de P. aeruginosa e Acinetobacter
baumannii.
Nos casos de cepas multiresistentes de Pseudomonas e de Acinetobacter,
incluindo os carbapenemicos, costuma-se recorrer às polimixinas (colistina e
polimixina B), antibióticos tóxicos mas ainda eficazes nessas situações.
Origem das metalobetalactamases:
As metalobetalactamases são produzidas intrínsecamente por alguns
microrganismos oportunistas como a Stenotrophomonas maltophilia, o
Chryseobacterium mengosepticum e a Aeromonas spp., além do Bacillus cereus e
da Legionella gormanii.
No entanto, a partir da década de 1990 têm sido detectados novos genes que
codificam metalobetalactamases em bactérias importantes clinicamente, como as
espécies mais frequentemente isoladas de bacilos gram negativos.
O primeiro relato de metalobetalactamase adquirida ocorreu em 1994,
quando foi isolada uma cepa de Serratia marcescens - no Japão - resistente ao
imipenem e às cefalosporinas de espectro ampliado. A enzima, responsável pela
inativação do antibiótico, foi denominada IMP-1.
Atuamente só da enzima IMP são conhecidos 24 sub-tipos (IMP-1 a IMP-
24).
As metalobetalactamases podem ser inativadas por agentes quelantes como
o EDTA (ácido etilenodiaminotetracético) ou o MPA (ácido 2-mercaptopropiônico)
que inativam a enzima por meio de sequestração dos íons zinco.
Já existe no mercado uma metodologia de E-Test para detecção dessa
betalactamase, com uma extremidade contendo imipenem e a outra contendo
imipenem associado ao EDTA.
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Uma diferença superior a três diluições na atividade encontrada na
associação imipenem/EDTA em relação à encontrada apenas com o antibiótico, é
considerada como sendo devida à presença da metalobetalactamase.
Em casos de septicemia há considerável diferença nas respostas entre
bactérias gram positivas, como estafilococos e estreptococos, e as gram negativas,
como as enterobactérias.
As gram negativas contêm lipopolissacarídeos como o principal
determinante patogênico e seu componente tóxico, o lipídeo A, quando liberado da
parede celular bacteriana e exposto às células de defesa induz uma potente resposta
com liberação de mediadores inflamatórios o que resulta em estímulo da
coagulação, vasodilatação periférica, choque, hipoperfusão e hipóxia.
Já as gram positivas têm na liberação de exotoxinas - sendo que algumas
atuando ainda como superantígenos - o mecanismo fisiopatológico mais importante
na indução da resposta inflamatória e do eventual choque tóxico.
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Chave de identificação dos principais gêneros de enterobactérias:
Lac Gás H2S VP IND CIT Fenil Ure Mot Lis Orn
1
Escherichia + + - - + - - - + + +/-
Shigella - - - - - - - - - - -
Edwardsiella - + + - + - - - + + +
Salmonella - + + - - + - - + + +
Citrobacter - + +/- - -/+ + - +/- + - -/+
Klebsiella + ++ - + -/+ + - + - + -
Enterobacter + ++ - + - + - - + +/- +
Serratia - + - + - + - - + + +
Proteus - + + - +/- + + ++ + - -/+
Morganella - + - - + - + ++ + - +
Providencia - -/+ - - + + + +/- + - -
Yersinia - - - - +/- - - +/- - - +
1
+ = 90% ou mais de cepas positivas.
= 90% ou mais de cepas negativas
+/- = 50 a 90% de cepas positivas
-/+ = 50 a 90% de cepas negativas
Salmonella:
Estudos recentes de DNA identificaram apenas duas espécies de Salmonella. A espécie Salmonella
enterica, a mais importante em infecções humanas, pode ser dividida em seis grupos (A, B, C1,C2, D e E).
Já a classificação de Kauffmann-White, reconhece cada um dos sorotipos como uma espécie distinta(mais
de duas mil), baseadas na identificação sorológica dos antígenos “O” (somático) e “H” (flagelar). Exemplos
de algumas espécies importantes segundo a classificação de Kauffmann-White:
Grupo A – Salmonella paratyphi A.
Grupo B – S. schottmuelleri (antes, S. paratyphi B) e S. typhimurium.
Grupo C1 – S. hirsfeldi (antes, S. paratyphi C), S. choleraesuis e S. virchow.
Grupo D – S. typhi e S. enteritidis.
Shigella:
No Brasil as espécies mais isoladas de quadros diarreicos são a S. flexneri e a S. sonnei.
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Bacilos gram negativos não fermentadores (BGNNF):
Os não fermentadores constituem um grupo de microrganismos capazes de causar
infecções oportunistas, especialmente em pacientes imunodeprimidos ou pacientes
hospitalizados em que barreiras naturais foram transpostas como no caso de pacientes
em uso de ventilação mecânica ou que utilizaram associações de antimicrobianos de
largo espectro, desde que essas bactérias não raramente apresentam multiresistência.
Devemos suspeitar da presença desse grupo de bactérias quando estamos frente a
uma cepa com as seguintes características:
•Incapacidade de fermentar a glicose, evidenciada pela
inalteração da cor do agar Klieger ferro. Nesse caso, tanto a
parte inclinada como o fundo do tubo permanecem
inalterados. Mesmo que a bactéria oxide a glicose na parte
inclinada, não há viragem do indicador devido à pequena
concentração de glicose no meio, além do fato de que na
oxidação a produção de radicais ácidos é bem menor do que
na fermentação.
•Reação de citocromo oxidase positiva (mas que pode ser
negativa no caso, por exemplo, de colonias de
Acinetobacter).
•Dificuldade de crescimento em agar MacConkey. Um bacilo
gram negativo que cresce bem no agar sangue e que não
cresce (ou cresce mal) no agar MacConkey é provavelmente
um não fermentador.
Esquema preliminar para identificação de BGNNF:
1.Oxidase + e motilidade + : Pseudomonas, Burkholderia (que
pode ser fracamente positiva para oxidase) e Alcaligenes.
2.Oxidase + e motilidade - : Flavobacterium e Moraxella.
3.Oxidase - e motilidade + : Chryseomonas e Stenotrophomonas.
4.Oxidase - e motilidade - : Acinetobacter.
38
38
38
Esquema para identificação de espécies de Pseudomonas (todas oxidase +):
Pioverdina
1
Piocianina ox/glicose arginina 42°C gelatina
P. aeruginosa
2
+ + + + + V
P. fluorescens + - + + - +
P. putida + - + + - -
P. stutzeri
3
- - + - - -
Esquema para identificação de espécies de Burkholderia e Stenotrophomonas:
Oxidase motilidade Ox/glicose arginina lisina uréia polimixina
B. pseudomallei + + + + - V R
B. cepacia w
1
+ + - + V R
B. gladioli - + + - - + R
B. pickettii + + + - - + R
S. maltophilia
2
- + + - + - S
Esquema simplificado para identificação de espécies de Acinetobacter
3
:
42°C hemólise gelatina OF/glicose Arginina Malonato
A. baumannii + - - + + +
A. haemolyticus - + + V + -
A. calcoaceticus - - - + + +
A. lwoffii - - - - - -
1
Em agar, produz fluorescência sob luz ultra-violeta, ou um pigmento amarelo no meio sob a luz
visível. A piocianina é um pigmento azul, derivado da fenazina. A mistura dos dois pigmentos é que fornece a
cor verde brilhante característica da P. aeruginosa.
2 Cepas multiresistentes podem ser sensíveis à polimixina.
3 Colonias de aspecto enrugado ou pregueado. Cerca de 80% das cepas cresce em NaCl 6,5%.
Burkholderia e Stenotrophomonas:
1
Fracamente positiva. O complexo Burkholderia cepacia é constituído por nove espécies distintas.
2 Esculina positiva. Também é DNase positiva. A bactéria é sensível à associação sulfa-trimetoprim.
Não há ainda teste de sensibilidade padronizado para esta bactéria.
Acinetobacter:
3
Ao gram aparecem como cocobacilos gram negativos, crescem em agar MacConkey como colonias
meio rosadas, oxidase negativas, OF glicose e lactose geralmente positiva, e são motilidade negativa.
39
39
39
Esquema para identificação de outros BGNNF de importância médica:
Branhamella (Moraxella) catarrhalis :oxidase +; diplococo gram negativo; não cresce
em agar MacConkey; catalase +; reduz nitrato a nitrito; DNase +; assacarolítica;
imóvel.
Alcaligenes faecalis: oxidase +; cresce em agar MacConkey; reação alcalina em OF
glicose; motilidade +; acetamida +; NaCl 6,5% +; malonato +.
Chryseobacterium meningosepticum
4
: oxidase +, cresce mal ou não cresce em agar
MacConkey, motilidade -, indol +, ONPG +, uréia -, OF glicose + (lento), resistente à
polimixina e produz pigmento amarelo que se acentua com incubação adicional de 24
horas à temperatura ambiente.
Shewanella putrefaciens: facilmente identificável por ser o único não fermentador que
produz H2S .
Estafilococos:
São cocos gram positivos que se encontram isolados, aos pares e agrupados,
representando o segundo grupo de bactérias mais isoladas em laboratório clínico, logo
após o grupo das enterobactérias.
São bactérias bastante resistentes ao ressecamento, daí porque são encontradas
como principais participantes da microbiota da pele. Por isso são tão freqüentemente
isoladas a partir de infecções cutâneas.
São ainda responsáveis por diversos quadros infecciosos, desde simples
conjuntivites até bacteremias, sendo considerados atualmente os principais responsáveis
por quadros de septicemias, especialmente as espécies S. aureus e S. epidermidis.
São catalase positivas (reação feita em lâmina, usando-se H2O2 a 3%,
preferencialmente isoladas de um meio sólido sem sangue). Imóveis. Não formam
esporos e geralmente não têm capsula. A maioria das espécies é anaeróbica facultativa.
As únicas espécies que se desenvolvem melhor em anaerobiose que em atmosfera
aeróbica são o S. aureus subsp. anaerobius e o S. saccharolyticus e que têm ainda como
importante característica apresentarem reação de catalase negativa. Os estafilococos
crescem em meio de elevada concentração salina.
4
Anteriormente identificado como Flavobacterium meningosepticum.
40
40
40
Algumas características importantes e que servem para diferenciar os estafilococos dos
micrococos(geralmente considerados como contaminantes do ar ambiente), que também se
apresentam microscópicamente como cocos gram positivos:
Micrococcus Staphylococcus
Fermentação
da glicose - +
Formação de
tétrades + -
Sensibilidade
à bacitracina S R
O mais importante teste utilizado na identificação dos estafilococos é a prova da
coagulase. A prova pode ser feita em tubo ou em lâmina. O teste negativo ,após 4 horas
de incubação a 35°C, deve ser prorrogado a temperatura ambiente e lido após 18 a 24
horas de incubação .Algumas cepas produzem fibrinolisina, após incubação prolongada
a 35°C, que dissolve o coágulo e pode induzir a erro de interpretação da prova.
O sistema adequado para a realização da prova da coagulase é o plasma de coelho
com EDTA. Plasma citratado não deve ser utilizado por poder provocar resultados falso
positivos ao utilizarmos microrganismos que utilizam citrato em seu metabolismo.
Entre os estafilococos coagulase negativos, a espécie S. haemolyticus é a que
habitualmente apresenta atividade beta-hemolítica mais intensa em placas de agar
sangue.
Esquema para identificação das espécies de estafilococos mais frequentes:
Pigmentação Coagulase PYR Ure Nov VP Manitol
S.aureus + + - - - + +
S. epidermidis - - - + - + -
S. haemolyticus V - + - - + V
S. saprophyticus V - - + + + V
S. warneri V - - + - + V
S. schleiferi - - + - - + -
S. hominis V - - + - V -
Pigmentação das colônias: de acordo com a existência ou não de carotenóides.
Novobiocina: resistência à novobiocina.
Manitol: fermentação do manitol, com produção de ácido.
Quanto à sensibilidade a maioria das cepas de S. aureus isoladas na comunidade e
na maioria dos hospitais brasileiros costuma ser sensível à oxacilina, enquanto que a
maioria das cepas de estafilococos coagulase negativo é resistente.
41
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41
Estudo recente realizado na Espanha mostrou estabilidade na resistência das cepas
de S. aureus à oxacilina entre os anos de 2002 e 2006(em torno de 30% das cepas foram
resistentes).
Cepas de S. aureus resistentes à oxacilina (MRSA ou que possuem o gene mecA)
ainda são raras em nosso meio e quando ocorrem isto significa resistência a todos os
antibióticos beta-lactamicos.
Quando a resistencia dos MRSA inclui os aminoglicosídeos estas cepas são
denominadas MARSA. Há ainda cepas de estafilococos com sensibilidade diminuída
(intermediária) ou mesmo resistentes aos glicopeptídeos (VISA, VRSA, etc.).
Em 1978 foi descrita a síndrome do choque tóxico estafilocócico em mulheres
jovens menstruadas, em uso de tampão superabsorvente.
A síndrome é causada por cepas de S. aureus que produzem potente exotoxina, que
atuando como superantígeno provoca uma ampla mobilização do sistema imunológico
(entre 5 a 30% das células T), levando à liberação de grandes quantidades de citocinas
que ao final produzem boa parte das manifestações clinicas da síndrome, caracterizadas
por febre alta, rash cutâneo difuso, descamação principalmente da pele das palmas das
mãos e dos pés, hipotensão arterial e manifestações diversas (vomitos e diarréia;
hiperemia conjuntival; uremia; trombocitopenia; etc.).
Mesmo com tratamento adequado, incluindo altas doses de antibióticos (oxacilina,
clindamicina ou vancomicina), a mortalidade da síndrome do choque tóxico
estafilocócico pode chegar a 9%.
Estreptococos:
São cocos gram positivos dispostos aos pares e em cadeias, encapsulados, catalase
negativos, anaeróbios facultativos, sendo que muitas cepas crescem melhor com
aumento da concentração de CO2, como o S. pneumoniae. São ainda oxidase negativos.
A capacidade de formar cadeias ocorre, principalmente, em meio líquido (caldo).
Requerem meios ricos em nutrientes (sangue ou soro) para se desenvolverem.
Os estreptococos constituem, assim como os estafilococos, um importante grupo de
bactérias responsáveis por diversos tipos de infecções, desde uma simples amigdalite
até quadros de endocardite bacteriana.
Identificação dos principais estreptococos de interesse médico:
Streptococcus pyogenes – grupo A, produz beta-hemólise em agar sangue de
carneiro. A estreptolisina “O” é inibida pelo oxigênio, daí porque a beta-hemólise é
mais bem detectada em condições de anaerobiose. Já a estreptolisina “S” é estável ao
oxigênio. É a principal bactéria a ser pesquisada em culturas de secreção de orofaringe,
por estar implicada em quadros de faringite aguda, que posteriormente podem levar ao
desenvolvimento de febre reumática ou glomerulonefrite difusa aguda, esta última mais
relacionada a cepas causadoras de infecção de pele. Pode ainda produzir uma exotoxina
e levar a um rash cutâneo, como na escarlatina.
42
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As provas de identificação mais importantes são:
Bacitracina – sensibilidade a disco de bacitracina com 0,04 U.
PYR – reação positiva, que é característica dessa espécie.
VP – negativo.
CAMP – negativo.
Streptococcus agalactiae – grupo B, também produz beta-hemólise. Está relacionada a
quadros de infecção urinária - em gestante - e também a infecções graves neonatais
(sepsis, meningite, etc.).
As principais provas de identificação são:
PYR – negativo.
VP – positivo.
CAMP - positivo
1
.
Hidrólise do hipurato – positiva.
Streptococcus equi (ou ainda o S. equisimilis) – grupo C, também beta-hemolítico.
As principais provas de identificação são:
PYR – negativo.
CAMP – negativo.
Beta glicuronidase – positiva.
Trealose – negativa.
Streptococcus bovis – grupo D, alfa ou não hemolítico em agar sangue.
As principais provas de identificação são:
VP – positivo.
Esculina – positiva.
Urease – negativa.
Inulina – positiva.
Streptococcus pneumoniae – alfa hemolítico, e responsável por um variado grupo de
infecções, como otites, pneumonias e meningites.
1
CAMP – a maioria dos estreptococos do grupo B produzem uma proteina extracelular que se
difunde no meio (agar sangue de carneiro) e que age sinergisticamente com a lisina estafilocócica para
produzir maior hemólise.
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As principais provas de identificação são:
Optoquina
1
– sensível.
Bile solubilidade
2
– positiva.
Esculina – negativa.
Streptococcus viridans – alfa hemolítico. Esse grupo compreende várias espécies de
estreptococos, como o S. mitis, S. anginosus
3
, S. mutans, e S. salivarius. Caracterizam-se
por não serem sensíveis à optoquina e apresentarem reação de bile esculina negativa.
Apesar dos estreptococos, em geral, serem sensíveis às penicilinas (especialmente o
S. pyogenes e o S. agalactiae), há atualmente uma crescente preocupação com o S.
pneumoniae. Em algumas regiões do mundo há níveis de resistência próximos a
50%. É considerada sensível a penicilina a cepa com CIM inferior ou igual a 0,06
mcg/ml; com nível intermediário quando a CIM estiver entre 0,12 e 1,0 mcg/ml ;
resistente quando for igual ou superior a 2,0 mcg/ml. No Brasil, até 1999, a
resistência do pneumococo à penicilina estava em torno de 3%. Atualmente, já
existem algumas regiões com níveis bem mais elevados (20 a 30%).
Assim como os estafilococos, algumas cepas de S. pyogenes podem produzir
toxinas extracelulares, incluindo exotoxinas pirogênicas superantigenicas
estreptocócicas que podem desenvolver quadros graves, como fasciíte necrotizante e
ainda a síndrome do choque tóxico estreptocócico, que apesar de rara tem taxa de
letalidade bastante alta (entre 30 a 70%).
Enterococos:
Desde 1984 os enterococos passaram a constituir um gênero distinto dos
estreptococos, por sugestão de alguns pesquisadores como Kalina, Schlleifer e Kilper-
Balz.
São cocos gram positivos que se apresentam aos pares e em cadeias curtas. São
anaeróbios facultativos, crescem melhor a 35°C, hidrolizam a esculina e crescem em
meio de NaCl a 6,5%, que é uma característica que os diferencia dos estreptococos.
A maioria das espécies é PYR positiva. Muitas espécies crescem a 45°C. Costumam
ser catalase negativos.
Quanto à importância clínica os enterococos respondem por cerca de 10% das
infecções urinárias, incluindo as de origem hospitalar. São ainda importante causa de
infecções de ferida , além de bacteremia e de endocardite (entre 5 a 20% das
endocardites bacterianas).
No entanto, a importância maior desse grupo bacteriano reside, atualmente, no seu
elevado nível de resistência aos antimicrobianos, como no caso dos enterococos
resistentes aos glicopeptídeos (VRE).
1
Zona de inibição maior que 14 mm com um disco de 6 mm de diâmetro, ou maior que 14 mm para
um disco de 10 mm de diâmetro, após incubação “overnight”, a 35°C, em atmosfera de 5% de CO2.
2
Teste atualmente pouco utilizado devido à sua complexidade técnica.
3
S. anginosus apresenta algumas características como VP, arginina e esculina positivas.
44
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44
Sobre o surgimento dos VRE:
Até 1996 a avoparcina, um glicopeptídeo, era amplamente utilizado na alimentação
animal, na Europa. Pesquisadores veterinários na Dinamarca isolaram cepas de
enterococos resistentes à vancomicina a partir de cavalos, porcos e aves em oito países
europeus que utilizavam a avoparcina na alimentação animal.
Eles não encontraram VRE em bovinos da Suécia ou nos Estados Unidos da
América, países que não faziam uso da avoparcina.
Sua conclusão foi de que o uso desse antibiótico criou um reservatório de VRE em
animais que são usados para alimentação humana.
Em 1996, o uso de avoparcina foi banido da Alemanha. Em seguida, as amostras
positivas para VRE diminuíram de 100% para 25% e a taxa de portadores humanos de
VRE caiu de 12% para 3%.
Em 1997, todos os países da União Européia baniram o uso de avoparcina.
Cerca de 80 a 90% dos isolamentos de enterococos são devidos ao E. faecalis. A
segunda espécie mais isolada é o E. faecium, com 5 a 10%. As outras espécies são
isoladas raramente.
Nos casos de infecção por VRE (genótipo Van-A apresentando resistência a
vancomicina e teicoplanina e Van-B com resistência apenas à vancomicina e sensível à
teicoplanina), a droga mais usada atualmente é a linezolida, que tem se mostrado mais
efetiva do que a associação quinupristina/dalfopristina.
Já foram descritos outros genótipos (Van-C, Van-D, Van-E e Van-G), porém
raramente foram encontrados em enterococos responsáveis por infecções em humanos,
como no caso do Van-C, só encontrado em E. gallinarum, E. casseliflavus e E.
flavescens.
Nos genótipos Van-C , Van-E e Van-G, a teicoplanina permanece sensível (CIM de
0,5 a 2,0 mcg/ml), ao contrário da vancomicina. Já no genótipo Van-D , ambas as
drogas são resistentes.
Vale lembrar ainda que a maioria das cepas de E. faecalis resistentes à vancomicina
continua sensível às penicilinas, o mesmo não ocorrendo com as cepas de E. faecium,
que também são resistentes à ampicilina.
Esquema de identificação das principais espécies de enterococos:
MAN ARG ARA SORBITOL NaCl6,5% BE PYR MOT
E. faecalis + + - + + + + -
E. faecium + + + V + + + -
E. casseliflavus + + + V + + + +
E. durans - + - - + + + -
E. gallinarum + + + - + + + +
45
45
45
O teste de sensibilidade dos enterococos isolados a partir de uma infecção urinária é
opcional, desde que essas infecções costumam responder ao tratamento com
ampicilina
2
.
No caso de infecções em outros locais o teste de sensibilidade é sempre necessário.
Um teste de beta-lactamase positivo prediz a resistência a ampicilina e às
acilureidopenicilinas (azlocilina, mezlocilina e piperacilina).
As espécies E. gallinarum e E. casseliflavus apresentam resistência intrínseca à
vancomicina, mas essa resistência não é transferível.
Deve-se lembrar ainda que resistência a ampicilina e a vancomicina seja bem mais
freqüente em relação ao E. faecium. Só raramente o E. faecalis apresenta este nível de
resistência.
Devido à presença de enterocos natualmente resistentes à vancomicina, como o E.
gallinarum e o E. casseliflavus, é fundamental a correta identificação das espécies de
enterococos. Se isso não ocorrer poderemos oferecer aos médicos assistentes e,
principalmente, aos serviços de controle de infecção hospitalar informações
equivocadas e que poderão ter graves repercussões posteriormente.
É importante ressaltar ainda que os enterococos apresentam resistência intrínseca às
cefalosporinas, aztreonam, clindamicina, oxacilina, trimetoprim-sulfametoxazol e
aminoglicosídeos. Em conseqüência não se deve testá-los frente a esses
antimicrobianos.
Para infecções urinárias causadas por essas bactérias, devemos utilizar apenas os
seguintes antimicrobianos no teste de sensibilidade: ampicilina, ciprofloxacina,
levofloxacina, nitrofurantoina e norfloxacina.
Leuconostoc:
As bactérias do gênero Leuconostoc são cocos gram positivos que crescem aos
pares e em cadeias, são catalase negativos e podem ser confundidos com os
estreptococos. São naturalmente resistentes à vancomicina como os Pediococcus.
Produzem gás a partir de glicose.
São raramente isolados a partir de amostras biológicas, como agentes de infecções
oportunistas. Podem provocar bacteremias, meningites (incluindo neonatais) e outras
infecções graves em pacientes imunodeprimidos e/ou que sofreram considerável
superação das barreiras de defesa do organismo.
A resistência à vancomicina deve-se à estrutura molecular da parede celular dessas
bactérias ( não há sítio de ligação para a vancomicina). Há ainda resistência cruzada
com a teicoplanina, apesar de continuarem sensíveis à maioria dos agentes com
atividade para os estreptococos, como a penicilina e ampicilina.
2
Facklam, R.R. Enterococcus, In Manual of Clinical Microbiology, 7th edition.
46
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Bacilos gram positivos aeróbios ou anaeróbios facultativos:
Constituem um dos grupos de maior dificuldade de identificação bacteriana. Deve-
se primeiramente atentar para quatro características fundamentais, como início de um
trabalho de identificação bacteriana:
1.Formação de esporos.
2.Morfologia celular, ao Gram.
3.Pigmentação das colônias.
4.Presença ou não de catalase.
Formação de esporos:
1.Bactérias formadoras de esporos, como o gênero Bacilllus.
2.Bactérias que não formam esporos, ou os demais gêneros de
importância médica.
Morfologia celular:
1.Bacilos regulares, ou seja cujas extremidades longitudinais não
se curvam.
2.Bacilos irregulares, ou seja cujas extremidades longitudinais se
curvam ou não são paralelas.
Pigmentação das colônias:
1.Colônias com pigmentação.
2.Colônias sem pigmentação.
Reação de catalase:
1.Positiva, como nos gêneros Corynebacterium e Listeria.
2.Negativa, como no gênero Lactobacillus.
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47
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Esquema inicial de identificação dos bacilos gram positivos de maior importância médica:
Morfologia celular betahemólise
1
catalase Mot
2
H2S Esc
3
Fermentação
4
Gli Man Sal
Listeria Cocobacilos + + + - + + - +
Gram positivos
Bacillus Bacilos gram + + - - V + V V
Positivos com
Endosporos
Erysipelothrix - - - + - + - -
Bacilos gram
positivos, podendo
formar longos filamentos
Lactobacillus - - - - - + V V
Bacilos longos que
tendem a formar cadeias
Corynebacterium V + - - - + + -
Bacilos com aspecto
claviforme ou em letras
chinesas
Rhodococcus
5
- + - - V + V +
Parcialmente álcool-ácido resistentes
1
Em agar sangue de carneiro.
2
A 25°C, quando pode-se verificar o crescimento “em guarda-chuva” da Listeria monocytogenes.
3
Hidrólise da esculina.
4
Fermentação com produção de ácido em glicose, manitol e salicina.
5
R. equi apresenta colônias rosadas e é CAMP +.
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48
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Corinebactérias:
São bacilos gram positivos irregulares, que em geral tem forma de clava (ou em
letras chinesas), crescem em atmosfera aeróbica, não produzem esporos e são catalase
positivos. Compreendem 46 espécies, sendo que 31 delas tem alguma importância médica.
Fazem parte da microbiota da pele e membranas mucosas.
Se desenvolvem bem em agar sangue de carneiro e não crescem em agar
MacConkey. Algumas espécies crescem melhor em incubação por até 48 horas e em
atmosfera de 5% de CO2.
A principal espécie é o Corynebacterium diphteriae
1
, responsável, ainda hoje, por
um bom número de casos de difteria em várias regiões do mundo. Em 1994, na antiga
União Soviética, houve uma epidemia com cerca de 40 mil casos, devido à interrupção dos
esquemas de vacinação.
Além da espécie de maior significado clínico, várias outras corinebactérias são
capazes de provocar quadros infecciosos, especialmente quando mais de uma cultura for
positiva e quando a amostra tiver sido adequadamente colhida, ou seja quando não houver
risco de contaminação.
Esquema de identificação das principais espécies de Corynebacterium:
Produção de ácido
NO3 Urease PYR Fosf.Alc. Glicose Maltose Sacarose
C. diphteriae V - - - + + -
C. jeikeium - - + + + V -
C. minutissimum - - + + + V +
C. ulcerans - + - + + + -
C. urealyticum - + + V - - -
C. xerosis + - + + + + +
O teste de sensibilidade para as corinebactérias deve ser feito em agar sangue de
carneiro, em atmosfera aeróbica, a 35°C, após 24 horas de incubação. O critério de leitura
deve ser o mesmo estabelecido para os estafilococos (interpretação de acordo com o
diâmetro do halo de inibição).
1
Para o isolamento de C. diphteriae são utilizados meios especiais como o CBTA (agar sangue com
cistina telurito).
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Gram negativos fastidiosos mais freqüentemente isolados:
Os Haemophilus e Neisseria compreendem dois dos mais importantes gêneros de
bactérias gram negativas de importância médica. Ambos possuem espécies responsáveis
por considerável parcela das meningites bacterianas. Ambos necessitam de meios
enriquecidos e atmosfera com 5% de CO2 para se desenvolverem.
Na pesquisa de agentes como esses, as placas devem ser incubadas por até 72 horas,
como no caso da pesquisa de Haemophilus, especialmente o H. influenzae responsável por
quadros de conjuntivite (biogrupo aegyptius).
O gênero Haemophilus compreende bacilos curtos ou cocobacilos gram negativos,
oxidase positivos, anaeróbios facultativos, que requerem atmosfera úmida com 5% de CO2,
para se desenvolverem
1
. Todas as espécies produzem ácido a partir da fermentação da
glicose, com exceção do H. ducrey.
Algumas espécies necessitam de fator X (hemina) e outras de fator V (NAD), ou de
ambos, como no caso do Haemophilus influenzae. Enquanto o fator X pode ser liberado a
partir de hemácias lisadas, o fator V só é encontrado no interior de células intactas. Daí
porque há necessidade da adição dos dois fatores de crescimento ao prepararmos um meio
achocolato capaz de permitir o crescimento de Haemophilus.
No método do satelitismo (em que se utiliza uma estria central de S. aureus, e os
bacilos crescem ao redor da estria) o meio (agar chocolate) fornece o fator X enquanto o
estafilococo fornece o fator V.
Quanto à importância médica das bactérias do gênero Haemophilus, especialmente
o H. influenzae, sabemos da sua relevância como agente de meningite bacteriana em
crianças de até dois anos de idade, além de ser causa importante de epiglotite, otite média,
conjuntivite e pneumonia, entre outros tipos de quadros infecciosos.
Esquema de identificação das principais espécies de Haemophilus:
Produz ácido
Hemólise
2
Fator V Fator X Indol Urease Ornitina Xilose
H. influenzae
3
- + + +/- +/- +/- +
H. parainfluenzae - + - -/+ +/- +/- -
H. haemolyticus + + + v + - v
H. parahaemolyticus + + - - + v -
H. aphrophilus - - - - - - -
H. ducrey + - + - - - -
Quanto à sensibilidade o ideal é testar a presença de beta-lactamase das cepas de
Haemophilus isoladas, especialmente do H. influenzae, desde que a partir da década de
1970 houve considerável crescimento da resistência a penicilina e ampicilina, em todo o
1
As espécies H. ducrey, H. haemolyticus e H. parahaemolyticus não requerem CO2.
2
Sangue de cavalo.
3
geralmente tipo b, o único de seis tipos de capsula que contem ribose ao invés de uma hexose, uma
propriedade relacionada com a virulência da bactéria.
50
50
50
mundo, devido à inativação enzimática desses antibióticos como mecanismo principal
de insucesso terapêutico.
O gênero Neisseria compreende as espécies de diplococos gram negativos que
produzem ácido a partir de carbohidratos por via oxidativa, são imóveis, oxidase
positivos e necessitam de umidade e CO2 para se desenvolverem, em temperatura de
35°C. As placas devem ser lidas por até 72 horas de incubação.
Pelo fato de não serem fermentadores, produzem pouco ácido nos meios de
carbohidratos. Devem-se utilizar meios com baixa relação proteina/carbohidrato de
forma a evitar que a baixa produção de ácido seja neutralizada pela produção de amonia
a partir das peptonas e com isso não se possa avaliar de forma adequada a utilização dos
açúcares pelas bactérias. Antigamente se utilizava o meio CTA (cistina trypticase agar).
Atualmente ele não é mais recomendado por ser um meio para bactérias que utilizam a
via fermentativa, o que não é o caso dessas bactérias.
Antes de semear algum material para isolamento de bactérias dos gêneros
Haemophilus e Neisseria, há necessidade de que os meios de cultura retornem à
temperatura ambiente. Semear em meios à baixas temperaturas pode levar à morte
dessas bactérias.
A importância clínica das Neisserias reside, principalmente, em casos de meningite,
meningococcemia e uretrite. O isolamento de N. meningitidis muitas vezes é possível
de ser obtido não só em agar chocolate, como também em agar sangue. Já para o
isolamento da N. gonorrhoeae é necessário utilizar meios com antimicrobianos para
inibir o crescimento de contaminantes. O meio de Thayer-Martin, por exemplo, utiliza
vancomicina, colistina, nistatina e trimetoprim, para inibir o crescimento de
contaminantes.
Esquema de identificação das principais espécies de Neisseria e Branhamella:
Produção de ácido a partir de
Glicose Maltose Lactose Sacarose
N. gonorrhoeae + - - -
N. meningitidis + + - -
N. lactamica + + + -
B. catarrhalis - - - -
Para a tipagem da N. meningitidis podem ser utilizados até 13 soros para
identificação dos diferentes sorogrupos. Os principais são, no entanto, os grupos A, B,
C, Y e W135. O grupo B, geralmente, é responsável por quadros esporádicos e os
grupos A e C por quadros epidêmicos.
Quanto à sensibilidade, a N. meningitidis continua sendo sensível à penicilina,
apesar de já existir relato de resistência mediada por plasmídeo e por via cromossomica.
Quanto à N. gonorrhoeae a ocorrência de resistência à penicilina e tetraciclina é
comum. Em conseqüência tem-se recomendado o uso de cafalosporinas de 3ª geração e
as novas fluoquinolonas como primeira escolha mesmo no tratamento de uretrites
gonocócicas não complicadas.
51
51
51
A Branhamella (Moraxella ) catarrhalis difere das Neisserias por não produzir ácido
a partir de nenhum dos quatro açúcares (glicose, maltose, lactose e sacarose).
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Teste de sensibilidade manual
Os testes de sensibilidade atualmente mais acessíveis aos laboratórios clínicos são
os testes de diluição (como os de diluição em caldo e diluição em agar).
O E teste, ou teste de difusão de gradiente, permite determinar a CIM em agar,
porém ainda é um método caro e pouco disponível para a maioria dos laboratórios
clínicos brasileiros. Pode, no entanto, ser um método útil para a determinação eventual
da CIM para alguns poucos antimicrobianos, em especial em casos eventuais, como na
confirmação de estafilococos ou enterococos com menor sensibilidade à vancomicina
ou para avaliar a sensibilidade de algum anaeróbio.
Utiliza uma fita plástica que libera um gradiente de antimicrobiano no agar. A CIM,
nesse caso, é lida quando a elipse de inibição de crescimento intercepta a escala na fita.
O método é comparável com os métodos de diluição de referência para estafilococos,
enterococos, anaeróbios e vários organismos gram negativos.
Recentemente, foram lançados no mercado europeu fitas de E teste para agentes
anti-fungicos, com boa reprodutibilidade em relação aos testes tradicionais para fungos,
como os testes de macro e micro-diluição em caldo.
Essas fitas podem ainda ser utilizadas para avaliar a atividade de anti-fungicos
combinados, o que tem sido uma estratégia cada vez mais utilizada no tratamento de
micoses sistêmicas.
Para alguns microrganismos fastidiosos como o S. pneumoniae, o H. influenzae e a
N. gonorrhoeae há necessidade de empregarmos o teste de difusão em agar, desde que
ainda não temos disponíveis métodos automatizados com a reprodutibilidade e a exatidão
adequadas. O resumo da metodologia recomendada pelo CLSI é o seguinte:
Meio Concentração final
1
Tempo Incubação
do inoculo/ml
H. influenzae HTM (5x10)5 16-18 h 35°C/5%CO2
Agar
N. gonorrhoeae GC (1x10)4 20-24 h 35°C/5%CO2
Agar
S. pneumoniae MH (5x10)5 20-24 h 35°C/5%CO2
1
O padrão 0,5 de McFarland corresponde a (1x10)8 UFC/ml.
Agar sangue deve ser utlizado para o teste da sensibilidade de cepas de S. pneumoniae.
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Método de difusão em agar:
Inicialmente quatro a cinco colonias grandes ou cinco a dez colonias pequenas são
pescadas a partir do agar de onde foram isoladas, após incubação “overnight”, e
colocadas em um tubo com caldo, que é incubado em estufa e que permita crescimento
até a obtenção de uma turvação compatível com o padrão 0,5 de McFarland.
A partir daí o meio é diluído em caldo até a obtenção da concentração de inoculo
adequada para cada espécie de microrganismo. Em geral o inoculo deve ter
concentração equivalente a (5X10)5 UFC/ml.
Uma vez ajustada, a suspensão bacteriana deve ser semeada dentro de, no máximo,
15 minutos. Um swab estéril é mergulhado na suspensão, e é feita sua rotação por
diversas vezes. Em seguida é pressionado contra a parede do tubo, de forma a retirar o
excesso de inoculo. Depois o swab é passado por toda a superfície da placa, por três
vezes, em ângulos de 60° entre eles, de forma a fazer uma distribuição homogênea do
inoculo.
Em seguida são colocados os discos com antimicrobianos, de forma a impedir que
haja sinergismos ou antagonismos entre eles. Devem ser utilizados, no máximo, 12
discos para uma placa de 150 mm ou não mais do que 5 discos numa placa de 100 mm
de diâmetro. A distância mínima entre os discos deve ser de 24 mm. Após um máximo
de 15 minutos, depois da colocação dos discos, as placas são invertidas e colocadas na
estufa. A escolha dos discos deve ser feita de acordo com o microrganismo envolvido.
Após o tempo de incubação adequado é feita a leitura do diâmetro dos halos de
inibição ao redor dos discos. A interpretação dos halos de inibição deve seguir as
recomendações do fabricante do disco, lembrando que o diâmetro do halo depende não
só da potencia do disco, da sensibilidade ou resistência do micróbio, como também da
difusibilidade do antimicrobiano no meio de cultura.
A interpretação dos halos deve ser feita como sensível, intermediário e resistente.
Lembrar ainda que a interpretação dos halos deve levar em conta também o tipo de
microrganismo envolvido.
Sensível indica que o antimicrobiano deve ser capaz de inibir o crescimento nas
doses habitualmente utilizadas para o combate das infecções causadas por aquele
microrganismo.
Intermediário significa que o antimicrobiano só será eficaz se utilizado nas doses
mais elevadas e se a infecção envolver uma topografia onde a droga puder se concentrar
(como em infecções urinárias para antimicrobianos de eliminação predominante por via
renal).
Resistente significa que mesmo em doses elevadas o antimicrobiano não tem a
capacidade de inibir o crescimento do microrganismo envolvido no processo infeccioso.
Um teste rápido capaz de detectar resistência aos betalactâmicos, como em algumas
bactérias de crescimento mais lento como a N. gonorrhoeae e o H. influenzae, é o da
cefalosporina cromogênica (nitrocefin) que muda de cor quando hidrolisada pela
betalactamase bacteriana.
Para testar a resistência dos estafilococos à meticilina (presença de gene mecA) até
há pouco se utilizava uma placa de Mueller-Hinton Agar (MHA) com 4% de NaCl e
concentração de 6 mcg/ml de oxacilina. Atualmente recomenda-se o uso do teste de
difusão com disco de cefoxitina com 30 mcg, como melhor indicador, dispensando o
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uso do MHA especial. Com o uso de disco de cefoxitina é possível detectar 99,6% dos
casos dos estafilococos que possuem gene mecA.
Alguns discos de antimicrobianos permitem que seja feita extrapolação para outros
tipos de resultados, como:
Sensibilidade Microrganismo Extrapolação de resultados
Oxacilina Staphylococcus Sensível a todas as
cefalosporinas e carbapenems
Ampicilina Enterococcus Sensivel a penicilina
Vancomicina Gram positivos Sensivel a teicoplanina
A resistência do S. pneumoniae à penicilina, pode ser feita por meio do teste com
disco de oxacilina de 1,0 mcg. Cepas que apresentem diâmetro do halo menor ou igual a 19
mm devem ser reportadas como resistente até que o teste de diluição seja concluído.
Controle de qualidade:
O controle de qualidade dos testes de sensibilidade deve ser feito desde a preparação
dos meios de cultura (pH, volume de meio por placa, espessura do meio, esterilidade,
eficiência, etc.) até o uso de cepas de referencia, como a E. coli ATCC 25922, a P.
aeruginosa ATCC 27853 e o S. aureus ATCC 25923. A última edição CLSI apresenta os
limites aceitáveis dos resultados dos testes de difusão com as três cepas ATCC. Halo de
inibição de crescimento em mm:
Antimicrobiano Conteúdo disco
(em mcg)
E. coli
25922 (em mm)
S. aureus
25923 (em mm)
P. aeruginosa
27853 (em mm)
amicacina 30 19-26 20-26 18-26
ampicilina 10 16-22 27-35 -
cefazolina 30 21-27 29-35 -
ceftazidime 30 25-32 16-20 22-29
oxacilina 1 - 18-24
Além do controle de qualidade interno é fundamental que o laboratório participe de um
programa de controle de qualidade externo como o da Sociedade Brasileira de Patologia ou
o da Sociedade Brasileira de Análises Clínicas, para que o laboratório possa ter seus
resultados comparados com os de outros laboratórios de bom nível de sua região e do
restante do país.
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Resultados de testes que merecem reavaliação
por poderem ser devidos a erro técnico
Organismo ou grupo Categoria I Categoria II
Enterobactérias
Carbapenem – I ou R•
Amicacina – R
Fluoroquinolona - R
Citrobacter freundii
Enterobacter spp.
S. marcescens
Ampicilina – S
Cefazolina – S
Cefalotina - S
E. coli ESBL positiva
Klebsiella spp. Ampicilina - S ESBL positiva
Morganella spp.
Providencia spp.
Ampicilina – S
Cefazolina - S
P. aeruginosa Aminoglicosídeos(todos) - R
S. maltophilia Carbapenem - S SMT - R
H. influenzae Cefalosporina de 3ª g. – R
Ampicilina - R
amoxicilina/clavulanico -
R
betalactamase – negativa
N. gonorrhoeae
Cefalosporina de 3ª g. - R Fluoroquinolona - R
Staphylococcus Vancomicina - R
Streptococcus pneumoniae Vancomicina – I ou R
Qualquer microrganismo ••
Resistente a todos os
microrganismos
•
••
• Verificar presença de carbapenemases.
•• Verificar se a cultura é realmente pura ou se houve contaminação com outra bactéria
ou mesmo fungo.
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Avaliação da qualidade do ar interno
A relação entre contaminação ambiental e doenças ficou estabelecida desde que o
médico italiano Bernardino Ramazzini publicou, no início do século XVIII, o livro
“Discurso sobre as doenças dos artesãos”, onde definiu os riscos para a saúde de 42 grupos
de trabalhadores, desde mineiros de minas de carvão até cirurgiões.
Em 1855, John Snow publicou um pequeno livro – “On the mode of communication
of cholera - onde estabeleceu pela primeira vez a relação entre água contaminada e doenças
infecciosas.
Restava, no entanto, esclarecer a real importância do ar ambiente, apesar de vários
trabalhos recentes enfatizarem que a poluição ambiental é fator relevante para a morbidade
e mortalidade por doenças cardio-respiratórias.
Com a evolução da arquitetura e da tecnologia passamos de edificações simples,
com poucos andares e grandes janelas, que propiciavam boa iluminação e ventilação
natural, para um novo tipo de estrutura utilizada principalmente para edifícios públicos a
partir da década de 1960.
Novos prédios foram sendo construídos e que dependiam de sistemas mecânicos e
elétricos para controlar seu ambiente interno. Com o intuito de obter uma maior eficiência
nos aparelhos de refrigeração e aquecimento, visando a uma maior economia de energia, os
edifícios foram sendo construídos com uma melhor vedação térmica, surgindo daí os
prédios selados.
Assim passamos de um período de ventilação e iluminação oriundas da natureza,
para outro em que se passou a utilizar construções com janelas fechadas, farta utilização de
lâmpadas e dotadas de sistemas centralizados de ar condicionado, com controle artificial de
luz, temperatura e umidade.
Em conseqüência, desde a década de 1970, trabalhadores de centenas de modernos
edifícios nos EUA e Europa, passaram a relatar uma gama variável de queixas relativas à
saúde, como dor de cabeça, irritação nos olhos, coriza, irritação ou dores de garganta,
fadiga, letargia e problemas para manter a concentração no trabalho.
Essas queixas levaram à definição, pela Organização Mundial de Saúde, da
“Síndrome do Edifício Doente”, como sendo decorrência de edificações fechadas e sem
ventilação natural, que propiciam condições ideais para a propagação de diversos
microrganismos .
Além disso, diversos estudos têm demonstrado que a imunidade aos fungos mediada
pela IgE é comum entre pacientes com rinite alérgica, além de poder desencadear quadros
de asma brônquica. Suspeita-se ainda de que a sensibilidade aos fungos pode estar ligada a
episódios severos e potencialmente fatais de asma, sendo que as maiores fontes de
alergenos biológicos são usualmente encontradas nas poeiras dos carpetes, sofás e dutos de
ar condicionado.
Por outro lado, um exemplo da virulência dos micróbios que podem se desenvolver
em ambientes fechados é a legionelose, doença causada pela Legionella pneumophila,
bactéria que se desenvolve preferencialmente nos compartimentos de resfriamento de
sistemas de ventilação centralizados e cuja relevância ainda é subestimada em nosso país.
Como conseqüência da primeira epidemia de legionelose, ocorrida nos EUA durante
o verão de 1976, surgiu uma nova consciência da importância do controle dos sistemas
mecânicos de ventilação dos edifícios modernos. Passou-se a dar maior importância à
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qualidade do ar interno, na busca de se evitar a concentração de contaminantes no interior
dos edifícios.
Além disso, diversos estudos têm demonstrado que o ar interior pode apresentar
contaminantes em concentrações bem maiores que o ar exterior, dependendo do nível de
umidade dos edifícios e da qualidade de manutenção dos sistemas de ventilação.
Um dos mecanismos usualmente utilizados para melhorar a pureza do ar interno em
relação ao ar externo é a utilização de sistemas de filtros para a remoção da maior parte da
poeira do ar externo. No entanto, esses filtros acoplados a sistemas de ar condicionado
podem servir para fixação e crescimento de uma ampla variedade de microrganismos, caso
não sejam limpos ou trocados regularmente.
Isso é especialmente relevante em algumas áreas hospitalares, como nas unidades
que mantêm pacientes imunocomprometidos, como as de terapia intensiva, as oncológicas e
as de transplantados, devido a que, nesses casos, tanto a doença básica como o tratamento
colocam o paciente em risco de infecções oportunistas, como pelos fungos anemófilos , ou
potencialmente patogênicos, ou ainda por bactérias multiresistentes que são comuns em
ambientes hospitalares.
Ou seja, se não houver uma manutenção adequada dos sistemas mecânicos de
ventilação os edifícios podem se tornar importantes fontes de doenças, especialmente as de
transmissão aérea.
Assim, torna-se fundamental o monitoramento microbiológico dos sistemas de ar
condicionado, de maneira a fornecer dados objetivos para apoiar uma adequada
manutenção desses equipamentos.
Mesmo já sendo comum em países como os Estados Unidos da América, Canadá e
da Europa ocidental, esse tipo de controle ainda é raro de ser realizado em nosso país.
Preocupado com esse problema, o Ministério da Saúde (MS) aprovou em 1998 a
Portaria nº 3253, onde apresentou regulamento técnico contendo medidas básicas referentes
aos procedimentos para garantir a qualidade do ar de interiores e prevenção à saúde dos
ocupantes de ambientes climatizados.
Em seguida o MS publicou, em 2000, a Resolução nº176 onde estabeleceu
orientação técnica sobre padrões referenciais de Qualidade do Ar Interior (QAI) em
ambientes climatizados artificialmente de uso público e coletivo, em complemento à
Portaria nº 3253.
Segundo essa Resolução, o valor máximo recomendável para contaminação
microbiológica do ar interior deve ser inferior a 750 ufc/m3 de fungos e a relação I/E (nº de
ufc no ambiente interno em relação ao nº de ufc no externo) deve ser menor que 1,5.
A norma recomenda que o monitoramento microbiano tenha periodicidade
semestral, mas não define parâmetros para a contaminação bacteriana e apenas para fungos
viáveis.
No período de 22 de abril a 13 de maio de 2008 foram feitas diversas coletas de
amostras de ar interno e de ar externo nas dependências da Câmara dos Deputados, em
Brasília, utilizando-se um amostrador , marca SKC, modelo Standard BioStage, de um
estágio e com 400 orifícios, capaz de aspirar 28,3 litros em um tempo de 10 minutos por
amostra, sobre uma placa de agar com 90 mm de diâmetro .
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Para a coleta de todas as amostras o aparelho foi colocado a uma altura de 1,5
metros do solo, de acordo com a Norma Técnica 001 da Resolução nº 176 do MS.
Para o isolamento de bactérias foram utilizadas placas de agar sangue de carneiro a
5%, marca Bio Mèrieux, e para o isolamento de fungos foram utilizadas placas de agar
Sabouraud dextrose a 4%, marca Plast Labor, devidamente certificadas e dentro do prazo
de validade.
As placas foram incubadas a uma temperatura média de 35ºC, por dois dias, para as
culturas bacterianas e a uma temperatura média de 25ºC, por sete dias, para as culturas de
fungos.
A identificação bacteriana foi feita apenas para grupos de bactérias (cocos gram
positivos, bacilos gram positivos, etc.), utilizando-se como parâmetro a morfologia dos
microrganismos e suas respectivas características pela coloração de Gram.
A metodologia utilizada para a identificação dos fungos, como gênero, consistiu
inicialmente na observação das características macroscópicas das colônias e na observação
de suas características microscópicas coradas com a solução de azul de lactofenol,
procurando-se identificar as características taxonômicas dos micélios vegetativos e das
estruturas de reprodução.
O número de colônias de fungos e de bactérias foi determinado para metros cúbicos
de ar.
Os fungos são organismos eucarióticos, com cerca de 250 mil espécies e cujos
principais grupos taxonômicos compreendem os zigomicetos, os ascomicetos, os
basidiomicetos e os deuteromicetos. Das espécies conhecidas, apenas cerca de 150 são
consideradas como patógenos humanos primários .
Os fungos contaminantes do ar fazem parte, principalmente, do grupo dos
ascomicetos, que produzem esporos assexuados chamados conídios e onde está a maioria
dos fungos alergênicos como Alternaria, Aspergillus, Fusarium e Penicillium.
Os esporos dos fungos encontrados no meio externo se infiltram nos ambientes
internos especialmente através de portas, janelas e sistemas mecânicos de ventilação.
Encontrando a umidade necessária, esses esporos germinam e se transformam em fungos
com micélio germinativo, que vão dar origem a novos esporos e daí a novo ciclo
reprodutivo.
Além de poderem causar doenças por ação direta, alguns fungos produzem
micotoxinas como as aflatoxinas, as fumonisinas, os tricotecenos e as ocratoxinas, que
podem desenvolver desde alguns tipos de câncer, como o carcinoma hepatocelular, até
nefropatias. Essas toxinas são produzidas, principalmente, pelos mesmos fungos
encontrados no meio ambiente, como os Aspergillus, Fusarium e Penicillium. Por conta
desses problemas, passou-se a dar maior ênfase à saúde ambiental, que tem como um de
seus objetivos a prevenção dos danos à saúde causados por contaminantes presentes no
meio ambiente, fazendo com que os níveis dessas exposições sejam mantidos em patamares
que não constituam risco inaceitável à saúde do ser humano.
Nosso estudo identificou diversos tipos de fungos, que são considerados
contaminantes habituais do meio ambiente externo e interno, como Penicillium,
Aspergillus, Fusarium, Alternaria, Geotrichum, Mucor, Rhizopus, Curvularia, Rhodotorulla
e Candida, entre outros.
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Em nenhum local encontramos níveis de contaminação do ar interno em valores
iguais ou superiores a 390 ufc/m3, ou seja, bem inferiores ao limite proposto pelo MS de
750 ufc/m3.
A relação I/E, também ficou abaixo do limite do MS, apesar de que no refeitório
essa relação ficou bem próxima de 1,5.
Quanto à contaminação bacteriana, encontramos níveis altos no refeitório - 1029
ufc/m3 - provavelmente devido à maior circulação de pessoas no local no período
vespertino, que coincidia com o horário de almoço. Todas as bactérias pertenciam ao grupo
dos cocos gram positivos (Staphylococcus e Micrococcus) e dos bacilos gram positivos
(Bacillus e Corynebacterium), considerados contaminantes habituais do meio ambiente.
Apesar de termos encontrado níveis aceitáveis de contaminação por fungos, o
levantamento evidencia a importância desse tipo de monitoramento.
Somente por meio de um estudo continuado como esse é que se poderá subsidiar de
maneira correta o trabalho de manutenção dos equipamentos de ventilação mecânica dos
edifícios, de maneira a contribuir efetivamente para uma melhoria da saúde ambiental,
especialmente ao se tratar de áreas onde estejam pessoas com quadros alérgicos ou com
algum tipo de comprometimento de seu sistema imunológico.
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Resistência bacteriana
Desde antes de serem isolados e purificados pelos seres humanos os antibióticos já
atuavam em sua forma natural, iniciando deste modo um processo de pressão seletiva
sobre as bactérias, principalmente. No entanto, após a introdução do uso regular de
antibióticos na década de 1940 essa pressão seletiva tornou-se muito mais significativa.
A função primordial de um laboratório de microbiologia é identificar a presença do
agente etiológico causador do processo infeccioso e ainda encontrar um antimicrobiano
para o qual o agente seja sensível no sítio da infecção. Para isso é necessário que o
antimicrobiano supere os mecanismos de resistência do microrganismo envolvido.
A resistência, como sabemos, pode ser natural ou adquirida. Natural, intrínseca ou
herdada, é a resistência previsível para grupos bacterianos como a dos bacilos gram
negativos aos macrolídeos por não possuirem receptor para essas drogas nos
ribossomos. Ela é transmitida por via cromossomica às células filhas.
Já a resistência adquirida reflete uma verdadeira mudança na constituição genética
de uma determinada bactéria e não é previsível, e portanto varia entre grupos, gêneros e
mesmo entre diferentes cepas de uma mesma espécie bacteriana.
Os testes de sensibilidade foram fundamentalmente desenvolvidos para se avaliar a
resistência não passível de ser prevista. Algumas variações genéticas podem resultar
apenas em diminuição da atividade de uma droga, mas sem que isso se reflita em
completa perda de sua efetividade.
A resistência adquirida pode ocorrer de várias formas:
a) Mutação genética.
b) Aquisição de genes de outros microrganismos via mecanismos de transferência
genética, como no caso da conjugação (transferência de material genético de uma
bactéria à outra através de contato físico, como na transferência de plasmídeos
conjugativos) ou de transposição (que se dá por meio de transposons).
c) Ou uma combinação dos dois mecanismos anteriores.
A aquisição de material genético a partir de outra bactéria pode ocorrer por meio de
um rearranjo de segmentos de A D N como inversões, duplicações, inserções, deleções
ou transposições através de vetores como plasmídeos (A D N extracromossomico com
capacidade de replicação autônoma), transposons ou genes saltadores ( elementos
genéticos que têm a capacidade de se translocar de uma área do cromossomo bacteriano
a outro ou entre um cromossomo e um plasmídeo, porém sem a capacidade de auto-
replicação dos plasmídeos) ou mesmo por meio de bacteriófagos (vírus que infectam
bactérias e que podem transmitir segmentos de A D N de uma bactéria a outra de
mesma espécie, geralmente). Pode ainda ocorrer a resistência induzida, fenômeno
genético que resulta da desrepressão de genes que inativam antibióticos, como no caso
de bactérias como a Serratia que produz beta-lactamases induzidas pelo uso de
antibióticos beta-lactâmicos.
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Os principais mecanismos de resistência aos antimicrobianos são:
a) Inibição enzimática, como no caso das beta-lactamases que degradam o anel beta-
lactamico das penicilinas e/ou das cefalosporinas ou ainda como no caso das enzimas
que inativam os aminoglicosídeos.
b) Alterações na permeabilidade de membrana externa como nas penicilinas que
têm na parede celular dos bacilos gram negativos uma verdadeira barreira à sua
penetração ao interior da célula; ou ainda como alterações da permeabilidade da
membrana interna como os aminoglicosídeos em relação a algumas espécies de
Pseudomonas.
c) Alterações nos alvos dos ribossomos, como para casos de resistência a
macrolídeos, lincosamidas e estreptograminas onde a alteração nos sítios de ligação de
ribossomos pode levar ao surgimento de resistência à esses antimicrobianos.
d) Alterações nas enzimas alvo, como no caso de alterações nas PBPs (proteinas
ligadoras de penicilinas) e que são, na verdade, enzimas que participam da
formação da parede celular das bactérias gram positivas. Esse mecanismo de
resistência ocorre, por exemplo, no caso dos pneumococos resistentes à
penicilina e na resistência do S. aureus à meticilina (mecA); ou ainda como
modificações da girase bacteriana levando ao surgimento de resistência às
quinolonas.
e) Alteração no metabolismo bacteriano como no surgimento de resistência às
sulfas, como nas cepas deficientes em timidina em relação ao trimetoprim.
f) Bomba de efluxo, como no caso do efluxo ativo de antibióticos mediado por
proteínas transmembrana que formam canais que ativamente eliminam o antibiótico à
medida que penetra na célula bacteriana. Esse é o principal mecanismo de resistência de
algumas enterobactérias em relação às tetraciclinas.
Mecanismos usualmente utilizados para controle da resistência bacteriana:
Dados do Centro de Controle de Doenças (CDC) estimam que cerca de 1/3 das
prescrições de pacientes ambulatoriais nos E.U.A. são inadequadas. Um dos motivos
reside em que boa parte das infecções respiratórias agudas é provocada por vírus, o que
torna inútil a prescrição de antimicrobianos. Em consequência, o uso racional de
antimicrobianos é o melhor meio de minimizar o aumento da resistência ao longo do
tempo.
O uso racional passa, necessariamente, por um programa de educação continuada
no uso dessas drogas, por um apoio laboratorial rápido e eficiente, e por um maior
controle do uso de antimicrobianos.
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Deve-se procurar evitar - sempre que possível - as associações, fazendo com que
alguns medicamentos, como os glicopeptídeos, os carbapenêmicos e as cefalosporinas
de última geração, só sejam utilizados em casos de real necessidade, como na
multiresistência, no sentido de preservá-los e não torná-los ineficientes rapidamente,
como tem ocorrido com outros antibióticos com níveis elevados de resistência para
diversos grupos bacterianos.
Atualmente, sabe-se que princípios de farmacocinética e de farmacodinâmica são
essenciais para um melhor aproveitamento do uso de antimicrobianos, inclusive de
forma a se evitar o desenvolvimento precoce de resistência.
Antimicrobianos como as penicilinas são do tipo concentração dependente, ou seja,
o importante é manter o máximo de tempo possível a concentração da droga em níveis
superiores à concentração inibitória mínima.
Nesse caso o intervalo entre as doses deve ser rigorosamente seguido, sob pena de
propiciarmos doses sub-inibitórias que facilitariam o desenvolvimento de resistência
microbiana.
Alguns estudos recentes têm demonstrado que para haver eficicácia terapeutica a
concentração livre da droga (não ligada a proteinas como a albumina) deve estar acima
da CIM, no mínimo, em torno de 40 a 50% do intervalo entre as doses.
Os carbapenemicos apresentam características diferentes (efeitos bacteriostáticos e
bactericidas ocorrendo mesmo com intervalos menores, como de 20 a 40% do intervalo
entre as doses) devido ao efeito pós-antimicrobiano relevante e pela maior afinidade
para as proteinas ligadoras de penicilinas (PBPs).
Por outro lado, antimicrobianos como os aminoglicosídeos são dose dependente, ou
seja, o importante é a concentração máxima atingida pela droga, que nesse caso
predomina sobre o tempo. Nesse caso também é fundamental alcançarmos no local da
infecção uma relação Cmax/CIM de aproximadamente 10, ou seja a relação entre
concentração máxima atingida pela droga em relação à concentração inibitória mínima
deve ser em torno de 10 vezes.
São exemplos de antimicrobianos do tipo tempo-dependente: penicilinas,
cefalosporinas, carbapenêmicos, macrolídeos, glicopeptídeos e oxazolidinonas.
São exemplos de antimicrobianos tipo concentração-dependente: aminoglicosídeos
e fluoroquinolonas.
Outro aspecto importante que deve ser lembrado para minimizar o aumento da
resistência é o isolamento precoce de pacientes portadores de bactérias multiresistentes,
como nos casos de surgimento de enterococos resistentes à vancomicina, e ainda no
rastreamento dos seus contatos de forma a eliminar rapidamente essas cepas.
Outro problema reside no uso não humano de antimicrobianos, particularmente na
sua utilização como parte da ração de porcos e aves, o que também tem contribuído, de
maneira significativa, para o aumento da resistência bacteriana.
É importante ressaltar o papel da comissão de controle de infecção hospitalar, que
como equipe multidisciplinar - geralmente contando com a participação de um
administrador hospitalar, um epidemiologista, um infectologista, um microbiologista,
um farmacêutico e uma enfermeira - costuma ser responsável pelo desenvolvimento de
um programa de vigilância das infecções nosocomiais e pela definição de estratégias
para o controle e o uso adequado de antimicrobianos dentro do ambiente hospitalar,
consequentemente atuando no combate do aumento da resistência bacteriana.
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Principais grupos de antimicrobianos
Penicilinas:
a)Penicilinas naturais, ou desenvolvidas a partir da fermentação de espécies de
Penicillium, como o P. notatum e o P. chrysogenum. A penicilina G foi o primeiro
antibiótico descoberto, sendo até hoje útil para combater vários tipos de infecções como
as causadas por estreptococos do grupo A, por várias espécies de bactérias anaeróbicas
e por espiroquetas. Geralmente é utilizada sob três formas, a penicilina G benzatina e a
G procaína ,de uso intramuscular, e a G cristalina, de uso endovenoso. O mecanismo de
ação das penicilinas consiste na inibição da síntese da parede celular das bactérias em
processo de crescimento. A penicilina G liga-se à enzimas ( PBPs ou proteinas
ligadoras de penicilinas) que formam a camada de peptidoglicano da parede celular,
como transpeptidases, levando à formação de células anômalas menos resistentes à
variações de gradiente osmótico entre o meio intra e extracelular. A resistência às
penicilinas pode ocorrer ou por inativação enzimática - como as penicilinases
produzidas por cepas de Staphylococcus aureus - ou por formação de PBPs com menor
afinidade de ligação com o antibiótico, como tem sido observado no gonococo. O
principal efeito colateral da penicilina G é a reação de hipersensibilidade, que pode
variar desde uma simples urticária até o choque anafilático. Antes de administrar o
antibiótico, especialmente sob forma endovenosa, deve-se procurar saber de
antecedentes de reação alérgica aos antibióticos beta-lactâmicos, como penicilinas e
cefalosporinas, pois há reação cruzada entre êles.
b) Penicilinas semi-sintéticas, sendo parte de seu processo de formação obtido por
fermentação e parte resultante de interações químicas como as aminopenicilinas
(ampicilina e amoxicilina), as resistentes à ação das penicilinases como as
isoxazolilpenicilinas (oxacilina), as de atividade antipseudomonas como as
carboxipenicilinas(carbenicilina e ticarcilina) e as de espectro ampliado como as
ureidopenicilinas (mezlocilina e piperacilina).
b.1 Aminopenicilinas: a ampicilina foi a primeira penicilina semi-sintética que
apresentou atividade contra bactérias gram negativas como a Escherichia coli e o
Haemophilus influenzae. A amoxicilina é derivada da ampicilina e tem sobre ela a
vantagem de maior absorção por via oral. O espectro de ação é semelhante ao da
ampicilina.Tem atividade sobre os germes gram positivos, exceto os produtores de
penicilinase, sobre os cocos gram negativos e sobre algumas enterobactérias mais
sensíveis.
b.2 Izoxazolilpenicilinas: a oxacilina, que é o principal antibiótico do grupo, é usada
principalmente nas infecções estafilocócicas causadas por cepas produtoras de
penicilinase, como as causadas por Staphylococcus aureus isolados de infecções
comunitárias.A oxacilina é empregada, geralmente, por via parenteral já que por via
oral sua absorção é em torno de 30% da dose utilizada.
b.3 Carboxipenicilinas: a ticarcilina tem atividade duas a quatro vezes maior que a
carbenicilina contra a P. aeruginosa, mas nas infecções graves contra essa bactéria
recomenda-se a associação com um aminoglicosídeo por haver efeito sinérgico entre
eles. São antibióticos de uso parenteral e que, atualmente são cada vez menos utilizados
devido ao surgimento de outros antimicrobianos de melhor atuação.
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b.4Ureidopenicilinas: são penicilinas de amplo espectro criadas a partir da
ampicilina com adição de radical derivado de uma molécula de uréia. Têm atividade
contra enterococos, enterobactérias e não fermentadores como a P. aeruginosa. Não têm
atividade superior à ampicilina contra os enterococos. A piperacilina é o antibiótico de
melhor efeito do grupo e possui potente atividade contra enterobactérias e anaeróbios.
As drogas desse grupo têm ação semelhante às carboxipenicilinas contra as
Pseudomonas. Só são absorvíveis por via parenteral.
b.5Associação com inibidores de beta-lactamases: a associação amoxicilina-ácido
clavulânico foi a primeira associação feita com o intuito de inibir as betalactamases
bacterianas, como as produzidas por estafilococos e anaeróbios, além de alguns bacilos
gram negativos facultativos. Inibe as enzimas por meio de ação irreversível e
praticamente não tem efeito antibacteriano, mas age de forma sinérgica com as
penicilinas. Outras associações são a ampicilina-sulbactam, a piperacilina-tazobactam e
a ticarcilina-ácido clavulânico. Dessas, apenas a piperacilina-tazobactam tem sido mais
empregada em casos de infecção hospitalar por bacilos gram negativos multiresistentes.
As demais têm indicação restrita, sendo a associação amoxicilina-ácido clavulânico
mais utilizada nas infecções comunitárias de média gravidade em que não se tem
alternativas mais restritas em termos de espectro antibacteriano. A
amoxicilina/clavulanato pode ser empregada por via oral ou parenteral.
Cefalosporinas:
São antibióticos derivados da cefalosporina C, produzida pelo fungo
Cephalosporium acremonium. Todas as cefalosporinas de uso clínico são derivados
semi-sintéticos do ácido 7-aminocefalosporânico existente na cefalosporina C. São
antibióticos divididos em gerações.
a) Primeira geração: a cefalotina foi o primeiro antibiótico do grupo lançado em
1962. As cefalosporinas de primeira geração apresentam espectro de ação semelhante
ao da cefalotina. A cefazolina tem a vantagem de ter meia vida maior que a cefalotina
podendo ser empregada em intervalos maiores. Tanto a cefalotina como a cefazolina
são empregadas por via parenteral. Já a cefalexina e o cefadroxil são absorvidos por via
oral. Devido ao aumento do uso como antibiótico profilático em cirurgia,
principalmente, houve uma considerável elevação da resistência a esses antibióticos.
Hoje praticamente só são utilizados em infecções estafilocócicas (por germes não
resistentes à oxacilina) e em algumas infecções comunitárias causadas por
enterobactérias. Não são indicados em meningites por não atingirem níveis elevados no
LCR.
b) Segunda geração: apresentam maior atividade contra bacilos gram negativos que
as de primeira. A cefoxitina, o cefaclor e a cefuroxima são os principais representantes
desse grupo. A cefuroxima é mais ativa contra os bacilos gram negativos e a cefoxitina
tem maior ação contra os anaeróbios como o grupo dos Bacteroides fragilis. Embora
seja um antibiótico resistente à inativação por beta-lactamases produzidas por germes
resistentes às cefalosporinas de 1ª geração, a cefoxitina pode, no entanto, induzir a
produção de beta-lactamases de origem cromossomica por bactérias como o
Enterobacter, Serratia e Pseudomonas. Além disso, as enzimas induzidas podem levar
esses microrganismos a se tornarem resistentes não só à cefoxitina como também a
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outras cefalosporinas de 2ª e 3ª geração. A cefoxitina só é utilizada por via parenteral
enquanto a cefuroxima tem apresentações para administração por via oral (acetil
cefuroxime) e parenteral. O cefaclor é de utilização por via oral.
c) Terceira geração: nesse grupo estão as cefalosporinas com maior ação contra os
bacilos gram negativos e os não fermentadores, como a Pseudomonas aeruginosa.
Apresentam maior estabilidade frente às betalactamases do que as de 1ª e
2ª geração e são divididas em cefalosporinas com e sem ação antipseudomonas,
como a ceftazidima (que atua contra a P. aeruginosa) e o cefotaxime e ceftriaxone
(sem ação). Apresentam como as cefalosporinas de 2ª geração a capacidade de
induzir resistência ao longo do tratamento por mecanismo de desrepressão de
betalactamases de origem cromossômica como nas infecções por Serratia,
Enterobacter e Pseudomonas. Além disso as cefalosporinas de 3ª geração podem
ser inativadas pelas betalactamases de espectro estendido (ESBL), de origem
plasmidial e que inativam penicilinas, cefalosporinas (de 1ª, 2ª e 3ª geração) e o
aztreonam.São utilizadas basicamente por via parenteral, e principalmente no
tratamento de meningites bacterianas, sendo que o cefotaxime é indicado ainda
para o tratamento de meningites em neonatos por apresentar menores efeitos
colaterais que o ceftriaxone nesse grupo de pacientes, porque, à semelhança das
sulfas, o ceftriaxone compete com a ligação da albumina com a bilirrubina, o que
pode levar ao aumento das concentrações séricas de bilirrubina não conjugada, e a
um quadro de kernicterus.
d) Quarta geração: as cefalosporinas de 4ª geração são compostos ionicos
bipolares que têm menor afinidade para betalactamases e por isso apresentam
maior estabilidade frente às enzimas produzidas por bacilos gram negativos
(incluindo as cefalosporinases tipo AmpC produzidas por enterobactérias como as
do genero Enterobacter), sendo porém também inativadas pelas ESBLs. Têm
atividade contra os estreptococos, incluindo pneumococos (com nível
intermediário de sensibilidade à penicilina) e os estafilococos sensíveis à
oxacilina. O cefepime apresenta bom nível liquórico, podendo ser utilizado no
tratamento de meningites bacterianas. Não têm atividade contra enterococos,
como todas as cefalosporinas. A cefpiroma é outra droga desse grupo também
usada atualmente. São administradas por via parenteral.
Carbapenemicos:
São antibióticos betalactamicos derivados da tienamicina, dotados de anel
carbapenema, sendo que o impenem é administrado junto com a cilastatina, potente
inibidor da enzima renal dehidropeptidase que a inativa. Já o meropenem tem molécula
que o torna resistente à inativação renal, dispensando em conseqüência a presença de
inibidor enzimático. Recentemente foi lançado o ertapenem, que é utilizado em dose
única diária e, comparado ao imipenem, tem baixa atividade contra cepas de
enterococos, Acinetobacter e P. aeruginosa.
Possuem amplo espectro de ação, tendo atividade contra bactérias gram negativas e
gram positivas, aeróbicas e anaeróbicas. São resistentes às infecções causadas por
bactérias produtoras de ESBL e AmpC (Enterobacter spp., Serratia marcescens,
Klebsiella pneumoniae, etc.). No entanto, são inativados pelas carbapenemases,
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enzimas de origem cromossômica produzidas pela Stenotrophomonas maltophilia,
Chryseobacterium meningosepticum e Bacillus cereus, ou na forma adquirida como nas
metalobetalactamases de plasmídeos encontrados em cepas de Pseudomonas e
Acinetobacter, principalmente.
Em pacientes pediátricos o meropenem é a droga de escolha contra cepas de bacilos
gram negativos produtores de ESBL e betalactamases do tipo AmpC. O imipenem pode
provocar convulsões em crianças com meningite, o que tem limitado seu uso em
pediatria. O ertapenem tem baixo potencial de causar convulsões.
São sempre administrados por via parenteral.
Monobactâmicos:
O representante do grupo é o aztreonam, que possui anel monobactâmico. É ativo
essencialmente contra bacilos gram negativos. Seu espectro de ação é semelhante ao
dos aminoglicosídeos com a vantagem de ser menos nefrotóxico e não ser ototóxico. É
degradado pelas ESBLs.O uso em recém nascidos é contraindicado devido à presença
de arginina em sua composição e devido à possibilidade de hipoglicemia induzida por
arginina nesse grupo de pacientes.Sua administração é feita por via parenteral.
Aminoglicosídeos:
A estreptomicina foi o primeiro antibiótico desse grupo, obtido a partir de culturas
de Streptomyces griseus e introduzido no trtatamento da tuberculose na década de 1940.
Os aminoglicosídeos se ligam a fração 30S ribossomal, que resulta em alteração
conformacional que interfere com a translação do mRNA e, ao final, na inibição da
síntese proteica ou na síntese de proteínas anômalas.
Atualmente a amicacina, a gentamicina e a tobramicina são os mais utilizados. São
antibióticos bactericidas que atuam, principalmente, no tratamento de infecções
causadas por enterobactérias. Podem ser usados, em associação com cefalosporinas de
3ª geração, em infecções por Pseudomonas. Não atuam contra anaeróbios, que são
incapazes de gerar diferença de potencial elétrico através de sua membrana suficiente
para permitir a entrada dos antibióticos. Os estreptococos são resistentes, assim como
os enterococos. Não havendo, no entanto, nível elevado de resistência pode atuar de
forma sinérgica com a penicilina ou a ampicilina nas endocardites por enterococos.
O mecanismo de resistência mais importante nesse grupo é o da inativação
enzimática por meio de fosfotransferases. A amicacina é a mais resistente à inativação
enzimática. Outros mecanismos de resistência adquirida: redução da capacidade de
captação da droga e bombas de efluxo, como na resistência encontrada em cepas de P.
aeruginosa.
São administrados por via intramuscular ou endovenosa. Como são antibióticos do
tipo concentração-dependente, seu efeito bactericida é dependente do pico de
concentração, o que determinou o emprego de dose única diária, que como vantagem
adicional propicia menor nefrotoxicidade, apesar de a ototoxicidade permanecer. Não
são usados em casos de meningite por não apresentarem níveis terapêuticos no LCR.
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Glicopeptídeos:
A vancomicina e a teicoplanina são os principais antibióticos do grupo. A
vancomicina foi primeiramente isolada da Nocardia orientalis e introduzida na prática
clínica em 1958, enquanto a teicoplanina foi obtida em 1978 a partir de culturas do
Actinoplanes theicomyceticus.
São drogas bactericidas que inibem a síntese de parede celular, por afetar a
formação da cadeia de peptidoglicano das bactérias gram positivas. A vancomicina,
glicopeptídeo mais utilizado, geralmente é bem tolerada mas pode causar reações
adversas (hipotensão, vermelhidão da pele da face, pescoço e tórax, como na síndrome
do homem vermelho) e até ototoxicidade ou nefrotoxicidade (somente em altas doses e
quando associada com aminoglicosídeos). São empregados, principalmente, nas
infecções causadas pelos estafilococos resistentes à oxacilina. Outras indicações:
infecções por enterococos resistentes às penicilinas e meningites causadas por
pneumococos com resistência à penicilina.Atualmente têm surgido cepas de
estafilococos (principalmente S. aureus e S. haemolyticus) com nível intermediário de
sensibilidade à vancomicina (VISA) ou até resistentes (VRSA). Já quanto aos
enterococos é a espécie E. faecium a que mais comumente apresenta cepas resistentes
aos glicopeptídeos. São antibióticos de administração parenteral, sendo que a
vancomicina só é empregada por via endovenosa, em infusão lenta.
Macrolídeos:
Os antibióticos mais importantes desse grupo são a eritromicina, a azitromicina e a
claritromicina. A eritromicina é o antibiótico padrão do grupo, tendo sido o primeiro a
ser utilizado. É um antibiótico natural produzido pelo Streptomyces erytreus, como uma
mistura de três drogas, eritromicina A, B e C. A eritromicina A é a usada
terapêuticamente. De ação bacteriostática, age por inibição da síntese proteica ao se
ligar à fração ribossomal 50S. Podem apresentar resistência cruzada com outros
antibióticos que utilizam mecanismo de ação semelhante como as lincosamidas. Sob
forma de estolato é bem absorvida por via oral, não sofrendo interferência com a
ingestão junto com alimentos.
É um antibiótico de espectro semelhante ao da penicilina G ( bactérias gram
positivas, cocos gram negativos, treponemas, etc.), além da pneumonia atípica (M.
pneumoniae, C. pneumoniae, L. pneumophila), gastrenterite por Campylobacter e para
tratamento da coqueluche.
A resistência natural aos bacilos gram negativos, como as enterobactérias, é devida
à impermeabilidade da membrana externa dessas células aos antibióticos hidrofóbicos.
Pode ainda ocorrer resistência por meio de bomba de efluxo, como já foi detectado em
cepas de S. aureus, S. pneumoniae e estreptococos do grupo A.
A eliminação é feita predominantemente por via biliar. O principal efeito colateral é
a intolerância digestiva – náuseas, vomitos, dores abdominais, diarréia - que pode levar
à suspensão do medicamento. Com o emprego do estolato de eritromicina pode,
eventualmente, surgir quadro de hepatite colestática que é reversível com a retirada do
antibiótico.
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A azitromicina apresenta espectro de ação semelhante ao da eritromicina, sendo sua
principal via de eliminação a mucosa intestinal. Deve ser ingerido em jejum. Sua
ingestão com alimentos pode diminuir a absorção em até 50% da dose. Administrado
uma vez ao dia devido à sua longa meia-vida.
A claritromicina também possui espectro de ação semelhante ao da eritromicina,
sendo, no entanto, mais ativa contra vários agentes de pneumonias comunitárias (S.
pneumoniae, H. Influenzae, C. trachomatis, M. pneumoniae, B. catarrhalis, C.
pneumoniae e L. pneumophila). Administrada de 12 em 12 horas por ter meia-vida
menor que a azitromicina.
Lincosamidas:
A lincomicina e a clindamicina são os principais antibióticos do grupo. Possuem
mecanismo de ação semelhante ao dos macrolídeos, ou seja bloqueio da síntese proteica
por ligação à fração 50S dos ribossomos. Podem apresentar resistência cruzada com os
macrolídeos. Podem ser administrados por via oral ou parenteral. A clindamicina
apresenta atividade quatro a dezesseis vezes superior à da lincomicina para bactérias
anaeróbicas (incluindo espécies de Bacteroides) e para bactérias gram positivas,
podendo, inclusive, ser uma opção para infecções causadas por estafilococos resistentes
à oxacilina. A lincomicina e a clindamicina apresentam elevada concentração óssea
podendo ser utilizadas em casos de osteomielite. O mais grave efeito colateral do uso
das lincosamidas é a colite pseudomembranosa, causada por uma exotoxina do
Clostridium difficile, que pode se desenvolver no intestino de pacientes em uso desses e
de outros tipos de antibióticos. Atualmente, devido ao aumento do número de casos de
infecções causadas por MRSA o uso da clindamicina em pediatria também tem se
elevado, já que a resistência dessas cepas de S. aureus tem permanecido em níveis
inferiores a 10%.
Tetraciclinas:
Apesar de terem sido lançados há bastante tempo, são antibióticos pouco utilizados
na prática médica atual devido não só aos crescentes níveis de resistência bacteriana
como também aos efeitos colaterais que induzem e que os tornam contra-indicados para
gestantes e crianças de até oito anos de idade(se fixam nos tecidos ósseos em formação
do feto, podendo levar a malformações ósseas e dentárias).
Classificação:
• Primeira geração: tetraciclina, clortetraciclina, oxitetraciclina.
• Segunda geraçao: minociclina e doxiciclina.
• Terceira geração: tigeciclina (considerada como a primeira de um novo grupo de
antibióticos, as glicilciclinas).
São drogas bacteriostáticas que inibem a síntese proteica por ligação com a fração
30S dos ribossomos. O mecanismo de resistência mais comum é a ativação do efluxo
do antibiótico para o exterior da célula. Pode ainda ocorrer inibição enzimática, como
visto em cepas do grupo Bacteroides fragilis. Os antibióticos mais ativos desse grupo
são a minociclina, a doxiciclina e a tigeciclina. São de atuação intracelular, sendo
indicados nas infecções por riquétsias, clamídias, brucelas e micoplasmas. Por
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apresentar maior concentração no LCR a minociclina pode ser utilizada na profilaxia da
meningite meningocócica.
A tigeciclina possui um amplo espectro de ação, incluindo aeróbios gram positivos e
gram negativos, anaeróbios, micobactérias de crescimento rápido, micoplasmas e
clamídias. É também uma alternativa para cepas de estafilococos meticilina resistentes e
com sensibilidade intermediária à vancomicina, assim como para enterococos
resistentes (VRE). Também pode ser uma alternativa tanto para cepas multiresistentes
de K. pneumoniae como de Acinetobacter baumannii. Não é útil para infecções por
Pseudomonas aeruginosa devido a um mecanismo de resistência baseado em bomba de
efluxo.
A tigeciclina é administrada por via endovenosa e, em consequência à sua longa
meia-vida, em doses de 12 em 12 horas, sendo a via biliar a principal via de eliminação
da droga.
As demais tetraciclinas são drogas de uso predominantemente oral, sendo que a via
renal é a principal de eliminação da droga, à exceção da doxiciclina onde a eliminação
principal se dá pelo trato gastrintestinal.
Quinolonas:
São drogas derivadas do ácido nalidíxico que agem pela rápida inibição da síntese
de ADN, inibindo a ADN girase bacteriana e a topoisomerase IV, que são enzimas
essenciais à sobrevivência da célula bacteriana, responsáveis pela estrutura de
superhélice do ADN. As quinolonas são divididas em diferentes gerações, de acordo
com o espectro de ação, adição de fluor na posição 6 da molécula e farmacocinética
das drogas. A resistência às quinolonas surge após o aparecimento de enzimas
modificadas ( do alvo de ligação) que não sofrem inibição por essas drogas, como pode
ocorrer com cepas de S. marcescens e de E. coli. Outro mecanismo importante consiste
em processo de efluxo, que retira a droga do interior da célula, como na P. aeruginosa.
A resistência cruzada entre as fluoroquinolonas é quase total, sendo as pequenas
diferenças eventualmente existentes de pouca importância prática. Os efeitos colaterais
costumam se restringir à intolerância digestiva. As fluoroquinolonas não devem ser
utilizadas em gestantes ou em pacientes pediátricos, pois podem ocasionar alterações
nas cartilagens de crescimento. As primeiras quinolonas se restringiam a administração
oral. A partir das de segunda geração, com o surgimento das fluoquinolonas, passaram a
poder ser administradas tanto por via oral como por via endovenosa.
Classificação das quinolonas:
a) Primeira geração: ação antimicrobiana limitada às enterobactérias, sem atividade
contra gram positivos e com ação somente em vias urinárias e intestino. Exemplos:
ácido nalidíxico e ácido pipemídico.
b) Segunda geração: elevada ação contra cocos e bacilos gram negativos, moderada
ação contra P. aeruginosa , ação contra estafilococos sensíveis à oxacilina e com
concentração sistêmica em diferentes órgãos, com exceção do norfloxacin dirigido
apenas às infecções urinárias e intestinais. Exemplos: norfloxacin, ciprofloxacin,
levofloxacin e ofloxacin.
c) Terceira geração: são as chamadas quinolonas respiratórias, que têm ação contra
estreptococos hemolíticos, pneumococos e bactérias das pneumonias atípicas.
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Exemplos: esparfloxacin e grepafloxacin, que apresenta cardiotoxicidade
evidenciada por prolongamento do intervalo QT no eletrocardiograma, com
potencial de causar arritmia ventricular.
d) Quarta geração: além do espectro de ação das de 3ª geração, também têm atividade
contra anaeróbios (moxifloxacin) e contra P. aeruginosa. Exemplos: gatifloxacin,
trovafloxacin, moxifloxacin e clinafloxacin.
Sulfas:
A principal é a associação sulfametoxazol-trimetoprim, associação que interfere
com a produção de ácido fólico pela célula bacteriana, que não é capaz de utilizar
diretamente a vitamina. A sulfa compete na produção de ácido fólico a partir de seu
precursor, o ácido paraaminobenzóico (PABA). O ácido fólico, sob a ação enzimática
da diidrofolato-redutase, transforma-se em ácido folínico, precursor da síntese de bases
nitrogenadas de ácidos nucleicos. Ao final há diminuição na produção de purinas e
pirimidinas que leva à dminuição do crescimento bacteriano. O trimetoprim atua
sinergicamente com a sulfa inibindo a enzima diidrofolato redutase e contribuindo para
a morte bacteriana. O antimicrobiano é, geralmente, utilizado por via oral.
A resistência às sulfas tem ocorrido de forma crescente. Por ser droga de eliminação
renal a associação sulfametoxazol-trimetoprim (ou co-trimoxazol) é utilizada
principalmente no tratamento de infecções urinárias causadas por germes sensíveis.
Outra utilização da associação é no tratamento de infecções por bacilos gram negativos
não fermentadores como a Stenotrophomonas maltophilia e a Burkholderia cepacia.
Devido à imaturidade de expressão das enzimas hepáticas, as sulfas não devem ser
administradas no último trimestre de gestação ou no período neonatal, pois competem
com a ligação da bilirrubina com a albumina sérica, podendo levar ao surgimento de
kernicterus.
Oxazolidinonas:
A linezolida é o antibiótico mais importante do grupo, tendo mecanismo de ação
distinto de todos os outros antimicrobianos conhecidos. De ação bacteriostática, inibe a
síntese proteica por ligação à fração 50S ribossomal, deformando o ARN de transporte
e inibindo sua ligação ao ribossoma, inibindo assim o início da formação do peptídeo.
Não apresenta reação cruzada com outros antimicrobianos. Apresenta poucas reações
adversas, mais voltadas à intolerancia digestiva, como diarréia, náuseas e vômitos. Pode
ocorrer mielossupressão, geralmente reversível, com seu uso prolongado. É indicado
para infecções causadas por bactérias gram positivas resistentes, como os estafilococos
resistentes à vancomicina, assim como para os enterococos resistentes à ampicilina ou
aos glicopeptídeos. Pode ser utilizado por via oral ou venosa. É eliminado em parte pela
via renal e o restante pela via hepática.
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Estreptograminas:
São antibióticos derivados do Streptomyces pristinaspirales, que agem na fração
50S ribossomal, inibindo a síntese proteica. Estão indicados contra bactérias Gram
positivas multiresistentes, como VRE (E. faecium). Há dois deles em uso:
pristinamicina e a quinupristina-dalfopristina. Entre os efeitos colaterais mais
frequentes: artralgia, mialgia, irritação venosa. Deve ser administrado em uma veia
central.
Cloranfenicol:
Apesar de ser uma droga antiga – isolada de cepas de Streptomyces venezuelae em
1947 - ainda permanece útil para o tratamento de infecções graves causadas por
bactérias resistentes a outros antibióticos.
Seu mecanismo de ação baseia-se na inibição da síntese proteica a partir da
subunidade ribossomal 70 S, impedindo assim a adesão do tRNA e a associação dos
aminoácidos com a enzima peptidiltransferase, com a consequente impossibilidade de
formação peptídica. Seu efeito, em consequência, é fundamentalmente bacteriostático.
Atualmente é pouco utilizado, devido à possibilidade de desenvolver efeito colateral
grave, como supressão da produção pela medula óssea (que é reversível e dose-
dependente) ou mesmo anemia aplástica (reação rara mas que pode ser fatal). No
neonato pode provocar a síndrome do bebe cinzento, devido à incapacidade hepática de
metabolizar e excretar a droga.
Pode ser administrado tanto por via oral como parenteral e é eliminado
principalmente pelas vias biliares, sendo que apenas 5 a 10% da dose é excretada pela
urina.
Anfotericina B:
Existem diversos anti-fungicos de ação sistêmica, como a 5-fluorocitosina, o
fluconazol, o cetoconazol, o itraconazol e outros mais recentemente lançados. No
entanto é a anfotericina B ainda o mais empregado e o mais ativo de todos até o
momento em se tratando de infecções graves. Apresenta uma molécula lipofílica
que aumenta a permeabilidade da membrana celular. Em baixas concentrações a
atividade do canal de potássio é aumentada. Em concentrações maiores, poros são
formados na membrana, com perda do potássio intracelular e de outras moléculas
que comprometem a viabilidade do fungo. De uso endovenoso, tem pouca
penetração em meninges, mesmo que inflamadas. Deve ser administrada com
dextrose a 5%, na dose de 0,5 mg/kg/dia. Sua nefrotoxicidade é dose-dependente,
causando diminuição do ritmo de filtração glomerular, além de promover perdas de
potássio, magnésio e bicarbonato e ainda diminuição da produção de eritropoietina.
Pode levar a lesão permanente da função renal, que tem relação com a dose total
utilizada.
Na meningite criptocócica deve ser associado à 5-fluorocitosina, que é
administrada, por via oral na dose de 25 mg/kg a cada 6 horas, devido à excelente
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penetração dessa droga nas meninges inflamadas. A associação das duas drogas, ou
seja, permite obter efeito sinérgico ou, no mínimo, aditivo em relação ao uso isolado
de cada uma. A fluoroocitosina tem como principais efeitos adversos alterações
hematológicas – como leucopenia, anemia e trombocitopenia – e elevação das
enzimas hepáticas.
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Considerações importantes sobre alguns antimicrobianos
Penicilina:
As principais utilizações do uso parenteral da penicilina nos dias de hoje se
restringem ao tratamento de infecções por estreptococcos dos grupos A e B, meningite
meningocócica/meningococcemia e sífilis.
Ampicilina e amoxicilina:
A amoxicilina atinge concentrações duas vezes maiores que a ampicilina em
líquidos corporais (ouvido médio, seios nasais, broquios, urina).
O uso da ampicilina deve ser restrito a infecções graves causadas por cepas de
Enterococcus faecalis sensíveis ao medicamento.
A amoxicilina, para a maioria das infecções, deve ser utilizada na dose máxima, a
cada 8 horas, por ser um antibiótico em parte também concentração-dependente.
Amoxicilina/Clavulanato:
A associação amoxicilina/clavulanato é eficiente no tratamento de infecções
causadas por cepas de H. influenzae resistentes à amoxicilina.
Não há vantagens em tratar com essa associação infecções causadas por bactérias
sensíveis à amoxicilina.
O uso da associação deve ser a cada 8 horas, como já referido para a amoxicilina.
Penicilinas anti-estafilocócicas:
As de uso oral, como a dicloxacilina, são de baixa absorção, não sendo
recomendadas para o tratamento de infecções causadas por cepas de S. aureus sensíveis
à meticilina (MSSA).
Para tratamento por via oral de infecções por MSSA, é preferível uma cefalosporina
de primeira geração - como a cefalexina - à uma penicilina anti-estafilocócica.
Cefalosporinas:
As cefalosporinas de 1ª geração, especialmente a cefazolina, tem melhor ação contra
os MSSA, sendo , no entanto, inativas contra cepas de MRSA.
As cefalosporinas não são indicadas para infecções causadas por enterococos.
A cefoxitina continua sendo útil na terapia empírica de infecções intra-abdominais,
mas também não tem ação contra os enterococos, sendo necessária a administração
simultanea de outra droga que seja eficiente para esse grupo de microrganismos.
Evitar uso de ceftriaxone em neonatos, pelo risco de desenvolvimento de
kernicterus.
As cefalosporinas de terceira geração são úteis nas meningites bacterianas.
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O uso de ceftazidime pode promover o desenvolvimento de resistencia bacteriana
(como enterobactérias produtoras de ESBL, MRSA e P. aeruginosa resistente a
multiplas drogas).
Monobactâmicos:
Aztreonam não tem atividade contra bactérias gram positivas.
Carbapenêmicos:
Evitar uso de imipenem em pacientes com convulsões ou distúrbios do Sistema
Nervoso Central. Nesses casos prefira o uso de meropenem.
Os antibióticos desse grupo têm ação contra as enterobactérias produtoras de ESBL.
O ertapenem não tem atividade contra enterococos e contra Pseudomonas.
Associações com inbidores de betalactamases:
As associações são ativas contra Bacteroides fragilis.
Algumas cepas de Acinetobacter baumannii só são sensíveis à associação
ampicilina-sulbactam.
Cloranfenicol:
Apesar de ser uma droga tóxica, continua sendo uma alternativa para tratamento de
infecções sistemicas graves causadas por Enterococcus faecium (VRE).
Lincosamidas:
A clindamicina é um dos poucos antibióticos capazes de penetrar nos biofilmes
produzidos por estafilococos , especialmente os coagulase negativos.
A clindamicina é ativa contra a maioria dos cocos gram positivos, mas não para os
enterococos.
A incidencia de diarréia por Clostridium difficile é maior com o uso oral da
clindamicina que com o endovenoso.
As lincosamidas apresentam elevada concentração óssea.
Sulfa-trimetoprim:
Embora inativo contra os estreptococos é uma droga de excelente ação contra os
MSSA.
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Seu uso principal continua sendo para o tratamento de infecções urinárias causadas
por germes sensíveis.
Vancomicina:
Atualmente o poder nefrotóxico da droga é considerado mínimo.
A droga é concentração-dependente, sendo necessário seu uso em dose de 30 a 40
mg/kg/dia para infecções sistêmicas graves.
A vancomicina é bactericida contra estafilococos e bacteriostática contra os
enterococos.
A vancomicina não penetra em ossos e pulmões, devido ao seu grande peso
molecular.
Linezolida:
A droga é altamente efetiva contra os principas germes gram positivos de maior
resistencia (MRSA e VRE).
Ao contrário do que ocorre com o uso da vancomicina, o uso da linezolida não
aumenta a prevalência de Enterococcus faecium (VRE).
A linezolida é igualmente efetiva quando administrada tanto por via oral como por
via endovenosa.
Macrolídeos:
Evite, sempre que possível, o uso de macrolídeos para o tratamento de infecções
respiratórias. Seu uso generalizado tem sido associado ao aumento da incidência de
Streptococcus pneumoniae resistente à penicilina, assim como a cepas dessa bactéria
com resistência múltipla.
O estolato de eritromicina pode causar icterícia colestática em adultos, mas não em
crianças.
Metronidazol:
Sua longa meia vida permite sua utilização em dose única diária.
É o antimicrobiano preferido para terapia endovenosa de colite causada por
Clostridium difficile.
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Princípios gerais de uso de antimicrobianos
Pode-se afirmar que, de uma maneira geral, utiliza-se pouco o potencial atual da
microbiologia clínica. Talvez isso seja ainda reflexo da maneira pouco ágil com que
trabalhávamos até um passado recente. Com os novos métodos de trabalho, e com a
chegada da automação, as respostas têm sido cada vez mais rápidas e eficientes. Como
exemplo poderia citar as hemoculturas automatizadas que costumam se positivar, na
maioria dos casos, em 24 a 48 horas. Uma simples bacterioscopia de uma hemocultura
positiva pode ajudar consideravelmente na condução do tratamento antimicrobiano, até
a liberação final da cultura.
Por outro lado, sabemos que nem sempre febre é sinal de infecção. Ela pode ocorrer
por várias outras causas e também há pacientes - como os idosos, neonatos e
imunodeprimidos em geral - que podem ter infecção sem apresentar elevação da
temperatura corporal.
Há ainda doenças infecciosas que pelo quadro clínico característico dispensam, na
maioria das vezes, o apoio laboratorial para o seu diagnóstico, como é o caso de
algumas viroses como a varicela e a caxumba.
No entanto, quando a etiologia provável da infecção for bacteriana ou fúngica o
apoio microbiológico é fundamental, especialmente ao se tratar de infecções por
bactérias de sensibilidade variável aos antimicrobianos, como costuma ocorrer na
maioria dos casos.
Assim o primeiro passo na suspeita de uma infecção por agente desconhecido é
solicitar os exames complementares mais apropriados para o caso. Uma simples
bacterioscopia pode ser muito útil, especialmente quando a infecção ocorre em sítio
normalmente estéril. O resultado pode orientar o médico assistente a introduzir uma
terapia empírica racional, ou seja baseada nos resultados preliminares do exame direto
até que a cultura seja liberada.
Quanto à seleção da droga a ser utilizada após a liberação do teste de sensibilidade,
vários fatores devem ser considerados, como:
Sistema imunológico do hospedeiro: esse é o aspecto mais importante a ser
considerado. O sistema imune é reconhecido como um complexo sistema de defesas
que incluem o sistema inato e o adaptativo. O primeiro utiliza multiplas famílias de
receptores-padrão de reconhecimento que disparam uma variedade de mecanismos de
defesa antimicrobianos, enquanto o segundo compreende as respostas produzidas pelos
linfócitos T e B em respostas recombinadas somaticamente em reconhecimento a
virtualmente qualquer antígeno. Se o indivíduo estiver com seu sistema imunológico
em perfeito funcionamento, é possível que até mesmo sem qualquer antimicrobiano
possa se curar de uma infecção de pequena ou média gravidade, como ocorria na era
pré-antibiótica. Já no caso de algum tipo de imunodeficiência, isso provavelmente não
poderá ocorrer. Essa diferença implica em qual tipo de antimicrobiano iremos escolher
para o combate a uma determinada infecção.
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Identificação do patógeno.
Se por exemplo, isolamos um enterococo de uma hemocultura, em paciente com
suspeita de endocardite, evidentemente vamos pensar em uma associação de
ampilicina com gentamicina como terapêutica inicial, desde que o teste de
sensibilidade não contraindique essa associação. Já uma infecção por germe
anaeróbico, como o Clostridium, nos levaria a sugerir o uso de penicilina G.
Deve-se lembrar ainda que quanto mais específico o espectro de ação do
antimicrobiano, menores serão seus efeitos colaterais pois menor será sua atuação
sobre a microbiota normal impedindo, em conseqüência, o crescimento
incontrolando de cepas resistentes.
Local da infecção.
É fundamental saber se no sítio da infecção o antimicrobiano apresenta níveis
terapêuticos. De nada adianta administrar uma droga que não apresenta, no local da
infecção, níveis capazes de, ao menos ,inibir o crescimento microbiano. Sensibilidade
“in vitro”, ou seja no teste de sensibilidade, não significa necessariamente sensibilidade
“in vivo”, ou seja na topografia da infecção, o que significa que para ser efetivo o
antimicrobiano deve apresentar níveis superiores à concentração inibitória mínima para
o agente infeccioso no local onde ocorre a infecção.
Farmacocinética.
A farmacocinética diz respeito à absorção, distribuição, metabolização e
eliminação das drogas. A absorção é mais rápida e completa se feita por via
endovenosa. Assim o pico de concentração é obtido quase imediatamente. Em
conseqüência, a via venosa é a mais indicada nos casos de infecção severa. Outras
vias como a intramuscular e a oral são mais lentas e incertas por poderem ser mais
afetadas por fatores fisiológicos. Nesses casos o pico de concentração é retardado
e geralmente não atingem o nível alcançado quando se utiliza a via venosa.
No entanto há alguns antimicrobianos que apresentam excelente
biodisponibilidade por serem bem absorvidos pelo trato gastrintestinal, com uma
alta porcentagem das drogas atingindo a circulação sanguínea. Esse é o caso da
amoxicilina, o metronidazol, a doxiciclina e a sulfa-trimetoprim.
Entretanto, quando há hipotensão arterial , como em algumas septicemias, a
absorção pela via oral e intramuscular fica comprometida pela alteração da
circulação sanguínea. Nesses casos só resta a via endovenosa como alternativa
para a administração dos medicamentos.
A absorção oral pode ser afetada também nas alterações do intestino delgado, nas
colites, na isquemia intestinal e mudanças do pH gástrico, além de poder ocorrer
variações de absorção de alguns antibióticos dependendo da ingestão ou não de
alimentos, como no caso da eritromicina, sob forma de estearato, que pode ser
mal aborvida se administrada junto com comida.
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Após a absorção a droga é distribuída para os vários compartimentos do
organismo. Absorção, distribuição, metabolismo e eliminação começam quase
simultaneamente, fazendo parte de um processo dinâmico que varia ao longo do
tempo de acordo com as características de cada antimicrobiano. Todos esses
fatores afetam os níveis de concentração sérica, e em seguida, os níveis tissulares
e os do local da infecção. Mesmo aqui podem ocorrer interferências significativas
que podem afetar a ação dos antibacterianos. Os aminoglicosídeos e a
eritromicina, por exemplo, tem atividade diminuida em pH ácido, como nos
abscessos. Os aminoglicosídeos não são efetivos nas infecções anaeróbicas,
porque sua penetração nas células depende do oxigênio. A presença de corpo
estranho pode também ser significativa, como no caso de bactérias crescendo em
um cateter vascular, e se protegendo com uma cobertura mucóide produzida pelo
micróbio - “slime” - da ação dos mecanismos de defesa do organismo e dos
antimicrobianos.
Com relação à penetração dos antimicrobianos no LCR, eles se dividem em dois
grupos principais:
a) agentes lipofílicos (como as fluoroquinolonas, cloranfenicol, rifampicina e
sulfas), que penetram relativamente bem, mesmo na ausência de processo inflamatório,
e alcançam picos de concentração elevados no LCR.
b) agentes hidrofílicos (como os betalactamicos e vancomicina), que têm
penetração no LCR diminuída se as meninges não estiverem inflamadas e
alcançam picos de concentração de forma mais lenta que os do outro grupo.
Há ainda as infecções com características intracelulares, como nas infecções por
Salmonella, Listeria, Chlamydia e Mycobacterium em que os antimicrobianos
,para serem eficientes ,têm que se concentrar no meio intracelular.
A eliminação tem a ver com a meia vida da droga no sangue. Drogas de
eliminação rápida, como os betalactâmicos, têm meia vida curta. Já drogas de
eliminação mais lenta, como os macrolídeos, têm meia vida mais longa. Isso vai
repercutir na maneira de administrar o medicamento. Por outro lado a via de
eliminação principal é a de maior concentração da droga, podendo ser um fator
para sua maior eficiência quando o local da infecção é o mesmo local principal de
eliminação. A maioria dos betalactâmicos, sulfas, aminoglicosídeos e
fluoroquinolonas são eliminados por via renal. Uma infecção nessa topografia
terá, em consequência, altas concentrações desses antimicrobianos o que facilitará
a resolução do quadro infeccioso.
Farmacodinâmica.
Diz respeito à forma de interação da droga com os microrganismos. Deve-se
preferir sempre um agente bactericida a um bacteriostático, especialmente ao
tratarmos de pacientes com imunodepressão. Isso ocorre, geralmente, quando há
pouca diferença entre os níveis de concentração inibitória mínima, CIM, e de
concentração bactericida mínima, CBM (geralmente duas a quatro vezes a CIM).
Pode ainda ocorrer ação sinérgica entre dois antimicrobianos, como no caso da
associação penicilina e aminoglicosídeo nas infecções por enterococos. Nesse
caso a ação das duas drogas simultaneamente é maior que a ação isolada de cada
uma delas. Ainda com relação à farmacodinâmica existe o chamado efeito pós-
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antibiótico, ou supressão persistente do crescimento bacteriano mesmo após a
queda dos níveis séricos abaixo da CIM para determinada bactéria. Esse efeito é
responsável, por exemplo, pelo atual emprego dos aminoglicosídeos em dose
única diária, que resultou ainda em diminuição dos níveis de toxicidade em
relação ao uso anterior em doses fracionadas.
Deve-se lembrar ainda que há pelo menos dois tipos de antimicrobianos quanto à
forma que determina o sucesso terapêutico, ou sua relação quanto ao tempo ou à
concentração da droga. Quanto às drogas com ação dependente do tempo, o
exemplo clássico são os betalactâmicos em que o fator crítico que determina a
morte bacteriana é a porcentagem de tempo em que a concentração do
antimicrobiano está acima da CIM (ou, no mínimo, em 40 a 50% do intervalo de
tempo entre as doses). Já nas drogas do tipo concentração dependente, como nos
aminoglicosídeos e fluoroquinolonas, o fator mais importante diz respeito ao pico
de concentração alcançável pelo antibiótico ou a exposição acumulativa a um
antibiótico(área sobre a curva de concentração/tempo).
Toxicidade.
Deve-se, sempre, procurar escolher a droga mais efetiva e menos tóxica para cada
paciente, especialmente nas gestantes, crianças e idosos ou em pacientes com
comprometimento orgânico, principalmente da função renal ou hepática, que
podem levar à acumulação da droga se a dosagem ou o intervalo entre as doses
não for alterado.
Altas concentrações de imipenem, penicilinas e fluoroquinolonas, por exemplo,
podem causar convulsões.
Altos níveis de aminoglicosídeos podem causar ou exacerbar um quadro de
insuficiência renal.
Altos níveis de vancomicina ou também de aminoglicosídeos, especialmente
quando administrados em associação, podem causar dano vestibular ou de
audição.
O clearance de creatinina pode servir como útil indicador de como a dose do
antimicrobiano deve ser ajustada, em pacientes nefropatas. Uma forma rápida de
calcular o clearance pode ser feita com esta simples fórmula:
Clearance de creatinina = (140 – idade ) x N/creatinina sérica.
Multiplicar o resultado por N (fator de correção relativo à diferença de massa
muscular entre os gêneros).
N = 1,23 (para homens) ou 1,03 (para mulheres).
Uma redução do clearance em 50% (como 40 a 60 ml/min) recomendaria a
diminuição das doses subsequentes em 50%, mantendo-se a dose inicial sem
alteração.
Nas reduções ainda menores do clearance (como 10 a 40 ml/min) deve-se
diminuir a dose da droga em 50% e dobrar o intervalo entre as doses.
Infelizmente, para os hepatopatas não existe uma fórmula de correção de doses de
antimicrobianos. Recomenda-se nesses casos evitar, se possível, a administração
de antibióticos de eliminação predominante por via biliar como é o caso do
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cloranfenicol, cefoperazona, doxiciclina, macrolídeos, clindamicina, metronidazol
e linezolida.
Sensibilidade bacteriana.
Os testes de sensibilidade são úteis como orientação básica, sendo seu valor
preditivo negativo (quais não devem ser usados) maior que seu valor preditivo
positivo (quais serão eficazes), ou seja eles servem mais para sinalizar quais
antimicrobianos mais provavelmente levarão ao insucesso terapêutico. Isso se
deve ao fato de que as condições de realização dos testes de sensibilidade não
contemplam uma série de variáveis que podem influenciar no desfecho do
tratamento, tais como a possibilidade da droga atingir níveis terapêuticos no local
da infecção, a presença de comorbidades e a situação das vias de absorção,
metabolização e eliminação do antimicrobiano.
Duração do tratamento.
O tempo de administração de antimicrobianos é, na maioria das vezes, variável de
acordo com a evolução do quadro clínico e da resposta terapêutica.
Na maioria das vezes utiliza-se a terapia por uma a duas semanas.
No entanto, a duração poderá ser estendida em pacientes imunocomprometidos
(diabetes, doenças auto-imunes, neutropenia, hepatopatia severa, etc.), nas
infecções bacterianas cronicas (osteomielite, endocardite, etc.), infecções
fungicas, AIDS e nas doenças com patógeno de localização predominantemente
intracelular (tuberculose, hanseníase, nocardiose, etc.).
Mudança de tratamento.
Avaliar a possibilidade de troca dos medicamentos caso o paciente não responda à
antibioterapia em até 72 horas.
Uso de associações de antimicrobianos.
Só recomendável nas infecções polimicrobianas, para evitar resistência bacteriana
(tuberculose), no tratamento inicial de infecções graves, em pacientes
imunodeprimidos e na endocardite bacteriana onde se procura obter efeito
sinérgico.
Custo:
A mudança precoce de administração de via endovenosa para via oral representa a
forma mais simples de barateamento do custo em pacientes hospitalizados.
Outras formas constituem a monoterapia (ao invés de associações), o uso de
antimicrobianos com maior meia-vida e também evitar aqueles com maior risco de
desenvolver efeitos colaterais (como diarréias, alergias, convulsões, flebites, etc.)e de
maior possibilidade de induzir resistência microbiana.
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Profilaxia em cirurgia:
É utilizada para alcançar o máximo de concentração antibiótica sérica em relação à
concentração tecidual no tempo da incisão cirúrgica inicial, sendo mantida durante todo
o período de vulnerabilidade do procedimento, ou seja, desde a incisão até o
fechamento da pele.
Geralmente obtida com uma única dose do antimicrobiano mais adequado, ou seja,
o mais indicado para prevenir infecção para os germes mais prováveis de causarem
infecção no sítio a ser operado.
Geralmente se emprega uma cefalosporina de 1ª geração, como a cefazolina, por via
endovenosa, de 15 a 60 minutos antes do início da cirurgia.
Sua continuação por tempo excessivo - ou além de 24 horas - pode selecionar cepas
multiresistentes e levar a infecção por bactérias resistentes.
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Septicemia
A palavra sepsis é derivada da palavra grega sepein, que significa putrefazer ou
apodrecer. Já o Dicionário Houaiss, edição de 2001, define sepsis ou septicemia, como a
presença de microrganismos patogênicos ou de suas toxinas na corrente sanguínea ou nos
tecidos. Na verdade entre as diversas controvérsias existentes sobre o tema, a definição de
sepsis é apenas mais uma delas. A definição mais simples refere que sepsis é a resposta do
hospedeiro a um agente microbiano e, por extensão, às suas toxinas.Há ainda quem
considere sepsis como uma ativação generalizada do sistema imune na presença de uma
infecção suspeita ou comprovada .Uma outra versão considera sepsis o termo diagnóstico
presuntivo para febre associada com bacteremia, com ou sem hipotensão. Outros
consideram o termo sepsis como uma síndrome de resposta inflamatória sistêmica
consequente a uma determinada infecção.
No entanto, o termo sepsis engloba um conjunto bastante heterogêneo de tipos de
pacientes, de sítios diferentes de infecção, de uma grande variedade de microrganismos
com virulência e carga microbiana diversa, além de induzir respostas inflamatórias
diferentes dependendo do tipo de paciente e do estado de suas defesas imunológicas.
Além disso, a sepsis pode variar amplamente em termos de morbimortalidade, desde
uma septicemia inicial, uma sepsis grave, um choque séptico e até uma falência múltipla de
órgãos, que leva ao desfecho insatisfatório do processo com a morte do paciente.
Importância da sepsis
Ao longo de 2000, a incidência de sepsis em adultos nos Estados Unidos da
América (EUA) foi de 240 casos por 100.000 habitantes, ou quase 800.000 por ano com
uma estimativa de aumento anual de 1,5%.
Entre as razões elencadas para esse crescimento estão o envelhecimento
populacional, maior número de pacientes imunocomprometidos devido aos transplantes,
maior uso de medicamentos imunossupressores, maior sobrevida dos pacientes com AIDS
e com câncer, além de maior resistência microbiana.
A sepsis é responsável por 9% dos óbitos, sendo considerada a décima causa de
morte nos EUA e cerca de 50% dos casos evoluem para sepsis severa e metade desses para
choque séptico, sendo o custo do seu tratamento estimado em torno de 17 bilhões de
dólares.
No Brasil, em estudo epidemiológico realizado com 65 hospitais de todas as regiões
do país durante o ano de 2003, a mortalidade por sepsis, sepsis severa e choque séptico foi,
respectivamente, de 16,7%, 34,4% e 65,3%. Ou seja, a cada agravamento do quadro dobrou
a mortalidade do processo infeccioso, sendo a sepsis a principal causa de morte nas
unidades de terapia intensiva. Outro estudo envolvendo pacientes cirúrgicos não cardíacos,
também evidenciou ser a sepse a principal complicação em unidades de terapia intensiva no
Brasil, acometendo 23 % dos pacientes operados e com a maioria dos óbitos sendo
atribuída à falência múltipla de órgãos.
Por sua vez, a sepsis neonatal é a 6ª causa de morte entre os neonatos nos EUA, com
1 a 5 casos por 1.000 nascidos vivos, com sua incidência e morbimortalidade inversamente
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relacionada ao baixo peso e à idade gestacional. No Brasil, em estudo realizado em 2004,
em hospital público de Santa Catarina, a incidência foi de 50,3 casos por 1.000 nascidos
vivos, que mostra considerável discrepância em relação aos dados dos EUA.
Padronização de conceitos
Como havia evidentes distorções em termos conceituais, houve necessidade de uma
padronização nessa área. A primeira tentativa nesse sentido surgiu em 1992 por iniciativa
do American College of Chest Physicians e Society of Critical Care Medicine e que vem
sendo aperfeiçoada desde então.
a)Infecção: presença de microrganismos em local normalmente estéril.
b)Bacteremia: presença de bactérias viáveis no sangue. Costuma ser transitória e
assintomática.
c)Fungemia: presença de fungos ou leveduras no sangue. Semelhante à bacteremia.
d)Síndrome da Resposta Inflamatória Sistêmica (SIRS): resposta sistêmica a
variados tipos de agressão, que podem ser de origem infecciosa ou não.
Compreende duas ou mais das seguintes condições: temperatura > 38ºC ou < 36ºC;
freqüência cardíaca > 90/minuto; freqüência respiratória > 20/minuto ou PaCO2 <32
mmHg; leucócitos > 12.000/mm3 ou < 4.000/mm3 ou >10% de bastões.
e)Sepsis: quando existe uma resposta inflamatória sistêmica (SIRS) devido à uma
infecção comprovada ou suspeita.
f)Sepsis severa: sepsis associada com disfunção de órgão distante do local da
infecção, hipoperfusão ou hipotensão. As anormalidades podem incluir acidose láctica,
oliguria, alteração aguda do estado mental e injuria pulmonar aguda. A hipotensão, ou
pressão arterial sistólica menor que 90 mmHg, pode ser reversível com a administração de
fluidos.
Entre as alterações laboratoriais mais importantes estão a creatinina > 2,0 md/dL;
INR > 1,5 ; PTTa >60 segundos ; trombocitopenia; bilirrubina total > 2,0 mg/dL.
g)Choque séptico: sepsis com falência circulatória aguda, apesar da reposição
adequada de fluidos e que requer uso de vasopressores. Se o choque durar por mais de uma
hora sem responder à terapia considera-se como choque séptico refratário.
h)Síndrome da falência múltipla de órgãos: disfunção de mais de um órgão
requerendo intervenção para manter a homeostase.
Epidemiologia
1. Sepsis neonatal
A sepse neonatal se caracteriza por acometer principalmente prematuros, com baixo
peso ao nascer. Entre os outros fatores de risco mais envolvidos estão a presença de
infecção materna, especialmente as do trato urinário, e a rotura de membranas com mais de
18 horas.
Quanto à possibilidade de infecção por fungos, os principais fatores de risco são a
colonização prévia por leveduras, hospitalização prolongada, uso de antimicrobianos de
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largo espectro, prematuridade, uso de dispositivos invasivos como cateter venoso central ou
ventilação mecânica, presença de imunodeficiências e nutrição parenteral total.
Os padrões habituais de sepse se dividem em períodos de instalação precoce, tardia
e pós-tardia, conforme a tabela 1.
Tabela 1. Padrões de sepse neonatal.
Variáveis Sepse precoce Sepse tardia Sepse pós-tardia
Instalação < 7 dias e geralmente
< 48 h
Entre 7 a 15 dias > 15 dias
Gestação <37 semanas Termo < 30 semanas
Fatores de risco
principais
Complicações
maternas intra parto
Quebra de barreiras
naturais de defesa
Prematuridade
considerável
Origem do
microrganismo
Trato genital
materno
Geralmente
nosocomial
Geralmente
nosocomial
Microrganismos mais
envolvidos
Streptococcus
agalactiae (grupo B)
e enterobactérias (E.
coli, Klebsiella, etc.)
Staphylococcus
coagulase negativos,
S. aureus,
enterobactérias,
BGNNF e leveduras
Enterobactérias,
BGNNF e leveduras
BGNNF = Bacilos Gram Negativos Não Fermentadores (principalmente dos
gêneros Pseudomonas, Acinetobacter, Stenotrophomonas e Burkholderia).
2. Sepse no adulto
No adulto acomete principalmente pessoas com mais de 60 anos, com comorbidades
e pacientes que se submeteram a cirurgia devido a uma infecção intra-abdominal. Outros
fatores: desnutrição, hipotermia, uso de cateter venoso central, intubação endotraqueal ou
ventilação mecânica, aspiração, doenças crônicas (diabetes, insuficiência renal, hepatopatia
crônica, alcoolismo, AIDS, câncer) e uso de drogas imunossupressoras.Quanto ao foco
inicial, a sepse costuma ter origem respiratória ou intra-abdominal na maioria das vezes.
Outras origens podem ser a sanguínea ou as associadas a cateter; o trato urinário; o trato
gastrintestinal e as infecções de ferida e de tecidos moles, principalmente.
É possível afirmar, baseado nos novos estudos de farmacodinâmica e
farmacocinética dos antimicrobianos, que a história natural da sepsis depende da interação
de três atores principais: o hospedeiro, o agente etiológico e o antimicrobiano, que usado de
forma correta ou não costuma definir o curso da infecção.
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Fisiopatologia
A fisiopatologia da sepsis depende do tipo de microrganismo envolvido, do local de
origem da infecção -sendo que a origem pulmonar ou abdominal tem risco bem maior de
desenvolver sepsis severa que as do trato urinário, por exemplo - , da presença ou não de
comorbidades e do tipo de resposta imune que o paciente é capaz de desenvolver.
Bactérias podem conviver harmonicamente com seu hospedeiro, porém quando uma
barreira de defesa é rompida, como ao penetrar em uma solução de continuidade da pele,
rapidamente macrófagos e neutrófilos, principalmente, entrarão em contato com o micróbio
no local da invasão. Essas células percebem o invasor por meio do reconhecimento de seus
antígenos de superfície, de suas toxinas ou de outros produtos bacterianos. A partir daí as
células de defesa liberam diversas moléculas, como mediadores pró-inflamatórios, que irão
disparar uma cascata de outras substâncias na tentativa de produzir uma resposta
coordenada, sendo que ao longo do processo a síntese dos componentes dessa cascata é
aumentada em muitas etapas. Algumas dessas moléculas são pró-inflamatórias e outras
anti-inflamatórias, como numa tentativa do organismo de manter a homeostase, como
apresentado na tabela 2. A cascata inflamatória resulta da adesão neutrófilo-célula
endotelial, ativação da coagulação e geração de outros mediadores secundários, como
cininas, prostraglandinas, leucotrienos e proteases.
Vale lembrar que inflamação e coagulação são bastante relacionadas. A coagulação
é talvez um dos mecanismos mais antigos de defesa do organismo, sendo que contribui para
a formação de abscessos, com o objetivo limitar o desenvolvimento da infecção.
A fisiopatologia da sepsis envolve ainda mecanismos distintos dependendo do
grupo microbiano envolvido:
1. Bacilos Gram Negativos. Aqui o processo é iniciado pela endotoxina,
componente lipopolissacarídico (LPS) da parede celular. A simples fagocitose de
endotoxina pelos macrófagos causa a liberação de citocinas para combater um possível
invasor.
2. Cocos Gram Positivos. Componentes da parede celular desse grupo, como a
molécula de peptidoglicano e ácidos lipoteicóicos desencadeiam respostas semelhantes às
induzidas pelo LPS dos bacilos Gram negativos. Além disso, alguns estafilococos e
estreptococos podem produzir superantígenos, que são proteínas que tem a capacidade de
disparar uma ativação amplificada e não convencional dos linfócitos T, com conseqüente
ativação de outras células e grande liberação de citocinas e outros mediadores, como na
síndrome do choque tóxico causada por algumas cepas de Streptococcus pyogenes e de
Staphylococcus aureus.
3. Cocos Gram Negativos. No caso da Neisseria meningitidis, e outros poucos
patógenos intravasculares, a bactéria circulante é diretamente responsável por iniciar a
inflamação nos vasos sanguíneos, liberando sua endotoxina e rapidamente induzindo a
coagulação intravascular disseminada, sepsis severa e choque.
4. Leveduras: moléculas de sua parede celular, como beta-glicanos e resíduos de
manose, também podem levar a um quadro semelhante ao produzido pelo LPS dos bacilos
Gram negativos e pelo peptidoglicano dos cocos Gram positivos.
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Dependendo da adequação ou não da resposta imune e do tratamento
antimicrobiano associado, o processo poderá levar à cura ou poderá evoluir para sepsis
severa, choque séptico, falência múltipla de órgãos ou óbito.
Tabela 2. Principais moléculas envolvidas na fisiopatologia da sepsis.
Pró-inflamatórias Anti-inflamatórias
Prostraglandinas, leucotrienos ACTH, cortisol
Fatores da coagulação IL-4, IL-6, IL-10, IL-13
Fatores do complemento Epinefrina
Citocinas e quimiocinas (IL-1, IL-2, TNF,
IFN, etc.)
Antagonistas de cininas (IL-1RA, sTNF-
Rs)
Histamina e serotonina TGF-beta
Cininas, MIF, Oxido nítrico Inibidores de protease
Superóxido, Peróxido de hidrogênio Anti-oxidantes (haptoglobina)
Diagnóstico
O diagnóstico presuntivo da sepsis deve ser rápido e correto. Isso porque há outras
condições que podem cursar com febre, leucocitose com aumento de bastões ou mesmo
hipotensão e que precisam ser lembradas no diagnóstico diferencial.
Entre as mais comuns está a desidratação, a hemorragia aguda, a embolia pulmonar,
o infarto do miocárdio, a pancreatite aguda e a cetoacidose diabética.
No neonato a situação é ainda mais complexa. Em geral o recém nascido com sepse
apresenta instabilidade térmica (febre ou hipotermia), dificuldades de alimentação, diarréia,
taquipnéia ou apnéia, taquicardia ou bradicardia, alteração do estado mental variando desde
agitação a letargia, hipoglicemia e até uma icterícia de origem indeterminada.
Alguns achados laboratoriais ajudam a considerar a sepse como diagnóstico mais
provável, como a morfologia dos leucócitos apresentando granulações tóxicas e vacúolos, a
hemoconcentração devido a considerável hipovolemia, a trombocitopenia e o aumento do
ácido láctico. A dosagem da proteina C-reativa (PCR) não serve para auxílio diagnóstico da
sepse, por apresentar baixa sensibilidade e especificidade.
Como a origem da sepse costuma ser principalmente pulmonar, abdominal, do trato
urinário e da pele e tecidos moles, essas quatro fontes iniciais devem ser primeiramente
investigadas, assim como colhidas amostras para cultura, além de pelo menos duas
amostras para hemocultura obtidas com intervalo mínimo de 15 minutos entre elas, com
pedido para germes aeróbios e anaeróbios.
É fundamental ainda que as amostras para cultura sejam coletadas antes do início da
antibioticoterapia, sob pena de vir a tornar todas as culturas falsamente negativas.
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Tratamento
Em 2007, um grupo de peritos no diagnóstico e tratamento de infecções e
septicemias, representando diferentes organizações como o American College of Chest
Physicians, European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases, e Surgical
Infection Society, entre outras, elaborou uma pauta de recomendações de como se deveria
tratar a sepsis severa e o choque séptico, no sentido de diminuir consideravelmente a
mortalidade por essas doenças em futuro próximo
1
.
Entre suas principais recomendações, estavam:
a) Ressuscitação inicial nas primeiras seis horas, com o objetivo primordial de
restabelecer o quanto antes a oxigenação e a perfusão tecidual, de forma a
minimizar as lesões orgânicas secundárias.
b) Diagnóstico precoce do agente(s) etiológico(s), mediante a obtenção de amostras
para hemocultura e de outros locais suspeitos.
c) Antibioticoterapia precoce, administrada por via endovenosa, iniciada
preferencialmente na primeira hora do diagnóstico de sepsis e que mesmo sendo
empírica deve ser racional, ou seja, visando a uma cobertura tão ampla quanto
necessária, mas que procure atingir os micróbios mais provavelmente envolvidos
em cada caso.
d) Identificação da fonte de infecção e seu controle.
Todos os estudos têm demonstrado ser a antibioticoterapia o fator principal de
controle e resolução da doença, à exceção dos casos em que a remoção de um abscesso,
presença de tecido necrosado ou outro tipo de situação requeira uma intervenção
cirúrgica.
Novos estudos de farmacocinética e farmacodinâmica das drogas têm demonstrado
que não basta utilizar os antimicrobianos mais adequados, mas também procurar utilizá-
los da melhor forma possível e sempre na dose máxima e por via endovenosa.
Há antibióticos que são concentração-dependente (Cmax/CIM), como os
aminoglicosídeos, que possuem efeito pós-antibiótico significativo, podendo ser
administrados em dose única diária e com menores efeitos colateriais inclusive. Já
outros, como os betalactâmicos (penicilinas, cefalosporinas e monobactamicos), são
tempo-dependentes, ou seja, necessitam de ter níveis de concentração sérica acima da
CIM (Concentração Inibitória Mínima) por mais tempo para surtirem o efeito desejado
(T >CIM).
Por sua vez as fluoroquinolonas e os glicopeptídeos comportam-se em parte como
as drogas concentração-dependente e em parte como as do tipo tempo-dependente. A
ciprofloxacina, por exemplo, necessita de uma relação Cmax/CIM igual a 10 para ser
efetiva na erradicação bacteriana.
Os carbapenemicos têm propriedades farmacocinéticas semelhantes às dos
betalactamicos, havendo necessidade de T>CIM sendo mantida por um mínimo de 40%
entre os intervalos das doses.
1
Dellingerm R. P. et al. Surviving Sepsis campaign: international guidelines of severe sepsis and septic
shock.
88
88
88
A tigeciclina, novo antimicrobiano derivado da molécula da minociclina e
considerado o primeiro de uma nova classe de antimicrobianos denominada
glicilciclinas, possui amplo espectro de ação incluindo bactérias Gram positivas e Gram
negativas, aeróbicas e anaeróbicas. Com relação à farmacocinética é uma droga tanto
concentração-dependente como tempo-dependente.
Na seleção de antimicrobianos para início de terapia empírica alguns aspectos
devem ser lembrados, como:
- Uma monoterapia baseada na cobertura dos patógenos mais prováveis de acordo
com o foco de origem da infecção.
- Um antimicrobiano com boa penetração no órgão afetado.
- Uma droga com baixo potencial de desenvolver resistência.
- Um antimicrobiano com poucos efeitos colaterais.
- Um antimicrobiano com meia-vida mais longa e que necessite menor número de
doses diárias.
A existência de antimicrobianos de largo espectro como meropenem,
piperacilina/tazobactam e tigeciclina, entre outros, não mais justifica o uso de
antimicrobianos em associação como início de uma terapia empírica, exceto nos casos
onde haja forte suspeita de infecção por um germe multiresistente ou mesmo por
levedura.
Logo que novos dados microbiológicos forem acessíveis, o que costuma ocorrer em
48 a 72 horas, será possível fazer uma nova abordagem terapêutica estreitando o
espectro antimicrobiano de modo a evitar o desenvolvimento de superinfecção por
germe multiresistente.
Com relação aos corticosteróides, os estudos mais recentes têm desaconselhado o
seu uso indiscriminado nas septicemias, reservando-os apenas para os casos de suspeita
de insuficiência adrenal devido a que o uso de corticóides propicia o desenvolvimento
de imunossupressão, hiperglicemia e superinfecção.
Também o uso de proteína C ativada recombinante tem sido questionado, já que
estudos mais recentes têm demonstrado que, além de não interferir no curso da doença,
pode ainda aumentar o risco de sangramento.
Considerações finais
As recomendações dos peritos do International Surviving Sepsis Campaign
Guidelines Committee, dizem respeito às formas mais graves de septicemia.
No entanto, creio que o objetivo principal deva ser o tratamento correto de suas
formas mais precoces, ou até mesmo de sua prevenção, já que sabemos que
considerável número das sepsis tratadas nas unidades de terapia intensiva de nossos
hospitais é de origem nosocomial.
Dessa forma, não só o tratamento inicial deve ser adequado como também é
relevante a adoção de práticas que visem a prevenir as infecções hospitalares de forma a
contribuir significativamente para uma menor morbidade e mortalidade por esse grupo
de doenças, de grande importância não só para a saúde pública no Brasil como também
em outros países
89
89
89
Agentes antimicrobianos como início de terapia empírica para outras infecções
comuns:
TIPO DE INFECÇÃO AGENTES MAIS
COMUNS
OPÇÕES DE
ANTIBACTERIANOS
Amigdalite aguda Streptococcus pyogenes Amoxicilina; Macrolídeo
Sinusite aguda e
Otite média aguda
Streptococcus
pneumoniae, H.
influenzae, M. catarrhalis
Amoxicilina;
Amoxicilina/clavulanato;
Ceftriaxone
Bronquite aguda
S. pneumoniae, H.
influenzae, M. catarrhalis
Moderada: amoxicilina
Severa:
amoxicilina/clavulanato;
azitromicina; doxiciclina
Pneumonia comunitária comum
S. pneumoniae, H.
influenzae, S.aureus
Fluoroquinolona; ceftriaxone;
amoxicilina/clavulanato
Pneumonia comunitária atípica
M. pneumoniae, C.
pneumoniae
macrolídeo; fluoroquinolona;
doxiciclina
Infecção urinária comum; cistite Enterobactérias sulfa-trimetoprim;
fluoroquinolona;
nitrofurantoína
Pielonefrite Enterobactérias,
enterococos
Fluoroquinolona ; ampicilina
mais aminoglicosídeo
Uretrite gonocócica
N. gonorrhoeae
Ceftriaxone; ciprofloxacina
Uretrite não gonocócica
Chlamydia, Mycoplasma,
Ureaplasma
Doxiciclina; azitromicina
Doença inflamatória pélvica
N. gonorrhoeae,
Chlamydia, Bacteroides,
enterobactérias
fluoroquinolona mais
metronidazol
Prostatite
N. gonorrhoeae,
Chlamydia, enterobactérias
Fluoroquinolona;
ceftriaxone
Gastroenterite
Shigella; Salmonella;
Campylobacter; E. coli
fluoroquinolona;
sulfa-trimetoprim
Osteomielite S. aureus; S. epidermidis
Oxacilina; cefalosporina de 1ª
geração; lincosamida
Meningite S
. pneumoniae, N.
meningitidis, H. influenzae
cefalosporina de 3ª geração
(ceftriaxone,cefotaxime) ou
meropenem
Endocardites estreptococos,
enterococos, estafilococos
Ampicilina mais gentamicina;
vancomicina mais
gentamicina
Colecistites, diverticulites,
peritonites
Enterobactérias,
enterococos e anaeróbios
Meropenem;
piperacilina/tazobactam
90
90
90
Dosagens de alguns antimicrobianos de maior uso:
Droga DOSE ORAL
média
DOSE IM
média
DOSE IV
média
EFEITO
ADVERSO
NOME
amicacina - 15 mg/kg/dia
em dose única
Idem Oto e nefro
toxicidade
-Amicacina
-Novamin
amoxicilina 40 mg/kg/dia
de 8/8 h
-
- Hipersensibilid
ade
- Amoxicilina
- Amoxil
amoxicilina/
clavulanico
40 mg/kg/dia
de 8/8 h
-
60 mg/kg/dia
de 8/8 h
Hipersensibilid
ade/diarréia
-Clavulin
- Novamox
ampicilina 70 mg/kg/dia
de 6/6 h
200mg/kg/ dia
de 6/6 h
Idem Hipersensibilid
ade
-Ampicilina
-Ampicil
ampicilina/
sulbactam
- -
100mg/kg/dia
de 6/6 h
Hipersensibilid
ade
-Unasyn
azitromicina 10mg/kg/dia
dose única
- - Intolerância
digestiva
-Azitrax
-Novatrex
aztreonam - - 75mg/kg/dia
de 8/8 h
Hipersensibilid
ade
-Azactam
cefazolina -
70mg/kg/dia de
6/6 h
Idem Hipersensibilid
ade
-Cefazolina
-Kefazol
cefepime - 100mg/kg/dia
de 8/8 h
Idem Hipersensibilid
ade
-Maxcef
cefotaxima - - 75mg/kg/dia
de 6/6h
Hipersensibilid
ade
-Cefotaxima
-Claforan
cefpiroma - - 100mg/kg/dia
de 8/8 h
Hipersensibilid
ade
-Cefrom
ceftazidima - 130mg/kg/dia
de 8/8 h
200 mg/kg/dia
de 8/8 h
Hipersensibilid
ade
-Ceftazidima
-Fortaz
ceftriaxona -
50 mg/kg/dia
de 12/12 h
100 mg/kg/dia
de 12/12 h
Hipersensibilid
ade
-Ceftriaxona
-Rocefin
cefuroxima 50mg/kg/dia
de 8/8 h
75mg/kg/dia de
8/8 h
Idem Hipersensibilid
ade
-Zinnat
-Zinacef
ciprofloxacina
500mg de
12/12 h
(adulto)
-
400 mg de
12/12 h
(adulto)
Artropatia em
crianças
-Cipro
-Ciflox
-Procin
claritromicina
15mg/kg/dia
de 12/12 h
- - Intolerância
digestiva
-Klaricid
clindamicina
15 a 30
mg/kg/dia de
8/8 h
20 a 50
mg/kg/dia
de 8/8 h
Idem Diarréia
Colite pseudo
membranosa
-Clindamicina
-Dalacin
doxiciclina 3mg/kg/dia
(dose única)
- - Intolerância
digestiva
-Doxiciclina
-Vibramicina
eritromicina 30mg/kg/dia
de 8/8 h
- - Intolerância
digestiva
-Eritrex
-Ilosone
gentamicina 5 a 7mg/kg/dia
(dose única)
Idem
Oto e
nefrotóxico
-Gentamicina
-Garamicina
91
91
91
Droga DOSE ORAL
média
DOSE IM
média
DOSE IV
média
EFEITO
ADVERSO
NOME
imipenem - - 50mg/kg/dia
de 6/6 h
Hipersensibilid
ade
-Tienam
lincomicina 40 mg/kg/dia
de 8/8 h
20 mg/kg/dia
de 12/12 h
40 mg/kg/dia
de 8/8 h
Diarréia -Lincomicina
-Frademicina
levofloxacin
500mg/dia no
adulto
- Idem
Neurotoxi
cidade
-Levaquin
-Levoxin
linezolida
400 a 600mg
de 12/12
h(adulto)
- Idem Hematotoxicid
ade
-Zyvox
norfloxacino
400 mg de
12/12 h
(adulto)
- - Intolerância
digestiva
-Floxacin
-Norfloxacino
oxacilina 100mg/kg/dia
de 6/6 h
Idem Idem Hipersensibilid
ade
-Oxacilina
-Staficilin
penicilina G
procaina
- 300 mil U de
12/12 h
- Hipersensibilid
ade
-Despacilina
-Wycillin
penicilina G
cristalina
- - 100
milU/kg/dia
de 4/4 h
Hipersensibilid
ade
-Penicilina G
po
tássica
-Megapen
Sulfa-
trimetoprim
20 a 100
mg/kg/dia
de 12/12 h
- Idem Hepatotoxicida
de
-Bactrim
-Infectrin
teicoplanina - 6 mg/kg/dia
de 12/12 h
Idem
Oto e
nefrotóxico
-Targocid
tetraciclina
20 mg/kg/dia
de 6/6 h
- - Intolerância
digestiva
-Tetrex
-Terramicina
tobramicina - 5 a 7mg/kg/dia
( dose única)
Idem
Oto e
nefrotóxico
-Tobramina
Vancomicina
- -
30 A
40mg/kg/dia
de 6/6 h
Oto e
nefrotóxico
-Vancocina
Cloranfenicol
500 mg a 1 g
a
cada 6 horas
-
50 a 100
mg/kg/dia em
dose dividida a
cada 6h
Hematoxicidad
e
-Cloromicetina
Rifampicina
10 mg/kg/dia
de 12/12 h
- - Hepatotoxicida
de
-Rifaldin
-Rifampicina
92
92
92
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www.microbiologyatlas.kvl.dk – Atlas de Microbiologia
www.cdc.com – Centro de Controle de Doenças dos E.U.A .
www.mdconsult.com – Site de acesso a livros e revistas médicas
www.bireme.br – Biblioteca Virtual de Saúde
www.sbmicrobiologia.org.br – Sociedade Brasileira de Microbiologia
www.sbinfecto.org.br – Sociedade Brasileira de Infectologia
www.TreatHIV.com – Site atualizado de informações para tratamento de AIDS
www.his.org.uk – Sociedade de Infecção Hospitalar
www.who.org – Organização Mundial de Saúde
www.shea.org – Sociedade de Epidemiologia da America
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( http://www.livrosgratis.com.br )
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